RIUT-AAA-spa-2014-Evaluacion del deterioro cognitivo en un
Transcription
RIUT-AAA-spa-2014-Evaluacion del deterioro cognitivo en un
EVALUACIÓN DEL DETERIORO COGNITIVO EN UN MODELO DE ENFERMEDAD DE PARKINSON EN RATA WISTAR JHONNATTAN ANDREY QUINTERO FALLA Trabajo de grado presentado como requisito parcial para optar por el título de Biólogo Director(a) JÉSSICA PAOLA ALCÁZAR ARZUZA Lic. Ciencias Naturales y Educación Ambiental. Aspirante a MSc UNIVERSIDAD DEL TOLIMA FACULTAD DE CIENCIAS PROGRAMA BIOLOGÍA IBAGUÉ, COLOMBIA 2014 1 2 3 $'9(57(1&,$ ³(OSURJUDPDGHELRORJtDGHOD8QLYHUVLGDGGHO7ROLPDHOGLUHFWRUGHOWUDEDMRGHJUDGRHO MXUDGRFDOLILFDGRUQRVRQUHVSRQVDEOHVGHORVFRQFHSWRVHLGHDVH[SXHVWDVSRUHODXWRU´ $UWtFXOR $FXHUGR GH \ $UWtFXOR DFXHUGR GH &RQVHMR $FDGpPLFRGHOD8QLYHUVLGDGGHO7ROLPD (O DXWRU -KRQQDWWDQ $QGUH\ 4XLQWHUR )DOOD DXWRUL]D D OD 8QLYHUVLGDG GHO 7ROLPD OD UHSURGXFFLyQWRWDORSDUFLDOGHHVWHGRFXPHQWRFRQODGHELGDFLWDGHUHFRQRFLPLHQWRGH OD DXWRUtD \ FHGH D OD PLVPD XQLYHUVLGDG GH ORV GHUHFKRV SDWULPRQLDOHV FRQ ILQHV GH LQYHVWLJDFLyQGRFHQFLDHLQVWLWXFLRQDOHVFRQVDJUDGRVHQHODUWtFXORGHOD/H\GH \ODVQRUPDVTXHORFRQVWLWX\DQRPRGLILTXHQ $&8(5'2'('(/&216(-2'(/$81,9(56,'$''(/72/,0$ -KRQQDWWDQ$QGUH\4XLQWHUR)DOOD 4 “Cada día sabemos más y entendemos menos” Albert Einstein 5 A mi madre Nohora Edith Falla A mis hermanos Fabián Andrés, Yeis Danilo y Julián Andrés A María Camila Jiménez Comentado [F1]: TODO DEBE DE IR EN ARIAL 12 6 AGRADECIMIENTOS Dios gracias por permitirme salir adelante y alcanzar mis metas. A mi madre por enseñarme las cosas buenas de la vida, darme fortaleza para seguir adelante, nunca desfallecer así la situación no sea la mejor, por todo su amor incondicional, tolerancia, paciencia y verraquera que me impulsa a salir adelante. A María Camila Jiménez por estar a mi lado durante el mayor tiempo de mi carrera brindándome su amor y amistad, pese a las adversidades siempre estuvo conmigo. A Jéssica Alcázar que más que mi maestra fue una amiga que día a día me fue abriendo las puertas al mundo de las neurociencias y aparte de lo académico con sus concejos me permitió convertirme en una mejor persona. A la Doctora Liliana ya que es la mejor docente de la Universidad Del Tolima y una gran persona, la cual se ha ganado mi respeto y admiración. Al GME-CZH por permitirme utilizar sus instalaciones y personal en el desarrollo de mi trabajo de grado. 7 CONTENIDO INTRODUCCIÓN ............................................................................................................ 17 1. OBJETIVOS .......................................................................................................... 19 1.1 OBJETIVO GENERAL .............................................................................................. 19 1.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS ..................................................................................... 19 2. MARCO TEÓRICO................................................................................................ 20 2.1 ENFERMEDAD DE PARKINSON ............................................................................. 20 2.1.1 Historia. .................................................................................................................. 20 2.1.2 Incidencia. .............................................................................................................. 21 2.1.3 Prevalencia............................................................................................................. 22 2.1.4 Descripción............................................................................................................. 23 2.2 GANGLIOS BASALES .............................................................................................. 25 2.2.1 Déficit dopaminérgico y su influencia a ganglios basales. .................................... 29 2.3 DETERIORO MOTOR .............................................................................................. 30 2.4 PARKINSONISMO EXPERIMENTAL POR INTOXICACIÓN CON 6-OHDA .......... 32 2.4.1 Lesiones histológicas, bioquímicas y estrategias terapéuticas. ............................ 32 2.4.2 Validación del parkinsonismo por 6-OHDA. .......................................................... 33 2.5 Deterioro cognitivo .................................................................................................... 34 2.6 Memoria de trabajo ................................................................................................... 37 2.7 Laberinto circular de Barnes.....................................................................................39 3. METODOLOGIA .......................................................................................................... 41 3.1 ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN ...................................................................... 42 3.1.1 Manutención de Ratas Wistar. ............................................................................... 42 3.1.2 Características de las Ratas Wistar. ...................................................................... 42 3.1.3 Conducta exploratoria en la Rata Wistar.. ............................................................. 43 3.1.4 Universo experimental . ......................................................................................... 43 3.1.5 Grupos experimentales. ......................................................................................... 44 3.2 PRUEBAS CONDUCTUALES .................................................................................. 46 3.2.1Actividad Rotatoria. ................................................................................................. 46 3.2.2 Test Neurológico. ................................................................................................... 47 8 3.2.3 Test De Barnes Modificado. ................................................................................... 48 3.3 TÉCNICAS HISTOLÓGICAS .................................................................................... 49 3.3.1 Tinción de Nissl ...................................................................................................... 52 3.4 ANÁLISIS DE DATOS ............................................................................................... 53 4. RESULTADOS ............................................................................................................ 55 4.1 GENERALIDADES .................................................................................................... 55 4.2 TINCIÓN DE NISSL .................................................................................................. 55 4.3 Actividad rotatoria inducida por Apomorfina ............................................................. 56 4.4 Test neurológico y pole test ...................................................................................... 57 4.4.1 Resultados test neurológico ................................................................................... 57 4.4.2 Resultados pole test ............................................................................................... 58 4.4.3 Resultados test de Barnes ..................................................................................... 60 5. DISCUSIÓN ................................................................................................................ 66 6 CONCLUSIONES......................................................................................................... 78 7. RECOMENDACIONES ............................................................................................... 80 8. BIBLIOGRAFIA ........................................................................................................... 81 9.ANEXOS..................................................................................................................... 102 9 LISTA DE TABLAS Tabla 1. Grupos experimentales utilizados en el estudio ............................................... 44 Tabla 2. Descripción de pruebas realizadas en el Test neurológico y Pole test ............ 47 Tabla 3.Variables tenidas en cuenta en el laberinto de Barnes modificado ................... 53 Tabla 4 Disminución neuronal entre los grupos experimentales .................................... 56 Tabla 5. Porcentaje de ejecución de las pruebas en el test neurológico ....................... 57 Tabla 6. Resultados prueba de Normalidad Shapiro - Wilks (P) para las variables evaluadas en el Test de Barnes modificado ................................................................... 60 Tabla 7. Resultados Test de Kruskal Wallis (p) para las variables evaluadas en el Test de Barnes modificado...................................................................................................... 61 Tabla 8. Resultados Test de Friedman (p) para las variables evaluadas en el Test de Barnes modificado........................................................................................................... 62 10 LISTA DE FIGURAS Figura 1. Circuito entre los ganglios basales .................................................................. 29 Figura 2. Efecto de apomorfina y anfetamina en ratas lesionadas ................................ 34 Figura 3. Laberinto de Barnes......................................................................................... 39 Figura 4. Organigrama de metodología .......................................................................... 41 Figura 5. Inyección intracerebral ..................................................................................... 44 Figura 6. Coordenadas estereotáxicas de lesión para el modelo de SNpc ................... 45 Figura 7. Test de actividad rotatoria ............................................................................... 46 Figura 8. Test neurológico .............................................................................................. 47 Figura 9. Test de Barnes modificado .............................................................................. 48 Figura 10. Vibrátomo ....................................................................................................... 50 Figura 11. Bregmas utilizados en el análisis histológico ................................................ 51 Figura 12.Cortes histológicos.......................................................................................... 52 Figura 13. Comparación histológica de los grupos experimentales ............................... 56 Figura 14. Latencia de escape en el Pole Test............................................................... 58 Figura 15. Número de errores en el Pole Test por grupo ............................................... 59 Figura 16. Latencia del primer agujero en el Test de Barnes modificado ...................... 63 Figura 17. Numero de aciertos en el Test de Barnes modificado .................................. 63 Figura 18. Distancia recorrida en el Test de Barnes modificado .................................... 64 Figura 19. Numero de errores en el Test de Barnes modificado .................................... 64 Figura 20. Latencia de escape en el Test de Barnes modificado................................... 65 Figura 21. Curva de aprendizaje de los tres grupos en los días de prueba ................... 65 Figura 22. Esquema de organización motora ................................................................. 72 Figura 23.Hipotesis esquema de organización motora en ausencia y presencia de déficit dopaminérgico ...................................................................................................... 73 11 LISTA DE ANEXOS Anexo a. Mantenimiento de una colonia de ratas en el bioterio de experimentación animal de la universidad del Tolima – PNT Anexo b. Inyección intraperitoneal (ip) – PNT Anexo c. Lesión con 6OHDA en sustancia nigra pars compacta – Anexo d. Perfusión de tejido cerebral – PNT Anexo e. Tinción de Nills – PNT Anexo f. Protocolo Test Neurológico y Pole Test – PNT Anexo g. Protocolo Test de Barnes Modificado – PNT Anexo h. Protocolo anestésico para rata- PNT 12 Comentado [F2]: HIPERVINCULAR LISTA DE ABREVIATURAS AMPA: Acido alfa- amino-3-hidroxi-5-metil-4-isoxazolpropionico D1: Receptor de Dopamina 1 D2: Receptor de Dopamina 2 DA: Dopamina DAT: Transportadores catecolaminérgicos de membrana de dopamina DC: Después de Cristo DSM-IV: Manual diagnóstico y estadístico de desórdenes mentales EP: Enfermedad de Parkinson EST: Estriado GABA: Acido gama aminobutirico GB: Ganglios basales GPe: Globo pálido externo GPi: Globo pálido interno GPv: Globo pálido ventral Me-CZH: Grupo modelos experimentales para las ciencias zoohumanas MPTP: 1-metil-4-fenil-1, 2, 3, 6-tetra hidropirimidina MSA: Síndrome de atrofia NET: Transportadores catecolaminérgicos de membrana de noradrenalina NMDA: N-metil-D-aspartato NST: Núcleo Subtalámico PSP: Parálisis supranuclear progresiva PUFAs: Ácidos grasos poliinsaturados RNS: Especies reactivas de nitrógeno ROS: Especies reactivas de oxigeno SNC: Sistema nervioso central SNpc: Sustancia nigra pars compacta SNr: Sustancia nigra reticulata SOD: Súper oxido dismutasa 13 6-OHDA: 6 Hidroxi-dopamina 14 RESUMEN La enfermedad de Parkinson (EP), se distingue por disfunción motora y neuropsiquiátrica caracterizada por resolución de problemas y planeación, alteraciones en asociaciones estímulo-respuesta, entre otras. Intentar desarrollar estos síntomas es difícil, puesto que los modelos basados en neurotoxinas traen consigo daños motores que impiden la normal movilidad requerida para ejecutar test cognitivos en animales. Objetivo: evaluar el daño cognitivo en un modelo de EP en rata Wistar. Metodología: se usaron 27 ratas Wistar macho repartidas así: INT: n=9, SHAM: n=9, LES: n=9. Se realizó una prueba sensoriomotora mediante Test neurológico y se evaluó la memoria ejecutiva con la prueba del Test de Barnes Modificado de la siguiente manera: Sesiones de aclimatación, habituación y adquisición. Mediante un Anova se encontraron diferencias significativas (p=0,05) en prueba sensoriomotora y aciertos, distancia recorrida y latencia de escape (Test de Barnes). Resultados: los resultados indican que las pruebas comportamentales usadas comprueban el esquema de organización motora que posiciona a los ganglios basales como fuente de facilitación selectiva de la concentración, atención y energizante del circuito de realización de una tarea. 15 ABSTRAC Parkinson's disease (PD) is characterized by motor and neuropsychiatric dysfunction characterized by problem solving and planning, changes in stimulus-response associations, among others. Attempting to develop these symptoms is difficult, since the models based on motor impairments bring neurotoxins which prevent normal motion required to perform cognitive tests in animals. Objective: To assess cognitive damage in a rat model of PD in Wistar. Methodology: INT: n = 9, SHAM: n = 9, SLE: n = 9, 27 male Wistar rats were used and distributed. One sensorimotor testing was performed by Test neurological and executive memory test Test Modified Barnes was assessed as follows: Sessions acclimation, habituation and acquisition. Using an ANOVA significant differences (p = 0.05) and sensorimotor testing successes, distance and escape latency (Test of Barnes) were found. Results: The results indicate that the behavioral tests used to check the motor organization scheme that positions the basal ganglia as a source of selective facilitation of concentration, attention and energizing circuit performing a task. 16 INTRODUCCIÓN La EP es un trastorno neurodegenerativo del cual, sus síntomas principales resultan de la degeneración de las neuronas dopaminérgicas en la sustancia nigra pars compacta (SNpc). En los cerebros normales, las células de la sustancia nigra son reducidas de un 4.7 a 6% por década entre la quinta y la novena década de la vida, pero no es suficiente para producir la EP, mientras que en pacientes con EP existe una subsecuente pérdida del 80-90% de dopamina en el estriado y el núcleo caudado (Kuteret al, 2007 y DinisOliveira et al, 2006). La EP afecta al 1% de las personas de 65 años de edad y en los últimos 180 años desde el descubrimiento de la EP, la etiología de la enfermedad permanece aún desconocida (Zhang et al, 2000). Se caracteriza por síntomas motores en primera instancia. Son clásicos: temblor, rigidez, acinesia e inestabilidad postural. Junto con ellos, son cada día más importantes los síntomas no motores. Los pacientes pueden presentar disfunción neuropsiquiátrica, trastornos del sueño, disfunción autónoma, síntomas sensitivos, dolor y alteraciones dermatológicas. Otros síntomas menores, pero no despreciables, son pérdida de peso, alteraciones olfatorias, fatiga y alteraciones respiratorias. (Chacón, 2010). Aunque se conoce que en etapas posteriores, la EP se asocia a demencia. Existe una creciente evidencia de los efectos cognitivos incluso en las etapas tempranas de la progresión de la enfermedad. Los cambios cognitivos en EP reflejan cambios funcionales en los circuitos de ganglios basales y áreas corticales. (Poliakoff & Smith-Spark, 2008). Los problemas neuropsiquiátricos y cognitivos varían de la ansiedad, apatía, depresión y demencia. Existen reportes de altas tasas de pacientes de EP con demencia. Del 24-31% de los pacientes revisados presentan demencia y del 3-4% de la demencia de la población en general se debe a la EP (Chen & Tsai, 2010). Una proporción considerable de Pacientes con EP no dementes tienen daño cognitivo en las etapas tempranas de la enfermedad. Por eso el uso de modelos animales de deterioro neuronal es de vital importancia y se han estandarizado una serie de modelos comportamentales.Modelos animales de trastornos cognitivos se han basado mayoritariamente en primates, ratas y ratones, 17 cuyos procesos neuronales son similares a los de la función cognitiva humana. Se pueden distinguir varios tipos de modelos experimentales: – Modelos farmacológicos: permiten la evaluación de fármacos. – Modelos genéticos: basados en animales manipulados genéticamente (Transgénicos y knock-out). – Modelos toxicológicos: para determinar la toxicidad de metales pesados, tóxicos y neurotoxinas. Hay modelos animales que simulan síndromes específicos de déficit cognitivo en los cuales el factor desencadenante es el envejecimiento o los traumatismos craneoencefálicos. Recientemente, se han empleado también otros modelos complementarios que se realizan con animales no mamíferos, como peces cebra (Danio reiro), moscas del vinagre (Drosophila melanogaster) y gusanos (Caenorhabditis elegans), para cribar compuestos potencialmente tóxicos o terapéuticos, y determinar alguna de las bases neuromoleculares de la función cognitiva (Navarrete, 2008) A continuación se nombraran algunas de las pruebas de conducta para la evaluación de trastornos cognitivos en modelos animales: Evaluación de la atención (inhibición prepulso, inhibición latente, Prueba go / no go y orientación y habituación),Evaluación del aprendizaje y la memoria (Memoria no espacial(prueba de reconocimiento de objetos, prueba de reconocimiento social)),(Memoria espacial (Laberinto acuático de Morris y laberinto de Barnes),(aprendizaje asociativo (prueba de evitación pasiva y prueba de evitación activa)) y (memoria emocional (condicionamiento aversivo al sabor y sobresalto potenciado por el miedo)). El modelo de 6OHDA en rata Wistar ha sido probado con infinidad de pruebas comportamentales a la hora de estudiar la función cognitiva se tienen en cuenta múltiples sus dimensiones y decidir cuales variables vamos a medir para elegir la prueba específica apropiada; sin embrago la creación de pruebas específicas para la medición de daño cognitivo en modelos animales son de vital importancia en la ciencia para la asociación de baterías comportamentales que me den como resultado datos más sensibles sobre las interacciones organismo - tratamiento. 18 1. OBJETIVOS 1.1 OBJETIVO GENERAL Evaluar el deterioro cognitivo en un modelo experimental de Enfermedad de Parkinson en Rata Wistar. 1.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS Desarrollar la lesión neurotóxica de 6-OHDA como modelo de enfermedad de Parkinson en ratas. Valorar la efectividad del modelo inducido a través de la prueba de rotación inducida por anfetamina, agonista dopaminérgico. Estandarizar la prueba de laberinto de Barnes modificado, de manera que pueda emplearse para evaluar el daño cognitivo producido en la Enfermedad de Parkinson en el modelo animal usado. Comprobar el déficit cognitivo (memoria de trabajo y aprendizaje de hábitos) producido por la lesión dopaminergica a través de la prueba de Laberinto de Barnes Modificado. 19 2. MARCO TEÓRICO 2.1 ENFERMEDAD DE PARKINSON 2.1.1 Historia. Desde los primeros decenios posteriores al final de la segunda Guerra Mundial se advirtió una contundente transformación epidemiológica en las naciones industrializadas, lo que a finales del siglo XX se extendió a los países en vías de desarrollo. Este cambio se debió al abatimiento de las causas de muerte que aquejaron a la humanidad entre finales del siglo XIX y principios del XX, fundamentalmente procesos infecciosos y contagiosos, y fallecimientos por lesiones de combate en las guerras, con ello aumentó la esperanza de vida y emergieron problemas de salud hasta entonces poco comunes, denominados crónico-degenerativos, y que en los albores del nuevo milenio representan el principal reto para los sistemas de salud del mundo, entre ellos la enfermedad de Parkinson.(Castillo,2008, pág. 28) Los primeros bosquejos de su descripción los hizo el célebre médico y escritor griego Galeno, en el siglo II dC; Sylvius de le Boe, en el siglo XVII, realizó varios estudios de los diferentes temblores y distinguió dos tipos: uno que aparecía en reposo (tremor coactus) y otro cuando el paciente realizaba movimientos voluntarios (motustremulous). François Boissier de Sauvages, un siglo después, añadió que los temblores de reposo, a los que llamó palpitaciones, desaparecían cuando el paciente intentaba hacer algún movimiento (Castillo, 2008, pág.28). La primera descripción de la EP la realizo el médico James Parkinson en el año 1817, quien la detallo y denomino parálisis agitante, en ese momento no pensó que su descripción realizada como una sugerencia precipitada con la cual utilizo conjeturas y no una investigación metódicamente científica tuviese tal trascendencia. Aunque su descripción fue incompleta la relación de síntomas aislados a una sola enfermedad fue su gran logro. El padre de la neurología clínica Jean-Martin Charcot, a finales del siglo XIX denominó a la parálisis agitante de James Parkinson, Enfermedad de Parkinson en su honor. En 20 1919, Tretiakoff relacionó la EP con las anomalías de la sustancia nigra. En 1958 Carlsson y Hornikyewicz descubrieron que los portadores del padecimiento poseían niveles bajos de dopamina. Las posibilidades de vida aumentaron los últimos cien años ya que las personas que nacían en el siglo anterior tenían menos posibilidades de prevalecer en el tiempo, lo cual hizo que el panorama de salud cambiara y la distribución poblacional de las edades fuera diferente, las personas mayores de 40 años son bastante numerosas y aunque disminuyen cada 10 años después de los 60 años, son mucho más que en los tiempos pasados. Por lo tanto se abre un nuevo horizonte epidemiológico, las enfermedades como el cáncer, cardiovasculares y degenerativas son de gran importancia, los sistemas de salud toman mayores medidas de prevención por la frecuencia con que aparecen y su larga evolución ocasiona mayor número de casos los cuales en el tiempo representan grandes costos. Este es el gran círculo de la Enfermedad de Parkinson padecimiento de personas mayores las cuales mejoran su calidad de vida y logran vivir por más tiempo gracias a los progresos de la ciencia. 2.1.2 Incidencia. Es el segundo desorden neurodegenerativo más frecuente. Países europeos tienen una prevalencia de 65.6 por cada 100,000 a 12,500 por 100,000, y la incidencia de 5 por 100,000 a 346 por cada 100,000; y más baja en Asia, con una prevalencia de 15 por cada 100,000 y una incidencia de 328 por cada 100,000. (Chen & Tsai, 2010). La enfermedad de Parkinson afecta a todos los grupos étnicos y a uno y otro sexo, con ligera predilección por los varones. La incidencia es menor entre individuos de raza negra de Asia y África, en comparación con los de raza blanca, donde su frecuencia es claramente mayor. Si se compara la incidencia entre las personas de raza negra que residen en África y las de América, es menor en las primeras. (Jendroska K, Olasode BJ, Daniel SE, et al., 1994). 21 Sus causas son inciertas, la inexistencia de marcadores biológicos para su diagnóstico y su relación sintomatología con otros padecimientos hace que sea difícil la estimación de nuevos casos. Sin embargo hay que tener en cuenta los estudios que estiman su incidencia (como grupo de edad, tipo de población, etc.) Estas variables tienen impacto en los resultados de diversas series de diagnósticos. 2.1.3 Prevalencia. El cálculo de la prevalencia de la EP se ve afectado por un numeró de elementos: La aparición de casos nuevos que se suman a los ya diagnosticados, padecimiento crónico con duración de muchos años dado que su tasa de mortalidad ha disminuido a consecuencia de los avances terapéuticos, con la introducción de la Levodopa, se da a los pacientes una esperanza de vida casi normal (Minsal 2010). Lo cual incide directamente en los resultados al sacarlos en un determinado momento. Como la expectativa de vida ha aumentado, con el pasar del tiempo los casos se pueden ver en los grupos de individuos con mayor edad y aquellos que poseen la enfermedad y no son atendidos por los especialistas (subdiagnosticados) pueden alcanzar el 50%. Otros padecimientos neurodegenerativos que imitan fácilmente a la enfermedad de Parkinson, y que confunden sobre todo a clínicos poco diestros en el tema, son pobremente estudiados desde el punto de vista epidemiológico. La prevalencia de la enfermedad de Parkinson en la población general se estima en 0.3%, aunque entre personas con 65 a 90 años se incrementa exponencialmente hasta 3%(Castillo, 2008). En cuanto al binomio Parkinson-Demencia, es un hecho reconocido por diversos investigadores que la incidencia de demencia asociada a la enfermedad de Parkinson, es superior a lo esperado, existiendo muchas discrepancias respecto a los datos estadísticos. Así, los porcentajes referidos van desde un 10,9% hasta un 40%, dependiendo en general de los criterios utilizados para la definición de demencia. En concreto, en el DSM-IV se manejan cifras que sugieren que la demencia se presenta en aproximadamente el 20-60% de los sujetos con enfermedad de Parkinson, siendo más frecuente en personas mayores o en las que presentan una enfermedad más grave o avanzada, y todos los pacientes con EP presentan deterioro cognitivo leve con la evolución de la enfermedad. (Minsal, 2010). 22 Sólo 10% de todos los pacientes con la enfermedad la manifiestan antes de los 40 años, esta variedad tiene características peculiares y quizá lo más relevante es que es una forma familiar del padecimiento, lo que plantea aristas genéticas y epidemiológicas distintas (Castillo, 2008). 2.1.4 Descripción. La EP es una entidad polimorfa con multitud de síntomas y signos que pueden aparecer ya al inicio de la enfermedad o bien en su evolución. Son clásicos los síntomas motores, temblor, rigidez, acinesia e inestabilidad postural. Junto con ellos, son cada día más importantes los síntomas no motores. Los pacientes pueden presentar disfunción neuropsiquiátrica, trastornos del sueño, disfunción autónoma, síntomas sensitivos y dolor, y alteraciones dermatológicas. Otros síntomas menores, pero no despreciables, son pérdida de peso, alteraciones olfatorias, fatiga y alteraciones respiratorias. (Chacón, 2010). La EP es un trastorno neurodegenerativo que ocurre después de la mitad de la vida, y es caracterizado por la degeneración selectiva de neuronas dopaminérgicas de la sustancia nigra. Aunque la patogénesis permanece indeterminada, la disfunción mitocondrial, el estrés oxidativo y la apoptosis son los mayores factores contribuyentes. Recientemente, evidencia acumulada sugiere que la inflamación que ha sido objeto de estudio, juega un importante rol en la progresión de la EP. (Jin et al, 2008). Evidencia clínica, patológica y fisiológica indica que la EP en primera instancia es un desorden motor relacionado a la disfunción de los ganglios basales. Aunque déficits autonómicos, problemas cognitivos y síntomas sensoriales positivos son frecuentemente asociados a la EP, la impresión clínica en general aún apoya el comentario inicial de la EP de que la participación de peso nace en el sistema motor, con mayores defectos cognitivos y perceptuales casi siempre indicando un diagnóstico diferente, como uno de los llamados "Parkinson Plus" síndromes de atrofia multisistémica (MSA), demencia con cuerpos de Lewy, la degeneración corticobasal (CDB) o parálisis supranuclear progresiva (PSP). (Mc Auley, 2003). 23 Cerda M, Borrego O y Sáez T, (2010), establece que: “Tanto las formas familiar como la esporádica de la enfermedad de Parkinson (EP) son indistinguibles y comparten la misma característica bioquímica que es el déficit de dopamina cerebral, una reducción en la transmisión dopaminérgica dentro de los ganglios basales. En el examen microscópico hay degeneración de las células dopaminérgicas y presencia de cuerpos de Lewy en las neuronas de la sustancia negra mesencefálica que se proyectan hasta el cuerpo estriado (vía nigroestriada) pero la extensión de la pérdida neuronal no sólo se centra en el sistema dopaminérgico sino que afecta a otros neurotransmisores clásicos como el catecolaminérgicos (acetilcolina) y los núcleos no catecolaminérgicos. De esta manera, los síntomas motores de la enfermedad están relacionados con los sistemas dopaminérgicos y las manifestaciones no motoras están relacionadas con las vías no dopaminérgicas En un estudio reciente sobre la relación de la EP con el estrés oxidativo se ha procedido a establecer los siguientes mecanismos causales entre ambas entidades. El cerebro es rico en fosfolípidos y ácidos grasos libres poliinsaturados (PUFAs) y ambos son muy susceptibles a los oxidantes. A consecuencia del daño oxidativo a los fosfolípidos y PUFAs, la doble membrana lipídica puede resultar afectada en la EP en la que la concentración de substancia negra está disminuida y la concentración de malonildialdehido, un producto de la oxidación lipídica, está incrementada. Otra evidencia de la oxidación lipídica en esta enfermedad es el incremento de 4-hidroxi-2-nonenal, producto lipofílico de la peroxidación de la membrana unido al ácido araquidónico. Los tipos de variante de sinucleína, la mutante y la natural, forman fibrillas de amiloide semejantes a las observadas en los cuerpos de Lewy así como oligómeros no fibrilares denominados protofibrillas a las que se ha propuesto como formas tóxicas de sinucleína. Los productos como 8-oxo- 24 dG se han encontrado aumentados en muestras postmortem de substancia negra procedentes de cerebros con EP. En las neuronas es necesario un equilibrio entre la cantidad producida y la eliminada de oxidantes y este equilibrio es el que mantendrá con niveles constantes a las especies ROS (especies reactivas de oxigeno)y RNS (especies reactivas de nitrógeno) en concentraciones no tóxicas. Entre las enzimas captadores de ROS, la súper oxido dismutasa (SOD), considerada como la más importante, en la isoforma citosólica SOD1 no se han encontrado cambios pero sí en la isoforma mitocondrial SOD2 que muestra actividad aumentada al parecer en respuesta al exceso de ROS en la Enfermedad de Parkinson. En relación al resto de enzimas antioxidantes, catalasa, glutatión peroxidasa, muestran actividad reducida en cerebros con EP.” En una situación fisiológica, en las mitocondrias se produce el mayor consumo de oxígeno y como resultado una mayor producción de radicales superoxido al ser reducido el oxígeno a ROS; los enzimas antioxidantes como SOD2 descienden los niveles de ROS al mínimo, pero en el caso de defectos en la mitocondria, como se supone en el caso de la EP, este equilibrio se rompe y la cantidad de ROS generado por la cadena de transporte de electrones, cuya actividad está disminuida, se incrementa(Zhou, Huang Y Przedborski, 2008) 2.2 GANGLIOS BASALES Los mamíferos poseen una corteza cerebral que se encuentra masivamente interconectada con 2 estructuras subcorticales que son los ganglios basales y el cerebelo. Los ganglios basales son un grupo de estructuras subcorticales que intervienen en el movimiento voluntario; en la integración de información sensoriomotora; en procesos asociativos, cognitivos y emocionales; y en el comportamiento relacionado con los hábitos (conductas que se realizan “casi sin pensar”). Están localizados en la parte ventral de los hemisferios cerebrales y estrechamente interrelacionados con la corteza cerebral en circuitos secuenciales segregados 25 topográficamente (Romanelli y cols., 2005) y funcionalmente, organizados en paralelo, pero con un alto nivel de convergencia e integración (Alexander y cols., 1986). Los ganglios basales incluyen: 1) el estriado, compuesto por el núcleo caudado, el putamen y el núcleo accumbens; 2) el globo pálido, en sus dos divisiones (externo e interno), con un componente ventral (GPv); 3) la sustancia negra, en sus dos regiones (compacta y reticulada); 4) el área tegmental ventral; y 5) el núcleo Subtalámico. En algunas denominaciones, con un componente funcional extendido, se incluyen también los núcleos talámicos (tanto los ventrolaterales como los intralaminares) y el núcleo pedúnculopontino, junto con el área motora mesopontina. La actividad de cada componente de los ganglios basales está modulada por diferentes núcleos y áreas que, por impulsos neuroquímicos, pueden inhibir o facilitar el flujo de información desde la corteza cerebral a través de los ganglios basales hasta el tálamo y de ahí de regreso a la corteza cerebral (para finalizar en el bucle donde se originó el impulso). Todos estos circuitos dependen funcionalmente del área cerebral de la que surjan los impulsos y están modulados por el concurso de las proyecciones dopaminérgicas originadas en la parte ventral del mesencéfalo (la sustancia negra compacta, el área tegmental ventral). Esta organización se conserva a lo largo de la escala filogenética con muy pequeñas variaciones (Parent, 1997; Smeets y cols., 2000; Doupe y cols., 2005). Las aferencias a todos los núcleos de los ganglios basales son muy numerosas, pero el estriado es el área que recibe la proporción más elevada. Existe un patrón topográfico de conexiones que se mantiene en toda la extensión de los ganglios basales (Alexander y Crutcher, 1990). La mayor parte de las aferencias proceden de la corteza cerebral, de los núcleos talámicos intralaminares y de la sustancia negra compacta/área tegmental ventral. Las proyecciones corticoestriales son excitadoras y utilizan glutamato como neurotransmisor; por ello, la presencia de receptores glutamatérgicos (ionotrópicos, NMDA y AMPA, y metabotrópicos) en el estriado es de gran importancia al ser la aferencia más densa. Estas proyecciones corticoestriales se originan en las capas 26 corticales supragranulares (capas II y III) y en las infragranulares (V y VI) (Jones y cols., 1977; Parent y cols., 1995; Parent y Hazrati 1995a). Otras proyecciones excitadoras aferentes al estriado proceden de los núcleos talámicos intralaminares (el núcleo centromediano con un componente motor proyecta al putamen y el núcleo parafascicular con un componente emocional proyecta al estriado ventral) y, en menor grado, proceden de los núcleos ventral-anterior, ventral-lateral, dorsal-medial y de los núcleos asociativos posteriores (Sadikot y cols., 1992; McFarland y Haber, 2001). La actividad de esta vía excitadora talámica está modulada por diferentes neuropéptidos, como la sustancia P, la colecistocinina, el péptido vaso activo intestinal y la proteína ligadora de calcio: calcitonina. Las proyecciones tálamo estriatales podrían tener gran importancia funcional, ya que constituyen un flujo importante (y rápido) de información hacia áreas sensitivo motoras estriatales, y modularían su actividad, directa y previamente, sin necesidad de cerrar el bucle (loop) tálamo-corteza- estriado (Herrero et al., 2011). El estriado comprende el caudado, el putamen y el núcleo accumbens. El caudado es la parte del estriado que controla las funciones asociativas y cognitivas; el putamen es responsable del componente motor; y el accumbens integra y modula las funciones emocionales, de la motivación y de los mecanismos de recompensa (por lo que se lo incluye en los circuitos de la adicción) (Wheeler y Carelli, 2008). Sin embargo, aunque existe una predisposición mayoritaria que permite generalizar y simplificar en este sentido, lo cierto es que el estriado no es homogéneo en sus conexiones, en la segregación estricta de sus funciones, en la distribución de sus neuronas ni en sus neurotransmisores y neuromoduladores (Graybiel, 1990). Existe un entrecruzamiento funcional que, en virtud de la integración simultánea de diversas funciones, produce un fenómeno de convergencia de información manteniendo el paralelismo funcional. Si se analizan cuantitativamente las fibras aferentes y eferentes de los ganglios basales se evidencia que las eferencias desde los núcleos de salida son mínimas en comparación con el volumen de aferencias al estriado, ya que se produce 27 una “convergencia de conexiones” (Percheron y Filion, 1991), donde se integra información de diferentes orígenes para realizar la acción de forma pertinente. La manera en que los ganglios basales procesan la información ha sido aceptada desde su descripción en los 80, como “Modelo actual de organización de los ganglios basales” (Alexander 1987).Se trata de un modelo no definitivo con muchos puntos por aclarar y más aún un modelo que no puede explicar completamente muchos de los nuevos fenómenos descriptos (Parent 1998) El Núcleo Estriado (EST) constituye la entrada al circuito de los Ganglios Basales (GB). El mismo recibe múltiples aferencias, la mayoría de ellas glutamatérgicas de la corteza cerebral. A su vez el segmento interno del globo pálido (GPi) y la sustancia nigra pars reticulata (SNr) representan los principales núcleos de salida del circuito. Estas dos últimas estructuras ejercen una exigencia inhibitoria tónica mediada por el sistema GABA sobre las neuronas premotoras excitatorias localizadas en la lámina ventral del tálamo. Entre el núcleo de entrada (EST) y las estructuras de salida (GPi y SNr) existen dos sistemas paralelos de proyección originados en diferentes poblaciones neuronales del EST denominados como “vía directa” y “vía indirecta”. La vía directa originada en neuronas gabaérgicas y peptidérgicas estriatales proyecta monosinápticamente sobre el complejo GPi/SNr La vía indirecta originada en subpoblaciones gabaérgicas y encefalinergicas estriatales proyecta polisinápticamente sobre el complejo GPi/SNr pasando previamente por el segmento externo del globo pálido (GPe) y núcleo subtalámico (STN).Esta secuencia indirecta está dada inicialmente por eferencias inhibitorias gabaérgicas del EST sobre el GPe, de este último sobre el STN y una aferencia final excitatoria glutamatérgica sobre el complejo GPi/SNr (Albín G, 1989) (Figura 1). 28 Figura 1. Circuito entre los ganglios basales El tálamo y la corteza señalando las vías directas e indirectas, teniendo en cuenta la influencia de la dopamina Fuente: autor. 2.2.1 Déficit dopaminérgico y su influencia a ganglios basales. “El déficit dopaminérgico provoca una serie de modificaciones en los procesos de excitación-inhibición de los ganglios basales que producen un aumento excesivo en la actividad del núcleo subtalámico (NST) y su proyección glutamatérgica excitadora, principalmente al globo pálido externo, globo pálido interno, Sustancia negra pars reticulata y sustancia negra pars compacta. (Lúe L.F., et al. 1999). La hiperactividad del núcleo subtalámico y el consecuente aumento en la actividad inhibitoria eferente desde el globo pálido interno y sustancia negra reticulata, que provoca una hipoactividad de las proyecciones motoras tálamo-cortical y del tronco encefálico, es la característica fisiopatológica principal del estado parkinsoniano(Martínez Lage J., Martínez Lage P. y Moya. 2001) 29 Esta afirmación descansa en numerosos hallazgos experimentales, demostrando la existencia de aumento en la actividad mitocondrial y enzimática del núcleo subtalámico, registro de la actividad neuronal y mejoría muy significativa en los síntomas motores en monos con parkinsonismo inducido por MPTP tras lesión del núcleo subtalámico. Sin embargo, los mecanismos intermedios que median el aumento en la actividad neuronal del núcleo subtalámico como consecuencia del déficit dopaminérgico no están del todo claros. (Martínez Lage J., Martínez Lage P. y Moya. 2001) El modelo original de la organización funcional y fisiopatología de los ganglios basales (Morgan, et al. 2000) sugirió que la pérdida del tono dopaminérgico sobre el estriado provocaba un estado de hipoactividad del globo pálido externo que, a su vez, conllevaba a la desinhibición del núcleo subtalámico. Recientemente, sin embargo, se ha mostrado que la hiperactividad del núcleo subtalámico precede la pérdida de terminales dopaminérgicas en el estriado y, sobre todo, los cambios en la actividad neuronal del globo pálido externo. Por ello, está cobrando creciente interés el estudio del control dopaminérgico directo del globo pálido y del núcleo subtalámico, así como otras fuentes de excitación al núcleo subtalámico, tales como el complejo parafascicular-centro mediano del tálamo o el núcleo pedúnculo pontino del tronco encefálico (Prusiner.2001) 2.3 DETERIORO MOTOR El estudio del sistema motor y de sus trastornos ha sido un tema importante para la neurofisiología. Uno de los objetivos de la neurofisiología es intentar comprender los mecanismos fisiopatológicos que subyacen a las disfunciones del sistema motor. Los trastornos del control motor proceden de disfunciones en uno o varios de los circuitos excitadores o inhibidores que actúan en paralelo para alcanzar el objetivo final de un movimiento fino. Dichos trastornos pueden estar producidos por una enfermedad degenerativa que afecta específica o predominantemente a estructuras relacionadas con el movimiento como por ejemplo la enfermedad de Parkinson (EP), o por trastornos sistémicos, traumáticos o vasculares. Probablemente, los ganglios de la base poseen los circuitos promotores más apropiados para el control inhibitorio y excitatorio de otros circuitos cerebrales. En lo que concierne a la función motora, se ha hipotetizado la 30 existencia de una vía directa y otra indirecta que modulan la excitabilidad de los núcleos de salida de la información desde los ganglios basales hacia el tálamo motor (globo pálido interno y parte reticular de la sustancia negra). Las conexiones eferentes de los ganglios basales no se limitan a la vía talamocortical, sino que incluyen los núcleos motores del tronco cerebral, siguiendo principalmente dos vías: la del colículo superior, que regula movimientos faciales, y la del núcleo pedúnculopontino, por la que se regula la excitabilidad de las vías motoras subcorticales(Santos-García et al.,2012).La evidencia clínica, fisiológica y patológica indica PD que es principalmente un trastorno motor en relación con disfunción ganglionar basal (Mc Auley, 2003). Algunos de los síntomas típicos de la EP y su deterioro motor son: Temblor: Consiste en un movimiento rítmico hacia atrás y hacia adelante. Generalmente comienza en la mano aunque en ocasiones afecta primero a un pie o a la mandíbula. Se agudiza en reposo o bajo situaciones tensas y tiende a desaparecer durante el sueño. Puede afectar sólo a un lado o a una parte del cuerpo. Rigidez: Se manifiesta como una resistencia o falta de flexibilidad muscular. Todos los músculos tienen un músculo opuesto, y el movimiento es posible porque, al activarse un músculo, el opuesto se relaja. Cuando se rompe este equilibrio los músculos se tensan y contraen causando inflexibilidad y debilidad. Bradicinesia: Se trata de la pérdida de movimiento espontáneo y automático y conlleva la lentitud en todas las acciones. Esta lentitud es impredecible y es el síntoma más incapacitante, porque el paciente no puede realizar con rapidez movimientos habituales que antes eran casi mecánicos. Inestabilidad: La inestabilidad de la postura hace que los enfermos se inclinen hacia adelante o hacia atrás y se caigan con facilidad. La cabeza y los hombros caen hacia delante y la forma de andar empeora. El enfermo da pasos cortos y rápidos para mantener el equilibrio; o se queda literalmente "plantado" a mitad de camino, sin poder moverse. Existen una serie de síntomas secundarios que, aunque no afectan a todos los enfermos, provocan trastornos importantes ya que 31 empeoran los síntomas principales y agravan las condiciones físicas y psicológicas del paciente 2.4 PARKINSONISMO EXPERIMENTAL POR INTOXICACIÓN CON 6-OHDA El análogo noradrenérgico 6-hidroxidopamina (6-OHDA) se ha utilizado durante más de 30 años como neurotoxina catecolaminérgica en el estudio del sistema nervioso (Jonsson. 1983). Por cuestiones prácticas, se ha empleado principalmente en roedores, sobre todo ratas (Ungerstedt. 1971). La 6-OHDA presenta una gran afinidad a numerosos transportadores catecolaminérgicos de membrana, entre ellos el de dopamina (DAT) y el de noradrenalina (NET). Por tanto, la 6-OHDA puede afectar tanto a neuronas dopaminérgicas como noradrenérgicas y causar alteraciones en las vías catecolaminérgicas del sistema nervioso central y periférico. Aunque, a diferencia del MPTP, la rotenona o el paraquat, la 6-OHDA puede administrarse por inyección sistémica, esta vía no reproduce la lesión nigroestriatal de la EP porque la 6-OHDA no atraviesa la barrera hematoencefálica ni se acumula en el parénquima cerebral (Jonsson. 1983). Por tanto, la 6-OHDA debe inyectarse intracerebralmente por estereotaxia en el haz prosencefálico medial o directamente en el estriado o la SNpc (Javoy et al. 1976). Al inyectar 6-OHDA en la SNpc o en el haz prosencefálico medial, las neuronas dopaminérgicas comienzan a morir en las 24 horas siguientes, sin que muestren una morfología apoptótica (Jeon, et al., 1995). La máxima reducción de las concentraciones de dopamina se produce entre el tercer y el cuarto día tras la inyección (Faull y Laverty, 1969). Cuando se inyecta en el estriado, la 6-OHDA produce una degeneración retrógrada del sistema nigroestriatal más prolongada, que se mantiene entre una y tres semanas tras la lesión (Przedborski et al.,1995), y las neuronas degeneradas presentan una morfología variada con características de apoptosis (Marti et al., 1997.). 2.4.1 Lesiones histológicas, bioquímicas y estrategias terapéuticas. La 6-OHDA penetra en el interior de la neurona, donde forma radicales libres hasta causar la muerte de las neuronas dopaminérgicas de la SNpc (Méndez y Finn, 1975)y la consiguiente denervación nigroestriatal (Simola, Morelli y Carta, 2007), así como una disminución de la dopamina y sus metabolitos. Desde el punto de vista histológico, la muerte neuronal 32 dopaminérgica se asocia a un aumento de las células astrogliales (Stromberg et al., 1989) y un incremento significativo de la microglía activada en la zona de la lesión (Akiyama y McGee, 1989). La lesión en la SNpc induce cambios en la actividad electroquímica de los circuitos de los ganglios basales. Estas alteraciones son análogas a las que se observan en los pacientes con EP, pero el modelo en roedores es incompleto, ya que en sus ganglios basales no hay división del estriado, ni existe el globo pálido medial. Con todo, este modelo ha sido y sigue siendo de gran utilidad para la comprensión de la EP y una plataforma excelente para ensayar nuevas terapias. Son muy numerosos los trabajos de investigación que se han llevado a cabo con este modelo, como el ensayo de implantes celulares o la inyección de vectores para terapia génica, tanto para restaurar el sistema dopaminérgico (Connor, 2001) como para restablecer el equilibrio de alteraciones funcionales en los ganglios basales (Luo et al., 2002). Actualmente cualquier método dirigido a conocer el perfil fármaco dinámico de un producto bioactivo se realiza mediante métodos alternativos in vitro basados en las acciones moleculares del mismo, sin embargo, todavía e útil el uso de técnicas in vivo no solo para confirmar en animales los hallazgos previamente obtenidos sino además para lograr extrapolar estos en los seres humanos como herramienta complementaria a la terapia médica. A pesar que no existen modelos animales que reproduzcan con fidelidad la etiopatogenia de la EP 2.4.2 Validación del parkinsonismo por 6-OHDA. La medición del grado de parkinsonismo obtenido en animales inyectados unilateralmente con 6-OHDA se realiza con el test de rotación inducido por anfetamina o apomorfina (Feger et al., 2002). La inyección de anfetamina provoca rotación ipsilateral al lado de la lesión. La inyección de un agonista de la dopamina, como la apomorfina, produce el efecto contrario: rotación hacia el lado contralateral a la lesión (Marshall y Ungerstedt, 1977). La rotación contralateral inducida por apomorfina se debe al incremento del número de receptores dopaminérgicas postsinápticos en el estriado ipsilateral a la lesión como consecuencia de la denervación. Por el contrario, la anfetamina inhibe la recaptación de dopamina, lo que produce un aumento de la dopamina únicamente en el estriado contralateral a la lesión y un 33 desequilibrio funcional a favor de éste (Figura 2). Hay pruebas de mayor precisión para medir el parkinsonismo en las ratas lesionadas, que consisten en la medición de la actividad espontánea, la velocidad de la marcha, la fuerza de agarre, etc. (Mokry, 1995). Estos test pueden servir para hacer una valoración más fina del parkinsonismo inducido por 6-OHDA. En animales lesionados unilateralmente se comparan el lado ipsilateral y contralateral a la lesión, pero en animales lesionados bilateralmente es necesaria la comparación con animales a los que se haya inyectado suero salino en las mismas coordenadas que a los lesionados. Figura 2. Efecto de apomorfina y anfetamina en ratas lesionadas (A) Cuando reciben anfetamina, rotan hacia el lado de la lesión (La anfetamina induce el aumento de dopamina (DA) en el estriado y actúa sobre los receptores D2, que aumentan en el lado lesionado. (B). Se observa el efecto de la apomorfina que se une a los receptores D2, con lo que la dopamina no puede actuar sobre ellos. Fuente Sociedad Española de Neurología, (2009). 2.5 DETERIORO COGNITIVO En medicina, los trastornos de las funciones cognitivas se asocian generalmente con las llamadas ‘demencias degenerativas primarias’, de especial importancia por su alta frecuencia y prevalencia en las poblaciones con un índice de envejecimiento creciente, típicas de los países desarrollados. Se trata de un grupo heterogéneo de enfermedades 34 caracterizadas por un deterioro mental progresivo que incluye combinaciones variables de pérdida de memoria, alteraciones del juicio, el cálculo, el lenguaje, la orientación, las habilidades y la conducta, y trastornos psiquiátricos. Los hallazgos anatomopatológicos de este grupo de enfermedades consisten en la pérdida de neuronas, localizada preferentemente en la corteza cerebral, junto con cambios degenerativos de las neuronas supervivientes, inclusiones proteicas y alteración vascular y de la glía. La localización de la pérdida neuronal y la naturaleza de los cambios degenerativos y de las inclusiones son los factores que diferencian a las distintas afecciones (Bird y Miller, 2005). Ejemplos de este grupo de enfermedades degenerativas serían las demencias frontotemporales, la demencia con cuerpos de Lewy difusos y la enfermedad de Alzheimer (Navarrete et al., 2008). Esta última es el prototipo de enfermedad demenciante neurodegenerativa por excelencia, al ser la más frecuente y la mejor estudiada (Sarasa, 2006). Sin embargo, a medida que el interés por el estudio de las funciones intelectuales ha ido aumentando, se ha comprobado que existen alteraciones cognitivas en otras enfermedades neurológicas degenerativas cuyas manifestaciones cardinales consisten en un trastorno del movimiento, como las ataxias cerebelosas, las enfermedades de las motoneuronas o las distrofias musculares, y que engloban a la enfermedad de Parkinson (Campos Romo, 2008), el temblor esencial , la enfermedad de Huntington , la parálisis supranuclear progresiva , las ataxias hereditarias, la esclerosis lateral amiotrófica y las miopatías (Navarrete et al., 2008). El deterioro cognitivo se presenta aproximadamente en el 20 - 60% de los pacientes y es más frecuente en personas mayores, en quienes se encuentran en etapas más avanzadas, o sufren de depresión. Los trastornos depresivos poseen un impacto negativo en la cognición (particularmente en la memoria) en la EP. Se lo ha implicado como el síntoma psicopatológico no cognitivo más frecuente, pues alcanza prácticamente al 50 % de los pacientes (Goldman et al., 1998) ;( Murat, 2003); (Noéet al., 2001); (Errea y Ara, 1999). Además de los desequilibrios motores, otros síntomas se presentan en pacientes con EP que incluyen déficits cognitivos. La demencia -como se denomina a este tipo de daños 35 en los pacientes con EP-, es una degeneración global de la función cognitiva y se encuentra dentro de las más temibles complicaciones de la EP. Los pacientes con EP que desarrollen este tipo de demencia, tienen de 2 a 5 veces más riesgo de morir. (Lieberman, 1997). Existe evidencia de que los síntomas cognitivos encontrados en pacientes con EP, están relacionados con disfunción ejecutiva, en particular, memoria de trabajo e incluso planeación y solución de problemas. (Fernándes et al, 2008). El síndrome de mala ejecución representa el centro de los daños cognitivos y demencia observados en la EP, y aparece incluso durante las etapas tempranas de la enfermedad. La función ejecutiva describe un amplio rango de funciones cognitivas requeridas para los objetivos dirigidos, comportamiento adaptativo en respuesta a lo nuevo, situaciones de cambio medioambiental que incluye planeación, manejo de tareas, atención, inhibición, monitoreo y codificación. Todas estas funciones están atribuidas al Córtex prefrontal y además, las inhabilidades cognitivas de la EP son parecidas a las que presentan los pacientes de córtex prefrontal. (Da cunhaet al, 2006). Las habilidades verbales, como la lectura, la escritura y la utilización de palabras, tienden a conservarse cuando han sido bien aprendidas. Algo similar ocurre con las habilidades matemáticas y la inteligencia en general. (Kramer y Jarvik, 1979) Y (Benton et al., 1981). También, se ha afirmado que el envejecimiento normal conlleva disminución en la velocidad de procesamiento de información compleja, demoras en la solución de problemas (Craik, 1977), dificultades en la adaptación a situaciones nuevas (Kramer y Jarvik, 1979), dificultades en los procesos de abstracción y en el desarrollo de conceptualizaciones complejas y dificultades para sostener la potenciación a largo plazo (Lezak, 2004), en la percepción, en la atención y en la memoria de trabajo, cuando la tarea excede la capacidad de almacenamiento inmediato o cuando el nivel de exigencia se incrementa (Craik,1977). Esta variedad de cambios puede deberse a factores de confusión, que han comenzado a dilucidarse recientemente. Entre ellos están las variaciones de los ritmos biológicos asociados al envejecimiento (Winocur G, Hasher L, 2004) y (Buckley y Schatzberg, 2005.), las variables anatómicas, fisiológicas y emocionales, los cambios sensoriales y motores, las condiciones sociales y el nivel de desarrollo cognitivo previo (Nishizuka et al., 1991). Otras variables de confusión pueden ser el modelo experimental y los métodos y modelos de evaluación cognitiva (Savage et 36 al., 1999). El reconocer los cambios cognitivos asociados al envejecimiento es, por tanto de gran importancia actual, debido a que la problemática va más allá de un desequilibrio motor. Estos pacientes presentan también inercia psíquica la cual lentifica la actividad mental de los enfermos, sin que exista, en los casos puros, un verdadero deterioro de su psiquismo. Esta inercia psíquica viene a ser para la actividad mental lo que la rigidez y la acinesia son para la actividad motriz; representaría un bloqueo de la personalidad mental del paciente, similar al bloqueo que la rigidez y acinesia ejercen sobre los músculos (Green et al., 2002) ;(Pata y Margolin, 1994). Pese al espectacular avance de las técnicas y los conocimientos en neuroimagen, neuroquímica, neurogenética, neuropsicología, neurofisiología y neurofarmacología, la investigación con pacientes presenta importantes limitaciones que hace imprescindibles los estudios experimentales con modelos animales de los distintos tipos de disfunción cognitiva. Hay una gran variedad de modelos animales de deterioro cognitivo, clasificados en función del mecanismo por el que éste se produce, sea selección o manipulación genética, utilización de agentes ambientales durante el desarrollo o la edad adulta, o manipulación farmacológica de la respuesta cognitiva del animal. Aunque los estudios in vitro de tejido cerebral tienen su interés, en el campo de la farmacología cognitiva es necesario utilizar uno o varios modelos animales para determinar la utilidad de un nuevo fármaco y su posología, debido a la complejidad de la función cognitiva, en la que intervienen múltiples estructuras cerebrales interconectadas (Navarrete, 2008).Por esto vale la pena recalcar la importancia del desarrollo de una batería comportamental, que sea sensible a los cambios cognitivos en animales lesionados y controles, ya que los buenos resultados histológicos no describen la evolución y respuesta positiva del organismo. 2.6 MEMORIA DE TRABAJO La memoria de trabajo constituye un proceso cognitivo fundamental para el desarrollo de procesos psicológicos más complejos, tales como el control ejecutivo (Isawa, 2001), la adaptación social (lezak, 2004), las demencias, la esquizofrenia (Castner et al., 2004; Marshuetz, 2005) y el abuso de sustancias (Santi y Weise ,1995). 37 Los sistemas anatómicos relacionados con la memoria de trabajo son, principalmente: la corteza prefrontal dorso-lateral, el campo visual frontal, las regiones rostrales y caudales de la corteza dorsal (Shintaro y Kazuyoshi, 2003; Srimel y Curtis, 2007), las cortezas parietal y visotemporal (Fuster y Alexander, 1971; Dalley,2004) y el lóbulo temporalmedial, particularmente la formación del hipocampo (Squire, 1992; Ruchkin, 2003), el diencéfalo medial, especialmente el núcleo dorso-medial del tálamo, que mantiene la información durante los períodos de ausencia de estimulación visual o actividad motora y el núcleo caudado (Gazzaley et al., 2004; Pessoa y Ungerleider, 2004; Squire,1992; Byatt y Dalrymple-Alford, 2001), la región medial del lóbulo cortical VII del cerebelo y sus conexiones con la corteza prefrontal del cerebro en la manipulación, control del movimiento y mantenimiento de la memoria (Pessoa y Ungerleider, 2004; Hayter, 2007). La memoria de trabajo es fundamental para realizar un análisis y síntesis de la información, retener datos necesarios para la consecución de un determinado proceso mental, participar del priming (impresión mnésica de algo vivido, como por ejemplo palabras, objetos o eventos), realizar una actividad tutora perfuncional y las monitorizaciones posfuncionales. La afectación de los mecanismos básicos propios de la memoria de trabajo provocará una disfunción que influirá en un sin número de procesos de aprendizaje formal académico: dificultad en el manejo de la dirección de la atención, dificultad en inhibir estímulos irrelevantes, dificultad en el reconocimiento de los patrones de prioridad, falta de reconocimiento de las jerarquías y significado de los estímulos (análisis y síntesis),impedimento en formular una intención, dificultad en reconocer y seleccionar las metas adecuadas para la resolución de un problema; imposibilidad de establecer un plan de consecución de logros, falta de análisis sobre las actividades necesarias para la consecución de un fin y dificultades para la ejecución de un plan, no logrando la monitorización ni la posible modificación de la tarea según lo planificado (Etchepareborda y Abad-Mas, 2005). Por lo tanto, es fácil entender cómo el agotamiento anormal de los niveles de dopamina en estas regiones del cerebro como se observa en la EP puede afectar de trabajo memoria. De la misma manera, la atención y 38 otras funciones ejecutivas de la corteza prefrontal se verá afectado por la disminución de dopamina en el cuerpo estriado y corteza prefrontal (Dubois y Pillon 1997; Owen 2004) 2.7 LABERINTO CIRCULAR DE BARNES Es una prueba que permite estudiar el aprendizaje y la memoria espacial, trabajo y de referencia, y la memoria a corto y largo plazo así como otras tareas más complejas en ratas y ratones. “Fue diseñada por Barnes en la Universidad de Arizona (Barnes, 1979) y consiste en un laberinto seco donde se utilizan luz y ruido como estímulos aversivos. El refuerzo que recibe el animal es escapar de estos estímulos. El laberinto está constituido por un disco de plástico opaco elevado del suelo mediante un trípode (Fig. 3). A lo largo del perímetro del disco se distribuyen 20 agujeros de 5 cm de diámetro y debajo de uno de ellos se coloca un cajón de escape de plástico opaco. Figura 3. Laberinto de Barnes El animal se sitúa primero en el centro de aparato en una cámara de inicio y a continuación se le deja que explore los diversos orificios ante la exposición a estímulos aversivos, como luces y sonidos. Se evalúa el tiempo que emplea en encontrar la salida que conduce al cajón refugio. Fuente: Navarrete et al., (2008) Se pueden situar diversas pistas espaciales alrededor del cilindro, que permanecerán constantes durante todo el estudio, y también se pueden colocar debajo de algunos agujeros cajones falsos en los que parece posible introducirse, pero cuyo espacio disponible es en realidad tan pequeño que impide que el animal se pueda esconder. Un 39 foco de luz (de unos 150 W) y un generador de ruido (sobre 80 dB) constituyen los estímulos aversivos. El procedimiento comienza con un entrenamiento que consiste en colocar el animal en la caja de escape y dejarlo allí durante un minuto, para continuar un minuto más tarde con las diversas sesiones de exploración. Todas las sesiones empiezan colocando el animal en el centro del laberinto en el interior de una ‘cámara de inicio’, que consiste en un cilindro opaco de unos10 cm de alto. Al cabo de 10 segundos, se retira la cámara de inicio, se conectan la luz y el zumbido, y se deja que el animal explore el laberinto. El estrés producido por estos estímulos inducirá al animal a buscar un espacio cerrado donde esconderse. La sesión termina cuando el animal encuentra el túnel de escapeo cuando transcurren cinco minutos, momento en el que se le introduciría manualmente en dicho túnel. Cuando el animal entra en la cámara de escape, los estímulos aversivos cesan y se le deja en la oscuridad un minuto antes de devolverlo a su jaula. El túnel de escape está situado siempre debajo del mismo agujero, que se elige de forma aleatoria para cada animal. La prueba se realiza durante varios días hasta que en siete u ocho pruebas consecutivas se produzcan menos de tres errores. Se valoran el aprendizaje espacial y la memoria midiendo el tiempo que invierte el animal en encontrar el cajón refugio y el número de errores que comete antes de encontrarlo. Se considerará un error cada vez que intente introducirse en un agujero que no es el correcto. Los intentos sucesivos en un mismo agujero equivocándose consideran el mismo error” (Navarrete et al., 2008). 40 3. METODOLOGIA Se estableció un diseño metodológico (Figura 4), el cual contempla la selección de organismos, tratamientos y análisis. Figura 4. Organigrama de metodología El diseño experimental tiene una duración de 3 meses. Fuente: autor. 41 3.1 ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN 3.1.1 Manutención de Ratas Wistar. La investigación desde sus orígenes ha requerido la utilización de animales de laboratorio desde sus primeros estudios anatómicos comparados, hasta la utilización de ellos como reactivo biológico. En la búsqueda constante de la verdad y de mejorar las condiciones de salud y bienestar de la sociedad, el hombre se apoya en el uso de animales, sin olvidar que su naturaleza sintiente y el debido respeto que merecen. Los modelos animales de trastornos cognitivos desempeñan un papel clave en la comprensión de las bases neuroquímicas de la función/disfunción cognitiva. Con su utilización podemos profundizar en las bases fisiopatológicas del deterioro que se produce por el simple hecho de envejecer o el que aparece asociado a diferentes situaciones patológicas, como la enfermedad de Alzheimer, la enfermedad de Parkinson, las demencias vasculares, la gangliopatía amiloide cerebral, las enfermedades priónicas, la esclerosis lateral amiotrófica, la enfermedad de Huntington, la esquizofrenia y otras enfermedades neurodegenerativas. Además, los modelos animales nos permiten comprobar la eficacia de nuevos fármacos e identificar posibles dianas terapéuticas (Navarrete et al., 2008) 3.1.2 Características de las Ratas Wistar. La rata (Rattus norvegicus, variedad albina, cepa Wistar). Es comúnmente utilizada en estudios de comportamiento por diversas razones. En primer lugar, su pequeño tamaño posibilita que puedan ser almacenadas en pequeños espacios. También presenta una gran capacidad de exploración, lo cual es importante porque estas virtudes la hacen apta para ser sometidas a pruebas de actividad espontánea y aprendizaje. Favorablemente, posee cortos periodos de gestación y cría de 20 a 22 días permiten disponer de sucesivas generaciones de manera muy fácil. Hoy en día existen numerosas pruebas que permiten al investigador registrar una serie de variables indicativas de actividad motora, emotividad y exploración. Por lo tanto, es 42 necesario tener claro que la rata es un animal de costumbres nocturnas que forma colonias en madrigueras estrechas. Este modo de vida hace que la rata presente una marcada fotofobia y tendencia a desplazarse con su cuerpo en contacto físico con paredes y objetos (tigmotaxia). 3.1.3 Conducta exploratoria en la Rata Wistar. El comportamiento es un mundo de respuestas a estímulos externos los cuales implican el intercambio regulatorio entre diversas zonas del sistema nervioso central (SNC), estas zonas están a cargo del control de diferentes aspectos de la conducta. Por lo tanto la medición y valoración de cualquier tipo de tratamiento experimental solo conseguirá con la medición de parámetros indicativos de diversos tipos de comportamiento, tanto en ausencia como en presencia de estrés y los cuales puedan ser reproducibles a igualdad de condiciones. 3.1.4 Universo experimental .Para los ensayos experimentales y el proyecto mismo, Se tuvieron en cuenta 27 ratas Wistar macho proporcionados y mantenidos en el bioterio de Experimentación Animal del Grupo Modelos Experimentales para las Ciencias Zoohumanas (Me-CZH) adscrito a la Facultad de Ciencias de la Universidad del Tolima, con peso entre 250 y 300g respetando los requerimientos estadísticos, exigidos, la especie y línea apropiada. Se mantuvieron en cajas tipo T-4 en la proporción de 4 animales por cajas. Se respetaron las condiciones de mantenimiento según las normas establecidas para la manutención de roedores en un Bioterio; humedad 50-80%, temperatura de 21° +/- 1C, fotoperiodo de 12:12 luz/oscuridad. Atendiendo parámetros zootécnicos para la especie, una alimentación controlada 15g/día/animal de concentrado para roedores peletizado de LabDiet y agua ad-libitum. El personal que manejo los animales de estudio está entrenado y calificado en el manejo de animales de laboratorio para evitar la generación de niveles altos de stress, Se tuvo como principal premisa el cumplimiento de las BPL (Buenas Practicas De Laboratorio) para el mantenimiento y experimentación con animales de laboratorios, las 3Rs (Rusell & Burch, 1959, en Zúñiga, Tur, Milocco & Piñero, 2001). 43 3.1.5 Grupos experimentales. Fueron distribuidos 27 individuos en tres grupos experimentales (Tabla1). A los individuos se les realizó un test neurológico y pole test a cada uno, garantizando un estado óptimo a nivel del sistema nervioso. Tabla 1. Grupos experimentales utilizados en el estudio Lesión Sustancia Nº de animales Función dentro del estudio Ninguna ningunaa 9 Animal sano, con capacidades cognitivas en buen estado. Sham SNpc Solución salina b 9 Animal con manipulación quirúrgica sin neurotoxina Lesionado SNpc 6OHDA- HCl - c 9 Animal con neurotoxina 6-OHDA Grupo Control A los organismos se les inyecto intracerebralmente: a Ninguna solución; b A una concentración de 0.9% con 0.2 mg/ml de ácido ascórbico; y c A una concentración de 8 µg /3 µL de solución salina Fuente: autor 3.1.6 Inducción del hemiparkinsonismo. Los animales se anestesiarán con una dosis conjunta Ketamina/xilaxina (Ketamina 50 µg/ kg/ Xilacina 20 µg/kg de peso corporal) de manera intraperitoneal, y serán colocados en el aparato esterotáxico para roedores. Una lesión unilateral de la SNpc se realizará por medio de una inyección de un volumen de 3µl de una solución de 6OHDA- HCl- 8µg/3µl de solución salina, en el hemisferio derecho con la ayuda de una jeringuilla Hamilton de 10µl, y a una velocidad de 1µl/min (Figura 5). Figura 5. Inyección intracerebral Procedimiento quirúrgico de inyección intracerebral de 6OHDA en los sujetos de estudio. Fuente: autor 44 La inyeccion fue realizada en las coordenadas esterotáxicas: AP (antero-posterior)= 4.4 mm posterior de Bregma, ML (medio-lateral)= 1.2 mm a la derecha de la línea media y DV(dorso-ventral)=7.8 mm por debajo de la duramadre (Paxinos & Watson, 2005) (Figura 6). Figura 6. Coordenadas estereotáxicas de lesión para el modelo de SNpc La zona marcada con rojo señala el punto de inyección de la 6-OHDA en la SNpc Fuente: George P & Charles W. (2005). En este trabajo se utilizaron como Sham, animales a los cuales se les aplicó intracerebralmente el vehículo (Solución salina 0.9% con 0.2 mg/ml de ácido ascórbico) en los puntos de lesión, pues es el control más utilizado en estudios experimentales de enfermedad de Parkinson (Sherman y Moody, 1995; Pavón et al, 1998; Rojo et al, 2002). 45 3.2 PRUEBAS CONDUCTUALES Las pruebas conductuales mencionadas a continuación se realizaron un mes después de realizada la lesión cerebral con 6-OHDA, con el propósito de evaluar la evolución de los animales en el desempeño de las pruebas como también para realizar la correlación con los estudios histológicos. 3.2.1 Actividad Rotatoria. Para evaluar la lesión se llevó a cabo la prueba de actividad rotatoria inducida por inyección intraperitoneal de apomorfina (0.5mg/kg de peso), 1 mes después de producida la lesión. La conducta rotatoria se evaluó por el número de vueltas completas (360º) ipsilateral a la lesión en 15 minutos luego de la inyección de apomorfina con la cual se miden total de vueltas por minuto. (Figura.7) Figura 7. Test de actividad rotatoria Test de actividad rotatoria que muestra la dirrecion de rotacion de los individuos al administrarsele el agonista dopaminergico 46 3.2.2 Test Neurológico. El Test neurológico consiste en una serie de pruebas que permiten determinar que los animales estén en condiciones normales. Los animales de los 3 grupos experimentales, se les realizarón diferentes pruebas y el pole test para evaluar el estado de su actividad sensoriomotora (Tabla 2 y Figura 8 ). Tabla 2. Descripción de pruebas realizadas en el Test neurológico y Pole test Pruebas Descripción Reflejo de caida Reflejo que corrige la orientación del cuerpo cuando se toma fuera de su posición vertical normal. Reflejo de flexiontension Reflejo de corrección Reacción de apoyo (Tactismo y vibrisas) Es un reflejo de las extremidades el cual cuando estas son estiradas tienden a recogerse. Cuando el animal es dispuesto boca arriba en una superficie plana el tiende a corregir posición. Suspensión de la rata a partir de la cola y se acerca a una superficie plana. Por lo cual ella busca equilibrarse. Localización visual Se suspende la rata horizontalmente de tal manera que las patas anteriores alcancen la superficie. pole test. El animal se coloca en la cima de un tubo de 60 cm de largo por 3 cm de diámetro. Por el que deberá descender en un tiempo Max. de 60 seg.se tendrán en cuenta la corrección de la posición, numero de extremidades usadas y el uso de la cola. Fuente: Tomado de Bures & Buresova, (1983) y modificado por el autor. Figura 8. Test neurológico Pruebas del Test Neurologico: A.reflejo de caida, B.reflejo flexion-tension, C.reflejo de corrección, D.reaccion de apoyo, E.localizacion visual y F.Pole Test. Fuente: Autor 47 3.2.3 Test De Barnes Modificado. El test (Figura 9) consta de una superficie plana y circular con agujeros alrededor que permite al animal huir del laberinto a una caja de escape. El color de la plataforma, la luz sobre la misma y el ruido, crearon un efecto aversivo en los animales a evaluar. Al ejecutar el test se utilizaron las siguientes claves: Claves Extra-laberínticas: Planteadas en el test original pero eliminadas en este estudio, el test será realizado en un cuarto acortinado de color oscuro. Claves intra-laberínticas: Sobre la superficie del test se colocó 1 bandera de color blanco la cual contrasta con el salón oscuro e indica el sitio de la caja de escape. Estos objetos se cambiaron de lugar de manera aleatoria para que el animal aprenda los movimientos por asociación agujero de escape-bandera. Figura 9. Test de Barnes modificado La superficie tiene 1,22 metros de diámetro, hecha en triplex y forrada con fórmica de color blanco. Tiene 18 agujeros de 9,5cm de diámetro cada uno, espaciado a 30° uno de otro y forrado con fórmica de color negro y la base tiene 90cm de alto. La caja de escape tiene 38,7cm de largo, 12,1 cm de alto y 14,2cm de ancho, está hecha de acrílico de color negro. Diecisiete de los dieciocho agujeros están tapados con plástico de color oscuro. De esta manera se aseguró un ambiente similar en todos los agujeros. Sólo se encuentra destapado, el agujero escape, que está señalizado con la clave extralaberíntica, de la que se hablará más adelante. A la altura de la caja de arranque, estará una fuente lumínica de 150W, y un parlante que emitirá un sonido blanco de 90 db. Fuente: Autor. 48 La ejecución del test de Barnes modificado se realizó en varios periodos: Período de aclimatación: Las pruebas fueron realizadas durante las horas de la mañana para evitar que los picos de cortisol que se elevan en las horas de la tarde, influyeran en el comportamiento de los animales. Los animales de los 3 grupos se manipularon durante 5 minutos antes de la prueba para reducir los niveles de estrés y su influencia en los ensayos de la prueba. (V. Vargas-López et al, 2011). Período de Habituación: Se realizó 1 sesión de habituación al laberinto, en la que se colocaron indistintamente a los sujetos experimentales en la caja de arranque, plataforma y la caja de escape durante 5 minutos en cada uno. Periodo de adquisición: Luego de las sesiones de habituación, se empezó con la evaluación del daño cognitivo: Se realizaron 8 ensayos cada uno de 1 minuto por 3 días. Luego de que los animales estuviesen dentro de la caja se esperaron 5 segundos y luego se dispuso al animal para el siguiente ensayo. Entre cada ensayo, la caja de escape y la plataforma se limpiaron con alcohol al 70% para evitar que exista un rastro fijado por la orina y las heces fecales. Cada ensayo al igual que las sesiones fueron grabadas en una video cámara, las distancias fueron registradas en un tabla digital y estandarizadas de acuerdo al diámetro de la plataforma de Barnes Modificado. 3.3 TÉCNICAS HISTOLÓGICAS El procesamiento histológico de los tejidos cerebrales fue llevado a cabo en el Laboratorio de Biotecnología Aplicada de la Universidad del Tolima (LABIOA-UT) Para el análisis histológico 3 animales de cada uno de los grupos se anestesiaron con sobredosis de Pentobarbital y se perfundierón por el método de gravedad utilizando 250ml de solución salina 0.9% y 250ml de paraformaldehído al 4% por cada animal; los cerebros fueron extraídos y post fijados en paraformaldehído al 4% por un intervalo de 24 a 48 horas a 4ºC, posteriormente sometidos a un gradiente ascendente de sacarosa (7%, 25% y 30%) a 4ºC y luego fueron criopreservados a -20ºC, hasta la realización de los cortes. 49 /RV FHUHEURV IXHURQ FRUWDGRV HQ VHFFLRQHV FRURQDOHV GH ȝP GH JURVRU HQ XQ 9LEUiWRPR /HLFD 97 6 )LJXUD SUHYLR DO FRUWH VH UHDOL]y XQD PDUFD HQ HO KHPLVIHULRL]TXLHUGRKHPLVIHULRLQWDFWRDQLYHOGHFRUWH]DFRQHOSURSyVLWRGHQRSHUGHU ODRULHQWDFLyQGHORVWHMLGRVSDUDHOOOHYDUDFDERODWLQFLyQGH1LVVOVHHVFRJLHURQORV FRUWHVFRUUHVSRQGLHQWHVDORV%UHJPDVVHJ~Q3D[LQRV:DWVRQ )LJXUD ORV FXDOHV IXHURQ PRQWDGRV VREUH SODFDV JHODWLQL]DGDV JHODWLQD SRUFLQD )LJXUDRSXHVWRVHQFDMDVPXOWLSR]RSDUDODWLQFLyQGH1LVVOUHVSHFWLYDPHQWH )LJXUD9LEUiWRPR 9LEUiWRPR/HLFD976XWLOL]DGRHQODUHDOL]DFLyQGHFRUWHVFRURQDOHVGHFHUHEUR 50 Figura 11. Bregmas utilizados en el análisis histológico Fuente: Paxinos G & Watson C.( The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates). 51 3.3.1 Tinción de Nissl La tinción de Nissl es una de las técnicas clásicas más utilizadas actualmente, en ella se emplean colorantes derivados de anilina como el violeta de cresilo, rojo neutro o azul de toluidina, que debido a su carácter básico poseen alta afinidad por los ácidos nucleicos de las neuronas, dado que el soma neuronal posee grandes concentraciones de ácidos nucleicos en el núcleo, el nucléolo y los ribosomas, en particular los adheridos al retículo endoplásmico rugoso o sustancia de Nissl (Rodríguez et al, 2005), mediante esta técnica se buscó tincionar los somas de todas las neuronas de la muestra de tejido y de esta manera se determinó despoblamiento neuronal un mes de transcurrida la lesión y de aplicar las pruebas a los animales, para el desarrollo de esta técnica se siguió el protocolo utilizado en el Laboratorio de Modelos Experimentales para las Ciencias Zoohumanas (ME-CZH) de la Universidad Del Tolima. Una vez los cortes montados en las placas estaban secos fueron hidratados en agua durante 1 minuto y luego llevados al colorante básico (azul de toluidina, 1%, pH: 4) durante 17 minutos, seguidamente el exceso de colorante fue eliminado a través de un lavado activo en agua durante 1 minuto y los tejidos fueron sometidos a deshidratación creciente en alcoholes del 70% durante 2 minutos, posteriormente del 96% por 2 minutos y finalmente del 100% durante 4 minutos. Para terminar las láminas de embebieron en xileno por un periodo de 10 minutos y se sellaron con Cónsul-Mount. Las placas fueron analizadas a través de microscopio de luz Advanced Optical y las imágenes fueron tomadas con cámara digital. Figura 12.Cortes histológicos Cortes de cerebro de rata listos para pasar a tinción y posteriormente ser observados al microscopio. Fuente: autor 52 3.4 ANÁLISIS DE DATOS Prueba rotacional inducida con apomorfina. Para evaluar la lesión en SNpc con 6OHDA y de esta manera determinar la eficacia del modelo, se contaron como mínimo siete vueltas por minuto como indicador positivo de lesión. Test neurológico. El Test Neurológico es una prueba cualitativa sin embargo se ajustó la valoración de la prueba de cualitativo a cuantitativa donde el valor cero (0) corresponde a error o prueba no realizada y el valor uno (1) corresponde a acierto en la prueba; Se realizó una comparación entre los tres grupos (Control, Sham y Lesionado) con una anova. Pole Test. Se tuvo en cuenta para valorar esta prueba el número de extremidades y cola utilizados por el animal en la ejecución de la misma, se dio valor cero (0) a prueba perfecta si el animal usa las 4 extremidades y la cola, valor uno (1) 4 extremidades sin la cola, valor dos (2) 3 extremidades y la cola, valor tres (3) 2 extremidades sin la cola y valor cuatro (4) 1 extremidad sin la cola. Test de Barnes Modificado. Para determinar el daño cognitivo en los grupos experimentales se utilizaron las siguientes variables cuantitativas: lateralidad, latencia de exploración, distancia recorrida, número de errores y un mero de aciertos (tabla 3). Tabla 3.Variables tenidas en cuenta en el laberinto de Barnes modificado Variable Latencia del Distancia Numero Numero de Latencia de primer recorrida de aciertos escape agujero Descripción errores Tiempo en Distancia Numero Número de veces Tiempo en que el que el animal recorrida en de que el animal animal ingresa al llega y 60 segundos. agujeros encuentra el agujero de explora el erróneos agujero de escape escape. primer que en un día de agujero. explora. prueba. Fuente: autor. 53 Estudios Histológicos. Se midió la densidad de cuerpos celulares con el programa ImageJ, versión 1.42. Los test estadísticos utilizados en el análisis de los datos se realizaron a través del programa Infostat para Windows y los resultados serán evaluados en un análisis de varianza paramétrico o no paramétrico de acuerdo a la distribución de los datos y análisis post hoc cuando corresponda. Los resultados histológicos se correlacionarán con los comportamentales. 54 4. RESULTADOS 4.1 GENERALIDADES Cirugía y post operatorio La cirugía estereotáxica de lesión dopaminérgica, tuvo una duración promedio de 45 minutos por animal, después de ser anestesiado. Los animales mostraron un comportamiento dócil principalmente observado al momento de la manipulación. La supervivencia pos-operatoria fue del 100%, Sin embargo, un animal del grupo lesionado falleció antes de empezar la cirugía, debido al exceso de anestésicos usados para tal fin. Pruebas comportamentales Las pruebas comportamentales se realizaron bajo las condiciones controladas de ruido y iluminación en las horas de la mañana, los animales se aclimatizaban a la persona encargada de la manipulación durante la ejecución de las pruebas. 4.2 TINCIÓN DE NISSL La tinción básica de Nissl permitió observar de manera general la disminución celular a nivel de SNpc, (ver Figura 13 y Tabla 4) Los cortes realizados se estudiaron en las zonas -4.92 y -5.40 coordenadas estereotáxicas tomadas del libro (The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates) las cuales nos permiten apreciar el lugar exacto de la lesión estereotáxica, estas denotan su afección por la pérdida de cuerpos neuronales y fibras, característica que se encuentra principalmente en el modelo de SNpc. 4.2.1 Comparación histológica de modelo y grupo control. La comparación de los cortes cerebrales de los modelos tanto a nivel de hemisferio lesionado (derecho) como no lesionado (izquierdo), con su correspondiente control de lesión reveló que a nivel de hemisferio lesionado se produce pérdida neuronal únicamente en el punto de lesión por inyección de la toxina , pero esta no se difunde dentro de la estructura, pues no se presenta en otros cortes donde se observa la misma estructura falso lesionada; y en cuanto al hemisferio no lesionado (izq.), no se halló diferencia en la población neuronal entre los modelos y sus controles de lesión 55 Figura 13. Comparación histológica de los grupos experimentales A. SNpc hemisferio Lesionado 1 mes (10x) B. SNpc hemisferio Control 1 mes (10x) Tabla 4 Disminución neuronal entre los grupos experimentales GRUPOS CONTROL SHAM LESIONADO DISMINUCIÓN Ausente Ausente Presente 4.3 ACTIVIDAD ROTATORIA INDUCIDA POR APOMORFINA El grupo lesionado cumplió con el número mínimo de vueltas 7 contralaterales a la lesión reportada para el establecimiento de los modelos de 6OHDA, Aunque el promedio de vueltas por minuto varía entre los animales del grupo lesionado, todos los animales mostraron un máximo de rotaciones equiparable. Los Animales del grupo Control y Sham no presentaron rotación solo movimiento de vaivén. 56 4.4 TEST NEUROLÓGICO Y POLE TEST La batería sensoriomotora que comprende las pruebas del Test Neurológico y el Pole Test permitió establecer el estado Neurológico a nivel motriz y sensorial en los grupos evaluados. 4.4.1 Resultados test neurológico Tabla 5. Porcentaje de ejecución de las pruebas en el test neurológico % De ejecución de la prueba Prueba R. caída R. flex-ret extr der R. flex-ret extr. Izq. R. enderez. tren anterior. R. enderez. tren posterior. R. acercamiento plano arriba derecho R. acercamiento plano arriba izq. R. acercamiento plano horizontal derecho R. acercamiento plano horizontal izq. CONTROL Acierto Fracaso 100% 100% 100% 100% 100% 100% 100% 100% SHAM Acierto Fracaso Acierto LESIONADO Fracaso 0 100% 0 77% 22% 0 100% 0 100% 0 0 88% 12% 55% 44% 0 100% 0 100% 0 0 88% 12% 33% 66% 0 100% 0 55% 44% 0 100% 0 22% 77% 0 100% 0 44% 55% 0 100% 0 22% 77% 100% Porcentaje de acierto y fracaso en la ejecución de reflejo caída, reflejo flexión retracción extremidad derecha, reflejo flexión retracción extremidad izquierda, reflejo enderezamiento tren anterior, reflejo enderezamiento tren posterior, reflejo acercamiento plano arriba derecho, reflejo acercamiento plano de arriba izquierdo, reflejo acercamiento plano horizontal derecho y reflejo acercamiento plano horizontal izquierdo. Fuente: autor 57 5HVXOWDGRVSROHWHVW /$7(1&,$'((6&$3(32/(7(67 )LJXUD/DWHQFLDGHHVFDSHHQHO3ROH7HVW /DWHQFLDGHHVFDSHPHGLGDHQVHJXQGRVSDUDODSUXHEDGH3ROH7HVW/DSUXHEDGHQRUPDOLGDGGH6KDSLUR :LONVPRVWUyTXHORVDQLPDOHVGHORVJUXSRVH[SHULPHQWDOHVVHFRPSRUWDURQGHODVLJXLHQWHPDQHUD &RQWURO S 6KDP S \ /HVLRQDGR S 'H DFXHUGR FRQ OR PRVWUDGR ORV GDWRV DUURMDGRVSRUHVWDSUXHEDQRVRQQRUPDOHV 8QDYH]UHDOL]DGDODSUXHEDGHQRUPDOLGDG VHHMHFXWyXQ DQiOLVLVGHYDULDQ]DQRSDUDPpWULFDPHGLDQWHHO7HVWGH.UXVNDO:DOOLVHOFXDODUURMRXQS ORFXDO LQGLFD TXH QR KXER GLIHUHQFLD VLJQLILFDWLYD HQWUH ORV JUXSRV H[SHULPHQWDOHV 6LQ HPEDUJR H[LVWH XQD WHQGHQFLDDODGLIHUHQFLDFLyQHQWUHORVJUXSRV6KDPPHGLD\/HVPHGLD )XHQWHDXWRU 58 180(52'((5525(632/(7(67 )LJXUD1~PHURGHHUURUHVHQHO3ROH7HVWSRUJUXSR 1XPHURGHHUURUHVUHDOL]DGRVSDUDODSUXHEDGHSROHWHVW/DSUXHEDGHQRUPDOLGDGGH6KDSLUR:LONV DUURMy TXH ORV DQLPDOHV GH ORV JUXSRV H[SHULPHQWDOHV VH FRPSRUWDURQ GH OD VLJXLHQWH PDQHUD &RQWURO S 6KDPS \/HV (VWRVUHVXOWDGRVLQGLFDQTXHORVLQGLYLGXRVSHUWHQHFLHQWHVD ORVJUXSRVVHFRPSRUWDURQGHPDQHUDQRUPDO8QDYH]UHDOL]DGDODSUXHEDGHQRUPDOLGDGVHHMHFXWyXQ $QRYDHOFXDODUURMRXQS VHJXLGRGHXQDQiOLVLVSRVKRFFRQHOWHVWGH7XNH\GRQGHVHHQFRQWUy TXHKD\XQDGLIHUHQFLDPX\VLJQLILFDWLYDHQWUHORVJUXSRV&RQWURO\6KDPFRQUHVSHFWRDOJUXSROHVLRQDGR )XHQWHDXWRU 59 5HVXOWDGRVWHVWGH%DUQHV 7DEOD 5HVXOWDGRV SUXHED GH 1RUPDOLGDG 6KDSLUR :LONV 3 SDUD ODV YDULDEOHV HYDOXDGDVHQHO7HVWGH%DUQHVPRGLILFDGR /DSUXHEDGH1RUPDOLGDGGH6KDSLUR:LONVHYDO~DVLODPXHVWUDGHXQDSREODFLyQHVWiGLVWULEXLGD QRUPDOPHQWH )XHQWHDXWRU 60 7DEOD5HVXOWDGRV7HVWGH.UXVNDO:DOOLVSSDUDODVYDULDEOHVHYDOXDGDVHQHO7HVW GH%DUQHVPRGLILFDGR 7HVWGH.UXVNDO:DOOLVSHUPLWHFRPSDUDUORVJUXSRVHQVXGHVHPSHxRSRUGtDVGHSUXHED*FRQ*UXSR &RQWURO*VKDP*UXSR6KDP*OHV*UXSR/HVLRQDGRS!QRHVVLJQLILFDWLYR )XHQWHDXWRU 61 Tabla 8. Resultados Test de Friedman (p) para las variables evaluadas en el Test de Barnes modificado. Test de Friedman me analiza la evolución de los grupos en los días de prueba. Dia1 (primer día de prueba), Dia2 (segundo día de prueba), Dia3 (tercer día de prueba) ; significancia simbólica : grupos con letra en común no son significativamente diferentes. Fuente: autor 62 )LJXUD/DWHQFLDGHOSULPHUDJXMHURHQHO7HVWGH%DUQHVPRGLILFDGR )XHQWHDXWRU )LJXUD1XPHURGHDFLHUWRVHQHO7HVWGH%DUQHVPRGLILFDGR )XHQWHDXWRU 63 )LJXUD'LVWDQFLDUHFRUULGDHQHO7HVWGH%DUQHVPRGLILFDGR )XHQWHDXWRU )LJXUD1XPHURGHHUURUHVHQHO7HVWGH%DUQHVPRGLILFDGR )XHQWHDXWRU 64 )LJXUD/DWHQFLDGHHVFDSHHQHO7HVWGH%DUQHVPRGLILFDGR )XHQWHDXWRU )LJXUD&XUYDGHDSUHQGL]DMHGHORVWUHVJUXSRVHQORVGtDVGHSUXHED (OJUDILFRPXHVWUDODDVLQWyWLDGHODVFXUYDVORFXDOOOHYDDREVHUYDUHODSUHQGL]DMHGLVPLQX\HODODWHQFLD GtDDGtDGHPDQHUDHILFLHQWHHQORVJUXSR&21752/\6+$0DXQTXHHOJUXSROHVLRQDGRWDPELpQ GHPXHVWUDDSUHQGL]DMHVXWLHPSRGHHMHFXFLyQHVODUJR )8(17(DXWRU 65 5. DISCUSIÓN La enfermedad de Parkinson ha sido ampliamente estudiada a través de diferentes modelos, dentro de los cuales el más utilizado es el modelo de lesión con 6-OHDA en SNpc o MFB en ratas (Jin y Lacouitti, 1995; Jeon et al, 1995;Sherman y Moody, 1995; Pavón et al, 1998; Rojo et al, 2002; Reum et al,2002), las fibras dopaminérgicas son destruidas por la inyección unilateral de la neurotoxina 6-hidroxidopamina (6-OHDA) en el striatum, la sustancia nigra pars compacta (SNpc) o su principal eferencia, el haz prosencefálico conocido como vía nigroestriatal (VNE) (Schober, 2004).Al realizarse las pruebas comportamentales que direccionan este ensayo, el test Neurológico mostró diferencias en los porcentajes de ejecución por cada prueba entre los grupos. Los individuos del grupo control tuvieron un éxito del 100% de ejecución en las pruebas lo que indica que las condiciones sensoriomotoras de los animales son aptas y fiables para ser comparados con individuos de los grupos Sham y Lesionado; el grupo Sham realizó la mayoría de las pruebas con un 100% de acierto a excepción de las pruebas de reflejo flexión y retracción pata posterior izquierda y reflejo de enderezamiento tren posterior las cuales tuvieron un 88% de acierto en el desempeño de las pruebas lo cual muestra que un animal del grupo Sham pudo haber sido afectado en la ejecución de la cirugía estereotáxica comprometiendo zonas cerebrales encargadas de la ejecución motora. Sin embargo, cuando se compara la ejecución del grupo lesionado en esta prueba con el Sham, (correspondiente al 12% -ver tabla Nº5) no es alto por lo que puede decir que la cirugía no tiene influencia significativa en el desempeño motor-cognitivo que pueda afectar los resultados del presente estudio, incluso en animal del grupo Sham. Como se esperaba los animales del grupo Lesionado mostraron un deterioro motor severo que se comprobó mediante la prueba de rotación con apomorfina la cual dio como resultado un número mayor a 7 vueltas/min. El test neurológico arrojó los siguientes porcentajes de acierto: reflejo flexión- retracción inferior -izquierda 56% ,reflejo de enderezamiento tren posterior 66%,reflejo de acercamiento plano arriba derecho 56%, reflejo de acercamiento plano de arriba izquierdo 23%, reflejo de acercamiento plano horizontal derecho 45% y reflejo de acercamiento plano horizontal izquierdo 23%. Los anteriores resultados permiten inferir que la lesión con 6OHDA en la SNpc ocasionó una disminución de 66 aproximadamente el 90% de la población celular de esa zona. En ese orden de ideas, es apropiado decir que debido a esta lesión, los animales mostraron fallas en la ejecución de movimientos con una tendencia mayor en las extremidades izquierdas y en el tren posterior, como lo menciona Zigmond et al., 2002 & Woodlee y Schallert, 2004: La lesión puede resultar en una disminución drástica de las concentraciones de dopamina (DA) causando una asimetría funcional de moderada a severa. Lo cual indica que los animales a los que se les practicase dicha lesión tendrán déficit motor y cognitivo, ya que la sustancia nigra es uno de los núcleos moduladores de dichos procesos integrados en la ejecución de movimientos y de tareas programadas. El predominio de una de las dos vías nigroestriatales se manifiesta en asimetría postural y de movimientos, cuya dirección refleja, contralateralmente, el hemisferio dominante. Así mismo, los datos obtenidos en la ejecución del pole test se analizaron con una Análisis de varianza para datos no paramétricos Kruskall Walis, el cual mostró una diferencia significativa entre los grupos control y Sham con respecto al lesionado, los animales del grupo lesionado expusieron serias disfunciones motoras debido a la lesión unilateral con 6-OHDA . Dichos animales presentaban dificultad o simplemente no corregían posición, extremidades izquierdas retraídas y el uso de la cola era limitado lo cual no permitía que el animal coordinara sus 4 extremidades más la posición de la cola en pro de facilitar el descenso de la barra y lograr su objetivo, esta serie de anormalidades sensoriomotoras caracterizó al grupo lesionado como el grupo con la mayor cantidad de errores ; H(2; 27)= 18,5877; p= 0.001,Como lo confirman Schallert et al., 2000; Metz et al., 2004; Woodle et al., 2008.,Whishaw et al., 1997; Johnston et al., 1999 y Stein, 2009,las ratas no pueden usar con efectividad sus extremidades contralaterales a la lesión para iniciar el movimiento, alternar el centro de masa del cuerpo durante la locomoción o mantener el control postural. El modelo de hemiparkinsonismo en ratas se caracteriza por acinesia en la extremidad anterior contralateral a la lesión. Adicionalmente, los animales de los grupos Control y Sham desempeñaban la prueba con un número de errores mínimo, corrección de posición perfecta, utilización de extremidades y cola con agarre perfecto; salvo algunos animales que reducían su 67 capacidad de ejecución debido posiblemente a una reacción exacerbada de aversión frente a la posición de inclinación en el Pole Test. En cuanto a la evaluación del deterioro cognitivo, en Algunas de las pruebas de conducta que se emplean en especial, para la evaluación del aprendizaje y la memoria no espacial es la prueba de reconocimiento de objetos. Esta prueba es tendiente al aprovechamiento de la facultad de los roedores por la exploración de nuevos objetos y ambientes y compararlos con otros que le son familiares, como lo soportan. Baker KB y Kim JJ.,2002 y Tang YP.et al, 1999, se ha incrementado su uso como modelo de investigación y poderosa herramienta experimental para valorar los efectos de los fármacos sobre la memoria y los mecanismos neurobiológicos relacionados con el aprendizaje; al hablar de memoria hay que tener en cuenta que la ella se divide en dos tipos la implícita y la explícita, para este estudio se utiliza el recurso de memoria explicita ya que el Test de Barnes utilizara el reconocimiento de acontecimientos, lugares, hechos, situaciones nuevas, asociación de lugares de resguardo y señales de localización . (Kandel ER, 2000).La memoria explícita o declarativa engloba la retención del conocimiento de determinados acontecimientos, lugares o hechos, y en ella toma parte el lóbulo medio temporal del diencéfalo. Esta información se retiene mediante un esfuerzo consciente y a través de asociaciones nuevas. Para la evaluación del aprendizaje y la memoria espacial se ha utilizado el Laberinto acuático de Morris. Es la prueba comúnmente utilizada para el estudio de la memoria espacial, En esta prueba se evalúa el tiempo de latencia que emplea el animal en alcanzar la plataforma sumergida, que representa un estímulo reforzante de escape. Si la plataforma permanece en el mismo lugar, se evalúa la memoria espacial de referencia, y si varía, se analiza la memoria espacial de trabajo (F. Navarrete a, J.M., 2008).esta prueba hubiera servido para desarrollar el objetivo Premium de este estudio, pero, la naturaleza acuática del test, causa un efecto de estrés en la rata que puede alterar el estado de sistema nervioso desencadenando efectos adversos en la memoria (Olton, 1977). La memoria es el proceso mediante el cual el organismo adquiere, retiene y recupera información relevante acerca de su entorno y se fundamenta en cambios duraderos en el cerebro; se ha demostrado que el estrés puede alterar los procesos de memoria en función de su 68 intensidad, duración y el momento en que ocurre. Otra limitante es la actividad natatoria que principalmente caracteriza esta prueba. La particularidad del modelo animal que representa la EP, es asimétrico, debido a que la lesión se realiza sobre uno de los hemisferios del animal, con disfunciones motoras severas que dificultarían el análisis sin sesgo de la actividad neta de los animales para llegar a la plataforma, puesto que la variable reina de este test, es la latencia de escape. (Schallert et al., 2000; Metz et al., 2004; Woodle et al., 2008). El modelo de hemiparkinsonismo en ratas se caracteriza por acinesia en la extremidad anterior contralateral a la lesión demostrado a través del test de los pasos y de la prueba de habilidades motoras de las extremidades anteriores comúnmente conocido como “Prueba de la Escalera” (Whishaw et al., 1997; Johnston et al., 1999; Stein, 2009). Adicionalmente las ratas no pueden usar con efectividad sus extremidades contralaterales a la lesión para iniciar el movimiento, alternar el centro de masa del cuerpo durante la locomoción o mantener el control postural (Schallert et al., 2000; Metz et al., 2004; Woodle et al., 2008). Lo expuesto anteriormente nos permitió realizar la selección del test de Barnes para realizarle las modificaciones convenientes para convertirlo en un Test que mida el daño cognitivo, es una prueba que evitaráa que los animales alcancen estados de estrés altos y el daño motor no sea una limitante para realizar comparaciones entre los grupos Control y Lesionado. Por otro lado, en el Test de Barnes la eficiencia de ejecución de la prueba por los sujetos experimentales durante la adquisición debe mejorar progresivamente durante todo el experimento aumentando la precisión para ingresar a la caja de escape. La latencia del primer agujero, número de aciertos, distancia recorrida, el número de errores y latencia de escape son las variables tenidas en cuenta para la medición del daño cognitivo-motor causado por la 6-OHDA en Rata Wistar. Con la modificación realizada sobre el diseño original en cual se eliminaron las pistas extralaberínticas y la bandera fue cambiada de posición en cada ensayo (8 veces/día/animal) lo cual contribuye a la no utilización de la memoria espacial hipocampal la cual es empleada por el animal para aprender y recordar un lugar en un espacio definido por las señales visuales distales,( O'Keefe et al , 1975 ; Morris et al, 1982. ; Sutherland et al, 1982; .Barnes, 1988; Poucet y Benhamou, 1997) Numerosas teorías de la función del hipocampo han ido avanzado en los últimos decenios, y un acuerdo general se ha llegado a que esta estructura juega un papel en la 69 memoria y sobre todo en la memoria espacial. Evidencias clínicas y experimentales indican que múltiples áreas cerebrales intervienen en los procesos de memoria y aprendizaje. Una de estas áreas, el hipocampo, es crucial para la adquisición de memorias declarativas, particularmente para la adquisición de memorias espaciales (Mishkin, 1978). .Los animales perciben del espacio el esquema de información correspondiente a su comportamiento espacial con el uso de dos tipos de información sensorial: las señales externas suministradas por el medio ambiente y los estímulos internos suministrados por sus propios movimientos. Existen numerosas estrategias de navegación que son base de las señales internas ( ruta de integración o tigmotaxia ), las señales externas (navegación taxón ) , o una combinación de ambos ( la navegación local) (O'Keefe y Nadel , 1978 ; Gallistel , 1990 ; . Trullier et al, 1997) eliminando dichas pistas los animales se ven forzados a: organizar el mapa de ejecución del movimiento donde el primer paso es saber que la bandera conduce a la caja de escape (se explicó con anterioridad) y que ella los alejara de la luz y hará que el ruido blanco cese, de esta manera podrán estar tranquilos. Con respecto a la latencia del primer agujero el grupo control mostró diferencia significativa en el D1 y D2 de ejecución de la prueba, el grupo Sham no tuvo diferencias significativas en los días de prueba y el grupo Lesionado presentó una diferencia significativa entre el D1 y D3, lo que concuerda con lo planteado por Posner MI., 1995: El sistema de cognición en general se compone de procesos de funcionalidad y de aprendizaje y memoria. Entre los de funcionalidad, se incluyen, por una parte, procesos de ‘preatención’, en los que se realiza el filtrado de la información sensoriomotora para centrar la atención en los elementos más relevantes del entorno. El grupo Sham se desenvolvió de manera similar aunque no presenta diferencia significativa pero tiene una latencia de primer agujero con valores intermedios entre los grupo Control y grupo Lesionado, el grupo Lesionado tiene una latencia de primer agujero alta y una disminución de la latencia en el Dia3 de prueba, la presencia de lesión en GB a nivel de SNpc hace que se vea disminuída la presencia de neuronas dopaminérgicas lo cual causa el mal funcionamiento del circuito GB y se dificulté percibir la señal de la bandera. 70 Aunque el grupo Lesionado puede desempeñar la tarea, las latencias que registran sus individuos son más altas infiriendo a la vez que su aprendizaje es lento con respecto al grupo control y grupo Sham o el animal aprende pero se le dificulta el recordar como lo hizo con anterioridad Pacientes con EP en general no se ven afectados en la codificación y almacenamiento de nueva información consolidada , pero presentan dificultades en la recuperación de esta información, especialmente cuando tienen que iniciar una tarea recordando las estrategias (Dujardin &Laurent, 2003 ).; la comparación entre los grupos por día no mostró diferencia significativa aunque se observó una media mayor en el tiempo (segundos) del grupo lesionado con respecto al grupo Control y grupo Sham. El número de aciertos varió con respecto a los grupos, el grupo control reveló diferencias significativas en el D1 y D2 esto se debe a que el animal posee todas las facultades del mapa de ejecución del movimiento (ver Figura 22 y 23): donde la facilidad selectiva mediada por GB contribuye con la concentración para poder percibir la señal de la bandera y así seleccionar la estrategia , permitiendo la programación del movimiento, para ejecutar la tarea mediada por las neuronas eferentes periféricas que contribuyen con el aprendizaje del movimiento y la vuelta cerrada de retroalimentación la cual almacenará la información de la ejecución del movimiento permitiendo que en otras ocasiones sea mucho más fácil realizarlo, por tal razón un animal sano realiza los movimientos con mayor acierto.(McAuley, 2003). Por consiguiente el grupo Sham no mostró diferencia significativa pero se comportó similar al grupo Control. Para el caso del grupo Lesionado, la lesión con 6OHDA en la SNpc causa fallas en el funcionamiento de la facilidad selectiva mediada por el circuito de GB. Todo el proceso del mapa de ejecución del movimiento se ve alterado en la percepción, atención y energización del movimiento lo cual hace que el grupo lesionado aprenda, pero el daño cognitivo hace que no recuerde las habilidades motoras y ejecutivas necesarias para realizar la tarea de escape. En otras palabras, el concepto de memoria de trabajo implica la integración y mantenimiento de la información para su uso respectivo en la selección del comportamiento adecuado. (Baddeley, 2003). Todo lo anterior se corrobora en la comparación de los grupos por día de prueba donde el Grupo Lesionado presenta una diferencia significativa en los D1 y D2 con respecto los Grupo Sham y Grupo Control, pero en el Día 3 esta diferencia desaparece entre los grupos y por otra parte la curva 71 GHDSUHQGL]DMHSDUDORVJUXSRVPXHVWUDTXHORVWUHVJUXSRVH[SHULPHQWDOHVDSUHQGLHURQ SHURHOJUXSR/HVLRQDGRORKL]RGHPDQHUDOHQWDHLQHILFLHQWHPLHQWUDVODYHORFLGDGGH DSUHQGL]DMH GH ORV JUXSRV &RQWURO \ 6KDP IXH UiSLGD \ HILFLHQWH VH SXHGH REVHUYDU DVLQWyWLDHQWUHHOJUXSROHVLRQDGRFRQUHVSHFWRDORVJUXSRV6KDP\&RQWURO9HUILJXUD )LJXUD(VTXHPDGHRUJDQL]DFLyQPRWRUD (VTXHPDGHRUJDQL]DFLyQPRWRUDGHVFULWRSRU0F$XOH\HOFXDOPXHVWUDORVJDQJOLRVEDVDOHVFRPR IDFLOLWDGRUHVVHOHFWLYRVGHOSURFHVRGHFRQFHQWUDFLyQVHOHFFLyQGHODHVWUDWHJLD\HMHFXFLyQGHOPRYLPLHQWR HQHOGHVHPSHxRGHXQDWDUHD )XHQWH0F$XOH\ 72 )LJXUD+LSRWHVLVHVTXHPDGHRUJDQL]DFLyQPRWRUDHQDXVHQFLD\SUHVHQFLDGH GpILFLWGRSDPLQpUJLFR +LSyWHVLVDXWRUGHOHVTXHPDGHRUJDQL]DFLyQPRWRUDFRQYtDGLUHFWDHLQGLUHFWDGHHMHFXFLyQGHO PRYLPLHQWRODILJXUD$PXHVWUDHOFRPSRUWDPLHQWRQRUPDOGHXQVXMHWRVDQR\ODILJXUD%PXHVWUDXQ VXMHWRFRQDIHFFLyQDQLYHOGH61SF Comentado [F3]: FALTA LA FUENTE EN LAS FIGURAS 73 La distancia recorrida es una variable difícil de interpretar, con respecto a la evaluación intergrupal de los resultados obtenidos, ya que ninguno de ellos presentó diferencia significativa pero los animales del grupo control tenían una tendencia inversamente proporcional a disminuir la distancia recorrida a medida que aumentaban los días de prueba, en cuanto al grupo Sham se tiende a disminuir la distancia recorrida el D2 al igual que el grupo lesionado, aclarando que los animales lesionados por lo general poseen problemas motores severos y se quedan inmóviles lo cual hace que recorran menos distancia. Para el caso de la comparación de los grupos por día de prueba, se observa en el D1 diferencia significativa entre el grupo Lesionado y los grupos Control y Sham, en el cual el grupo Lesionado realizó un recorrido menor sobre la plataforma, la lesión a nivel GB está interfiriendo con la organización del mapa de ejecución del movimiento interfiriendo en la secuencia en que se desempeña la tarea. La capacidad de realizar una tarea exige la actividad coordinada de grupos musculares de diferentes partes del cuerpo, la integración contínua de la información sobre el estado de contracción muscular y el seguimiento visual del movimiento con el fin de hacer un ajuste adecuado de los movimientos. Los hábitos de aprendizaje consisten en aumentar la probabilidad de que un estímulo sensorial desencadena un programa de motor diseñado para una respuesta de comportamiento en particular ( Blanco & McDonald 2002 ) .; para el D2 no hay diferencias significativas entre los grupos ya que los animales de los grupos Control y Sham aprendieron y ejecutaron la prueba con un menor recorrido en cm sobre la plataforma y para el D3 el grupo Sham presentó diferencia significativa con respecto a los grupos Lesionado y Control ,ya que el grupo Control aprendió de tal manera que para encontrar la caja de escape no debía recorrer toda la plataforma, solo corregía su dirección de arranque hacia la bandera y se dirigiría a ella en línea recta de esta manera se podía comparar con el grupo lesionado que simplemente se quedaba inmóvil o la confusión lo hacía girar o alcanzar un agujero errado en donde esperaba sin moverse con la cabeza retraída, hasta pasar los 60 segundos que dura la prueba. Esto hizo que las distancias en cm se parecieran entre los grupos. En cuanto al número de errores, los grupos Control y Sham muestran una diferencia significativa entre los D1 y D3 lo cual indica que estos grupos aumentan el número de errores por día de prueba porque a medida que avanzan las pruebas se familiarizan y se 74 comportan de manera más exploratoria pueden ir directamente a un agujero y hacer contacto con los siguientes hasta encontrar el agujero con la caja de escape a diferencia del grupo lesionado que no muestra diferencia significativa por lo que no explora ; la comparación de los días entre los grupos no mostró diferencia significativa pero se pudo ver una tendencia del el grupo lesionado a cometer menos errores ya que por lo general estos animales se quedan inmóviles al no poder organizar el mapa de ejecución del movimiento. Por otra parte, el número de errores no arroja un resultado sobre el estado cognitivo del animal, ya que el grupo Control y el grupo Sham pueden cometer mayor cantidad de errores realizando la tarea de escape y el grupo Lesionado cometer menos cantidad de errores sin cumplir la tarea de escape como lo mencionó en su estudio O’Leary et al, 2010: La medida de error es engañosa en este caso, ya que no puede diferenciar un ratón que hace 3 errores y entra en el agujero de escape, de un ratón que comete 3 errores y nunca entra en el orificio de escape. Por lo tanto, la latencia para entrar en el hueco de escape es una medida más precisa del rendimiento para 129S1/SvImJ y las cepas A / J que el número de errores cometidos en el laberinto de Barnes. Latencia de escape se observa el grupo Control y el grupo Lesionado presentan una diferencia muy significativa de D1 con los D2 y D3. El grupo Sham no mostró diferencia significativa en los días pero mostró una tendencia a la diferenciación. Los tiempos de ejecución varían, el grupo Control es muy rápido con respecto al grupo lesionado pero la disminución de los tiempos en los días es inversamente proporcional (entre más ensayos realiza el tiempo de latencia es menor) esta variable es de analizarse minuciosamente ya que el grupo Lesionado posee deficiencias motoras que limitan o impiden el desempeño en la ejecución de la prueba y los grupos no se encontrarían en igualdad de condiciones que puedan evidenciar unos resultados robustos para esta variable ,la facilitación selectiva se ve afectada en la energización de la ejecución del movimiento ( ver Figura 23) .Debido a la falla que se presenta en la función motora a causa de la lesión con 6-OHDA, Como lo expresan Lúe L.F., et al. 1999 y Martínez Lage J., Martínez Lage P. y Moya. 2001: “El déficit dopaminérgico provoca una serie de modificaciones en los procesos de excitación-inhibición de los ganglios basales que producen un aumento excesivo en la actividad del núcleo subtalámico (NST) y su proyección glutamatérgica 75 excitadora, principalmente al globo pálido externo, globo pálido interno, Sustancia negra pars reticulata y sustancia negra pars compacta. La hiperactividad del núcleo subtalámico y el consecuente aumento en la actividad inhibitoria eferente desde el globo pálido interno y sustancia negra reticulata, que provoca una hipoactividad de las proyecciones motoras tálamo-cortical y del tronco encefálico, es la característica fisiopatológica principal del estado parkinsoniano. Lo cual infiere que un déficit motor marcado tiene efecto en el grupo Lesionado. En el siguiente orden de ideas se plantea la siguiente hipótesis: La disfunción ejecutiva se produce por la dificultad de percibir, procesar, discriminar y actuar con respecto a la información del entorno. La interacción entre los sentidos y el uso de ellos en PD dificulta la recepción de estímulos externos, el que posea los sentidos intactos no significa que se tenga la facilidad de discriminar, para lograrlo, se necesita realizar acciones sincronizadas con el fin de interpretar las señales del medio en el que se encuentra; el movimiento está directamente relacionado con la percepción, la anterior es la parte inicial del proceso aprendizaje por lo cual la afección de esta influye en que un enfermo de PD no pueda iniciar el proceso cognitivo de manera fluida.(ver figura 23) Como lo dicho por McAuley, 2003 los déficits motores de la EP indican claramente el papel de los ganglios basales en la ejecución del movimiento, así como en el nivel más alto de percepción y los procesos de toma de decisiones y lo dicho por Etchepareborda y Abad-Mas, 2005 ,la afectación de los mecanismos básicos propios de la memoria de trabajo provocará una disfunción que influirá en un sin número de procesos de aprendizaje formal académico: dificultad en el manejo de la dirección de la atención, dificultad en inhibir estímulos irrelevantes, dificultad en el reconocimiento de los patrones de prioridad, falta de reconocimiento de las jerarquías y significado de los estímulos (análisis y síntesis),impedimento en formular una intención, dificultad en reconocer y seleccionar las metas adecuadas para la resolución de un problema; imposibilidad de establecer un plan de consecución de logros, falta de análisis sobre las actividades necesarias para la consecución de un fin y dificultades para la ejecución de un plan, no logrando la monitorización ni la posible modificación de la tarea según lo planificado y por otra parte Blanco y McDonald 2002 mencionan que el Hábito de aprendizaje consiste en aumentar la probabilidad de que un estímulo sensorial 76 desencadena un programa motor diseñado para una respuesta de comportamiento en particular, al encontrarse alterado el sistema sensorial se hace difícil ejecutar la tarea memorizada con anterioridad. Por lo cual el Test de Barnes modificado permite evaluar los síntomas de disfunción cognitiva presentes en la enfermedad de Parkinson en sus estadios avanzados, es sensible a los síntomas de falta de percepción, procesamiento y discriminación, ya que su base se fundamenta en el mapa de ejecución del movimiento para el desempeño de una tarea aprendida con anterioridad. 77 6 CONCLUSIONES El modelo de 6-OHDA implementado en este trabajo es efectivo para semejar un deterioro cognitivo en la EP en su etapa más avanzada, por su porcentaje de degeneración a nivel SNpc, disminución de aproximadamente el 90% de la población celular de la zona. Los resultados obtenidos a través de la evaluación de la conducta rotacional inducida por apomorfina realizada al mes de ser inducida la lesión; los animales sanos presentaron un comportamiento estereotipado de vaivén, luego de la inyección del agonista dopaminérgico directo, esta conducta es normal en animales sanos (sin asimetría) en los niveles de dopamina estriatal. Mediante el análisis histológico con tinción de Nills, se pudo comparar entre los grupos control y el lesionado, la degeneración de las estructuras involucradas en la lesión con 6OHDA; una disfunción motora y un deterioro cognitivo mostrados por el estudio conductual. Desde esta perspectiva es posible plantear que este modelo se asemeja a la enfermedad humana y permite evaluar estrategias de tratamiento protectoras y restaurativas. El test neurológico mostró diferencias en los porcentajes de ejecución por cada prueba entre los grupos. Los individuos de los grupos control y Sham tuvieron un éxito del 100% de ejecución en las pruebas lo que indica que las condiciones sensoriomotoras de los animales son aptas, en el grupo Lesionado los porcentajes de éxito no superaron el 56%, es apropiado decir que debido a la lesión con 6OHDA, los animales mostraron fallas en la ejecución de movimientos con una tendencia mayor en las extremidades izquierdas y en el tren posterior. 78 El Pole Test permitió evidenciar diferencia entre los grupos control y Sham con respecto al lesionado, los animales del grupo lesionado mostraban serias disfunciones motoras, el lado del cuerpo contralateral a la lesión con 6OHDA fue el más afectado. Los animales presentaban dificultad o simplemente no corregían posición, extremidades izquierdas retraídas y el uso de la cola era limitado lo cual no permitía que el animal pudiese tener un buen agarre para descender de la barra y lograr su objetivo de escape. El Test de Barnes modificado es un test sensible para la evaluación del deterioro causado por la EP y evidente en el deterioro del esquema de organización motora (McAuley, 2003) el cual posiciona a los ganglios basales como fuente de facilitación selectiva de la concentración, atención y energizante del circuito de realización de una tarea, haciendo referencia a la medición del daño cognitivo en Ratas Wistar hemiparkinsonizadas. La disfunción ejecutiva se ve alterada por la dificultad al percibir, procesar, discriminar y actuar con respecto a la información del entorno, la interacción entre los sentidos y el uso de ellos en PD dificulta la recepción de estímulos externos, el que se posea los sentido no significa que se tenga la facilidad de discriminar. 79 7. RECOMENDACIONES Es necesario integrar un estudio completo de la función cognitiva a través de la utilización de una batería de pruebas comportamentales como la desarrollada en el estudio realizado anteriormente, ya que la integración de diversas pruebas en un estudio daría más sensibilidad y una posición clara sobre el deterioro cognitivo. Además es un tema de interés científico, ya que no ha sido ampliamente estudiado en los modelos de Enfermedad de Parkinson. 80 8. BIBLIOGRAFIA Abdala,P.B.,(1998). La sustancia negra y el núcleo mesencefálico profundo como centro de salida de la información de los ganglios basales: evidencias electrofisiológica.(Tesis doctoral inedita).Universidad de laguna, Tenerife (España). Abril Carreres, M. a. (2004). Enfermedades neurodegenerativas, 38(6), 318–324. doi:10.1016/S0048-7120(04)73487-8 Adams, R.D; Victor, M. (1993).Principles of Neurology, fifth ed. McGraw-Hill, New York, p. 976. Akiyama H, McGeer PL. Microglial response to 6-hydroxydopamine induced substantia nigra lesions. Brain Res 1989;489:247-53. Albin RL, Young AB, Penney JB. The functional anatomy of basal ganglia disorders.Trends Neurosci. 1989;12:366-375. Alexander GE, Crutcher MD, Delong MR (1990) Basal ganglia-thalamocortical circuits: parallel substrates for motor, oculomotor, "prefrontal" and "limbic" functions. ProgBrain Res, 85, 119-146. Alexander GE, Crutcher MD. Functional architecture of basal ganglia circuits: neural substrates of parallel processing. Trends Neurosci 1990;13: 266-271. Alexander GE, Delong MR, Strick PL (1986) Parallel organization of functionally segregated circuits linking basal ganglia and cortex.Annu Rev Neurosci, 9:357-81, 357381. Alexander GE, DeLong MR, Strick PL. Parallel organization of functionally segregated circuits linking basal ganglia and cortex. Annu Rev Neurosci 1986;9:357-81. 81 Alexander GE, DeLong MR, StrickPL(1986) Parallel organizations of functionally segregated circuits linking basal ganglia and cortex. Ann Rev Neurosci ;9:357-81,357381. Ardayfio, P; Moon, J; Leung, K; Youn-Hwang, D; Kim, K. (2008). Impaired learning and memory in Pitx3 deficient aphakia mice: A genetic model for striatum-dependent cognitive symptoms in Parkinson's disease. Neurobiology of Disease 31:406–412 Asrar, S., Kaneko, K., Takao, K., Negandhi, J., Matsui, M., Shibasaki, K., FukumiTominaga, T. (2011). DIP/WISH deficiency enhances synaptic function and performance in the Barnes maze. Molecular brain, 4(1), 39.doi:10.1186/1756-6606-4-39. Baddeley A (2003) Working memory: looking back and looking forward.Nat Rev Neurosci 4:829-839 Baker KB, Kim JJ. Effects of stress and hippocampal NMDA receptor antagonism on recognition memory in rats. Learn Mem 2002; 9: 58-65. Barnes, C.A., 1988. Spatial learning and memory processes: the search for their neurobiological mechanisms in the rat. Trends Neurosci. 11, 163–169. Benton AL, Eslinger PJ, y Damasio AR.Normative observations on neuropsychologicaltest performances in old age.J ClinNeuropsychol. 1981;3:33-42. Betarbet, R.; Sherer, T.B.; Macenzie, G.; Garcia-Osuna, M.; Panov, A.V. y Greenamyre J.T. Chronic systemic pesticide exposure reproduce features of Parkinson’s disease. In : Nat. Neurosci. 2000. 3:1301-1306. Bird TD, Miller BL. Alzheimer’s disease and other dementias. In Kasper DL, Braunwald E, Fauci AS, Hauser SL, Longo DL, Jameson JL, eds. Harrison’s principles of internal medicine. New York: McGraw-Hill; 2005. p. 2393-406. 82 Blanco, L., Lorigados, L., García, R., Martínez, L., Pavón, N., González, M. E.,Blanco, V. (2000). Efecto neuroprotector de la administración sistémica de (-) nicotina en ratas hemiparkinsonizadas, 39(15805). Bové, Jordi; Prou, Delphine; Perier, Céline y Przedborski, Serge.Toxininduced models of Parkinson’s disease.In : The Journal of American Society for Experimental Neurotherapeutics. 2005. 2:484-494. Briñez J.A.,(2010). ARTÍCULO ORIGINAL Deterioro cognitivo y envejecimiento : no hay evidencia de deterioro gradual de la memoria de trabajo , dependiente de la edad , en la rata Wistar,Universidad Medica Bogota (colombia),51(2),120-142 Buckley TM, Schatzberg AF. Agingand the role of HPA axis and rithm in sleep and memory-consolidation.Am JGeriatr Psychiatry. 2005;13:344-53. Bures, J., & Buresova, O. (1983).Techniques and basic experiments for the study of brain and behavior. 2nd ed. Amsterdam: Elsevier Science Publishers B. V. Burke, D., Hagbarth, K.-E., Wallin, B.G., 1977. Reflex mechanisms in Parkinsonian rigidity. Scand. J. Rehabil. Med. 9, 15–23. Byatt G, Dalrymple-Alford JC. Bothanteromedial and anteroventral thalamic lesions impair radial- maze learningin rats. BehavNeurosci. 2001;110:1335-48. Campos-Romo A. Evaluación de alteraciones motoras en modelos animales de enfermedad de Parkinson. RevNeurol 2008; 46: 167-74. Cansino, S. (2005). Neurofisiología de la interacción entre la atención y la memoria episódica : revisión de estudios en modalidad visual, RevNeurol 2005;41(12), 733–743. Cassinelli, D.ySantibañez, R.,(s.f). Relación entre manifestaciones motoras y deterioro cognitivo en la enfermedad de Parkinson, Recuperado //www.medicosecuador.com/español/artículos_medicos/113.htm. 83 de http: Castellanos, Y. S. B. (2011). Escritura en enfermedad de parkinson (ep): revisión sistemática de literatura 1, 14(2), 17–26. Castillo, J. L. (2008). Artículo de revisión Perspectiva histórica y aspectos epidemiológicos de la enfermedad Parkinson, 24(1), 28–37. Castner SA, Goldman-Rakic PS, WilliamsGV. Animal models of working memory: insights for targeting cognitivedysfunction in schizophrenia. Psychopharmacology.2004;174:11125. Cerda Mico C.,Borrego Oliva S. y Sáez Tormo G.,(2010). Estrés oxidativo en las enfermedades neurodegenerativas, 283–302. Disponible en: http://www.analesranf.com/index.php/mono/article/viewFile/1055/1054. Cerebral, F., & Rom, F. (s.f).Neuropsicología TEMA 2: organización y funcion cerebral. Disponible en:http://ocw.um.es/cc.-sociales/neuropsicologia/material-de-clase-1/tema- 2.-organizacion-y-funcion-cerebral.pdf Cervantes-arriaga, A., & Corona, T. (2010). Papel de la función mitocondrial en las enfermedades neurodegenerativas, art Neurocien(Mex) vol15, Nº 1:39–46. Chacón, J.R. (2010). Concepto de enfermedad de Parkinson. Enfermedad multisistémica: ¿todos los núcleos son iguales?. ; 50 (Supl 4): S2-S3 CHEN, S; TSAI, S. (2010) The Epidemiology of Parkinson’s Disease. TZU Chinese Medical Journal Vol 22: 2 Connor B. Adenoviral vector-mediated delivery of glial cell line-derived neurotrophic factor provides neuroprotection in the aged parkinsonian rat. ClinExpPharmacolPhysiol 2001;28:896-900. 84 Craik, FIM. Age differences in humanmemory. In: Birren JE, Schaie KW, editors.Handbook of the psychology ofaging. New York: Van Nostrand Reinhold; 1977;384-420. Da Cunha Claudio / Rui D. S. Prediger / Edmar Miyoshi / Reinaldo N. Takahashi 2006 A Rat model of the cognitive impairments in parkinson’s disease Revista Mexicana de Análisis de la Conducta, diciembre, año/vol. 32, número 002 Sociedad Mexicana de Análisis de la Conducta Guadalajara, México pp. 219-240 Red Dalley JW, Cardinal RN, Robbins TW.Prefrontal executive and cognitive functionsin rodents: neural and neurochemicalsubstrates. NeurosciBiobehav Rev.2004;28:771-84. Debeir, Thomas et al. Effect of intraestriatal 6-OHDA lesion on dopaminergic innervations of the rat cortex and globuspallidus.In : Experimental Neurology. 2005. 193:444-454. Denny-Brown, D., Yanagisawa, N., 1976. The role of the basal ganglia in the initiation of movement. In: Yahr, M.D. (Ed.), The Basal Ganglia. Raven Press, New York, pp. 115–148. Di Filippo, M., Picconi, B., Costa, C., Bagetta, V., Tantucci, M., Parnetti, L., &Calabresi, P. (2006). Pathways of neurodegeneration and experimental models of basal ganglia disorders: downstream effects of mitochondrial inhibition. European journal of pharmacology, 545(1), 65–72. doi:10.1016/j.ejphar.2006.06.024 Doupe AJ, Perkel DJ, Reiner A, Stern EA. Birdbrains could teach basal ganglia research a new song. Trends Neurosci 2005;28:353-363. Dubois B, Pillon B (1997) Cognitive defi cits in Parkinson's disease. J Neurol 244:2-8 Dujardin K, Laurent B (2003) Dysfunction of the human memory systems: role of the dopaminergic transmission. Curr Opin Neurol 16: S11-S16 85 Emborg, M. E. (2004). Evaluation of animal models of Parkinson’s disease for neuroprotective strategies.Journal of neuroscience methods, 139(2), 121–43. doi:10.1016/j.jneumeth.2004.08.004. Errea JM, Ara JR. Deterioro cognoscitivo en la enfermedad de Parkinson: factores de riesgo asociados. RevNeurol. JM, Ara JR. Deterioro cognoscitivo en la enfermedad de Parkinson: factores de riesgo asociados. Rev Neurol. 1999; 28 (5): 439 – 443. Etchepareborda M. C.,&Abad-Mas L. (2005). Memoria de trabajo en los procesos básicos del aprendizaje, RevNeurol 2005;40(Supl 1), 79–83. Faull RL, Laverty R. Changes in dopamine levels in the corpus striatum following lesions in the substantianigra. ExpNeurol 1969;23:332-40. Feger et al.,J, Pessigliore M, Francois C, Tremblay L, Hirsch E. Experimental models of Parkinson’s disease. Ann Pharm Fr 2002;60:3-21 Ferro Machado, Marcelo et al. Comparison of bilaterally 6-OHDA- and MPTPlesionedrats as models of the early phase of Parkinson’s disease : histological, neurochemical, motor and memory alterations. In : Journal of Neuroscience Methods. 2005. 148:78-87. Fleming, S. M., Schallert, T., &Ciucci, M. R. (2012).Cranial and related sensorimotor impairments in rodent models of Parkinson’s disease.Behaviouralbrainresearch, 231(2), 317–22. doi:10.1016/j.bbr.2012.02.034. Fuster JM, Alexander GE. Neurons activityrelated to short–term memory.Science. 1971;173:652-4. Gallistel, C.R., 1990. Representations in animal cognition: an introduction. Cognition37, 1–22. 86 Gazzaley A, Rissman J, D’Esposito M.Functional connectivity during working memory maintenance. Cogn AffectBehavNeurosci. 2004;4:580-99. Glajch, K. E., Fleming, S. M., Surmeier, D. J., &Osten, P. (2012).Sensorimotor assessment of the unilateral 6-hydroxydopamine mouse model of Parkinson’s disease.Behavioural brain research, 230(2), 309–16. doi:10.1016/j.bbr.2011.12.007. Goldman W et al. Cognitive and motor functioning in Parkinson disease.Arch Neuro11998; 55:674-680 Gómez-jarabo, G. &Peñabler González J. C., (2006). Evaluación del funcionamiento cognitivo en un grupo de sujetos sometidos a estrés laboral, Revista la Mutua Nº 9 Art 5. Disponible en:http://www.fraternidad.com/previene/es-ES/revista/REVISTA-LA-MUTUANUMERO-9_9.html. Graybiel AM. Neurotransmitters and neuromodulators in the basal ganglia. Trends Neurosci 1990; 13:244-254. Green J, McDonald WM, et al. Cognitive impairments in advanced PD without dementia. Neurology.2002; 59: 1329 – 1324. Harrison, F. E., Hosseini, a H., & McDonald, M. P. (2009). Endogenous anxiety and stress responses in water maze and Barnes maze spatial memory tasks. Behavioural brain research, 198(1), 247–51. doi:10.1016/j.bbr.2008.10.015. Hassler, R., 1978.Striatal control of locomotion, intention actions and of integrating and perceptive activity. J. Neurol. Sci. 36, 187–224. Hayter A, Langdom DW, Ramnani N.Cerebellar memory.NeuroImage. 2007; 36:943-54. 87 contributions to working Hernández, D. S. (2006). El modelo animal en las investigaciones biomédicas, Biomedicina, 2006,2(3) 252–256. Ho, Y.-J., Ho, S.-C., Pawlak, C. R., &Yeh, K.-Y. (2011). Effects of D-cycloserine on MPTPinduced behavioral and neurological changes: potential for treatment of Parkinson’s disease dementia. Behavioural brain research, 219(2), 280–90. doi:10.1016/j.bbr.2011.01.028. Hornykiewicz, O. Dopamine (3-hydroxytyramino) and brain function. In : Pharmacol.Rev. 1966. 18:925-965. Isawa C. A new temporary maintenancesystem, working cognition: A construct to incorporate working memory in unifiedtheories of cognition. Am J Psychol. 2001; 114:11527. Javoy F, Sotelo C, Herbet A, Agid Y. Specificity of dopaminergic neuronal degeneration induced by intracerebral injection of 6-hydroxydopamine in the nigrostriatal dopamine system. Brain Res 1976; 102:201-15. Jendroska K, Olasode BJ, Daniel SE, et al. Incidental Lewy body disease in black Africans. Lancet 1994; 344(8926):882-3.). Jeon, B.S.; Jacson-Lewis, V. y Burke, R.E. 6-Hydroxydopamine lesion of de rat substantianigra: time course and morphology of cell death. In: Neurodegeneration. 1995. 4; 2:131-137. JIN, B.K. y LACOVITTI, L. Dopamine differentiations factors produce partial motor recovery in 6-hydroxydopamine lesioned rats. In : Neurobiology of Disease. 1995. 2:112. 88 Johnston RE, Schallert T, Becker JB. Akinesia and postural abnormality after unilateral dopamine depletion. Behav Brain Res. 1999; 104:189-196. Jones EG, Coulter JD, Burton H, Porter R. Cells of origin and terminal distribution of corticostriatal fibers arising in the sensory-motor cortex of monkeys. J Comp Neurol 1977;173:53-80. Jonsson G. Chemical lesioning techniques: monoamine neurotoxins. In: Björklund A HkT, editor. Handbook of chemical neuroanatomy Methods in chemicalneuroanatomy. Amsterdam: Elsevier Science Publishers B.V.; 1983. p. 463-507. Kandel ER, Kupfermann I, Iversen, S. Learning and memory. Principles of neural science. New York: McGraw-Hill; 2000. Kirik, Deniz; Rosenblad, Carl y Björklund, Anders.Characterization of behavioral and neurodegenerative changes following partial lesions of the nigrostriatal dopamine system induced by intrastiatal 6-hydroxydopamine in the rat.In :Exp Neurol. 1998. 152:259-277. Kolb B, Whishaw I. Cerebro y Conducta. Una introducción. Madrid, España. McGrawHill/Interamericana de España, S. A. U.2002. Capítulo 13, p, 472 Kramer NA, Jarvik L. Assessment ofintellectual changes in the elderly. En: Raskin A, Jarvik L, editors. Psychiatricsymptoms and cognitive loss in theelderly. Washington, D.C.: Hemisphere.1979;221-70. Kuter, K; Śmiałowska M; , Wierońsk J; Zięba, B, Wardas, J; , Pietraszek, M; Nowak P; Biedka, I; Roczniak, W; Konieczny, J; Wolfarth, S; Ossowska, S. (2007). Toxic influence of subchronicparaquat administration on dopaminergic neurons in rats. Brain research 196 – 207. 89 Lee, C.S.; Sauer, H. y Björklund A. Dopaminergic neuronal degeneration and motors impairments following axon terminal lesion by intraestriatal 6- hydroxydopamine. In : Neuroscience. 1996. 72;3:641-653. Lezak, MD. Neuropsychological assessment.Second edition. New York: Oxford University Press; 2004;414-78. Lue L.F., et al. Soluble amyloid beta peptide concentration as a predictor of synaptic change inAlzheimer’s disease. Am J Pathol, 1999; 155:853-862. Lunar, M. M., Peña, L. E., & Gutiérrez, J. R. (2013). Fenómenos on-off de conducta en la enfermedad de Parkinson,.PsiqBiol 2003;10(1):36-41.Disponible en:http://zl.elsevier.es/es/revista/psiquiatria-biologica-46/articulo/fenomenos-on-offconducta-enfermedad-parkinson-13046024 Luo J, Kaplitt MG, Fitzsimons HL, Zuzga DS, Liu Y, Oshinsky ML, et al. Subthalamic GAD gene therapy in a Parkinson’s disease rat model.Science 2002;298:425-9. LUQUIN, Mª del Rosario. Modelos Experimentales de la Enfermedad de Parkinson. En : Revista de Neurología. 2000. 31;1:60-66. Luquin, MR. Pomares, E. Martínez-Vila, E. Noé, E. Los circuitos fronto-basales: un modelo de comprensión de los problemas motores y cognitivos que presentan los pacientes con enfermedades que afectan a los ganglios basales. I Congreso Virtual de Psiquiatría 1 de Febrero - 15 de Marzo 2000 [citado: 26 agosto 2013]; Conferencia 19CI-C: [25 pantallas].Disponible en: http://www.psiquiatria.com/congreso/mesas/mesa19/conferencias/19_ci_c.htm. Marchand, W. R., Lee, J. N., Suchy, Y., Garn, C., Johnson, S., Wood, N., &Chelune, G. (2011). Age-related changes of the functional architecture of the cortico-basal ganglia 90 circuitry during motor task execution. NeuroImage, 55(1), 194–203. doi:10.1016/j.neuroimage.2010.12.030. Marshall JF, Ungerstedt U. Supersensitivity to apomorphine following destruction of the ascending dopamine neurons: quantification using the rotational model. Eur J Pharmacol 1977;41:361-7. Marshuetz C. Order information inworking memory: an integrative review of evidence from brain and behavior.Psychol Bull. 2005;13:323-9. Marti MJ, James CJ, Oo TF, Kelly WJ, Burke RE. Early developmental destruction of terminals in the striatal target induces apoptosis in dopamine neurons of the substantianigra. J Neurosci 1997;17:2030-9. Martínez Lage J.M., Martínez Lage P., Moya M. Hacia la prevención de la enfermedad deAlzheimer. En: Martínez Lage J.M., Hachinski V., eds. “Envejecimiento cerebral y enfermedad”.Madrid, Editorial Triacastela, 2001; pp. 157-173. Matsumoto, H., Terao, Y., Furubayashi, T., Yugeta, A., & Fukuda, H. (2012). Basal ganglia dysfunction reduces saccade amplitude during visual scanning in Parkinson ’ s disease. Basal Ganglia, 2(2), 73–78. doi:10.1016/j.baga.2012.01.005. McAuley, J. . (2003). The physiological basis of clinical deficits in Parkinson’s disease. Progress in Neurobiology, 69(1), 27–48. doi:10.1016/S0301-0082(03)00003-0 McFarland NR, Haber SN. Organization of thalamostriatal terminals from the ventral motor nuclei in the macaque.J Comp. Neurol. 2001; 429:321-336. Mendez JS, Finn BW. Use of 6-hydroxydopamine to create lesions in catecholamine neurons in rats. J Neurosurg 1975;42:166-73. Merello M.(2000). Anatomia funcional ganglios basales.Revneurol 2000;30:1055-1060. 91 Merello, M. (2008). Trastornos no motores en la enfermedad de Parkinson, RevNeurol 2008 ,47(5), 261–270. Metz GA, Piecharka DM, Kleim JA, Whishaw IQ. Preserved ipsilateral-to lesion motor map organization in the unilateral 6-OHDA-treated rat model of Parkinson’s disease. BrainRes. 2004;1026:126-135. Middleton, F. a, &Strick, P. L. (2000). Basal ganglia and cerebellar loops: motor and cognitive circuits. Brainresearch.Brainresearchreviews, 31(2-3), 236–50. Minsal.(2010).Guia clínica Enfermedad de parkinson, Chile. Mishkin M (1978). Memory in monkeys severely impaired by combined but not byseparate removal of amygdala and hippocampus. Nature. 273; 5660: 297-8. Mokry J. Experimental models and behavioural tests used in the study of Parkinson’s disease.Physiol Res 1995;44:143-50. Monville, C.; Torres, E.M. y Dunnett, S.B. Comparison of incremental and accelerating protocols of the rotarod test for the assessment of motor deficits in the 6-OHDA model. In: Journal of Neuriscience Methods. (2006),doi:10.1016/j.jneumeth.2006.06.001. Article in press. Morgan D., Diamond D.M., Gottschall P.E., Ugen K.E., Dickey C., Hardy J., Duff K.,Jantzen P., DiCarlo G., Willcock D., Connor K., Hatcher J., Hope C., Gordon M., ArendashG.W. Aß peptide vaccination prevents memory loss in an animal model of Alzheimer’s disease.Nature, 2000; 408:982-985. Morris, R.G., Garrud, P., Rawlins, J.N., O’Keefe, J., 1982. Place navigation impaired in rats with hippocampal lesions. Nature 297, 681–683. 92 Mrad de Osorio A., (2006). Ética en la investigación con modelos animales experimentales. Alternativas y las 3 RS de Russel., Departamento de bioética Universidad del Bosque163–184. Murat Emre Dementia associated with Parkinson's disease. Lancet Neurology 2003; 2: 229-37 Murray, H.E. et al. Dose- and sex-dependent effects of the neurotoxin 6hydroxydopamine on the nigrostriatal dopaminergic pathway of adult rats : Differential actions of estrogen in males and females.In : Neuroscience. 2003. 116:213-222. Navarrete, F., Pérez-ortiz, J. M., Femenía, T., & García-gutiérrez, M. S. (2008). Métodos de evaluación de trastornos cognitivos en modelos animales, RevNeurol 2008; 47(3), 137–145. Nishizuka M, Katoh-Semba R, Eto K,Arai Y, Hzuka R, Kato K. Age and sexrelateddifferences in the nerve growthfactor distribution in the rat brain.BrainRes Bull. 1991;27:685-8. Noé-Sebastián E, Irimia-Sieira P, et al. Trastornos neuropsiquiátricos en la enfermedad de Parkinson. RevNeurol. 2001; 32 (7): 676 – 681. Noé-Sebastián E, Irimia-Sieira P, et al. Trastornos neuropsiquiátricos en la enfermedad de Parkinson. RevNeurol. 2001; 32 (7): 676 – 681 O’Keefe, J., Nadel, L., Keightley, S., Kill, D., 1975. Fornix lesions selectively abolish place learning in the rat. Exp. Neurol. 48, 152–166. 93 O’Keefe, J., Nadel, L., 1978. The Hippocampus as a Cognitive Map.Clarendon Press,Oxford. O’Leary, T. P., & Brown, R. E. (2009). Visuo-spatial learning and memory deficits on the Barnes maze in the 16-month-old APPswe/PS1dE9 mouse model of Alzheimer’s disease. Behavioural brain research, 201(1),120–7. doi:10.1016/j.bbr.2009.01.039. O’Leary, T. P., & Brown, R. E. (2012). The effects of apparatus design and test procedure on learning and memory performance of C57BL/6J mice on the Barnes maze. Journal of neuroscience methods, 203(2), 315–24. doi:10.1016/j.jneumeth.2011.09.027. O’Leary, T. P., Savoie, V., & Brown, R. E. (2011). Learning, memory and search strategies of inbred mouse strains with different visual abilities in the Barnes maze. Behavioural brain research, 216(2), 531–42. doi:10.1016/j.bbr.2010.08.030 Owen AM (2004) Cognitive dysfunction in Parkinson’s disease: the role of frontostriatal circuitry. Neuroscientist 10:525–537 Parent A, Ciccetti. The current model of basal ganglia organization under scrutinity. Movement Disorders 1998;13:199-202. Parent A, Côté PY, Lavoie B. Chemical anatomy of primate basal ganglia. ProgNeurobiol 1995;46:131-197. Parent A, Hazrati LN. Functional anatomy of the basal ganglia.I.The cortico- basalgangliathalamo-cortical loop. Brain Res Rev 1995a;20:91-127. Parent A. The brain in evolution and involution.Biochem Cell Biol 1997; 75:651-667. Pata DS, Margolin DI. Cognitive slowing in Parkinson's and Alzheimer's patients: distinguishing bradyphrenia from demeQtia. Neurology. 1994; 44 (4): 669- 674. 94 Pavón, Nancy et al. Evaluación conductual del modelo de lesión unilateral en ratas con 6-hidroxidopamina : Correlación entre las rotaciones inducidas por D anfetamina, apomorfina y la prueba de habilidades manuales. En : Rev Paxinos George y Watson Charles.The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates.5th Edition. ElsevierAcademicPress, 2005.206 p. neurol. 1998. 26;154:915-918 Percheron G, Filion M. Parallel processing in the basal banglia: up to a point. Trends Neurosci 1991;14:55-56. Pessoa L, Ungerleider LG. Neural correlatesof change detection and change blindness in a working memory task.Cereb Cortex. 2004;14:511-21. Plowman, E. K., &Kleim, J. a. (2011). Behavioral and neurophysiological correlates of striatal dopamine depletion: a rodent model of Parkinson’s disease. Journal of communication disorders, 44(5), 549–56. doi:10.1016/j.jcomdis.2011.04.008. Poliakoff, E; Smith-Spark, J. (2008). Everyday cognitive failures and memory problems in Parkinson’s patients without dementia. Brain and Cognition 67: 340–350 Posner MI. Attention in cognitive neuroscience.Cambridge: MIT Press; 1995. Poucet, B., Benhamou, S., 1997.The neuropsychology of spatial cognition in the rat. Crit. Rev. Neurobiol. 11, 101–120. Prusiner S.B. Shattuck Lecture - Neurodegenerative diseases and prions. N Eng J Med,2001;344:1516-1526. 95 Przedborski S, Levivier M, Jiang H, Ferreira M, Jackson-Lewis V, Donaldson D. Dosedependent lesions of the dopaminergic nigrostriatal pathway induced by intrastriatal injection of 6-hydroxydopamine. Neuroscience 1995;67:631-47. Przedborski, Serge et al. Dose-dependent lesions of the dopaminergic nigrostriatal pathway induced intrastriatal injection of 6-hydroxydopamine. In : Neuroscience. 1995. 67;3:631-647. REUM, T. et al. Diffusion parameters in the striatum of rats with 6- hydroxidopamineinduced lesions and with fetal mesencephalic grafts. In :JournalifNeuroscienceResearch. 2002. 70:680-693. Rodrigues P., Wilson Ricardo; GOMIDE C., Vânia; CHADI, Gerson.Striatal injectión of 6hydroxydopamine induces retrograde degeneration and glial activation in the nigrostrial pathway. In :ActaQuirúrgicaBrasileira. 2003. 18;4:272-282. Rodríguez, Fernando et al. Fundamentos de Neurociencia : Manual de laboratorio. 1ª edición. Madrid, España :McGRAW-HILL/INTEREMERICANA DE ESPAÑA, S.A.U., 2005. p.67-69. ISBN 84-481-9831-X. Rojo, A. et al. El medio condicionado de glía protege de la toxicidad in vivo con 6-OHdopamina. En : Rev Neurol. 2002. 34;12:1112-1118. Romanelli P, Exposito V, Schaal DW, Heit G. Somatotopy in the basal ganglia: experimental and clinical evidence for segregated sensorimotor channels. 2005;48:112128. Ruchkin DS, Grafman J, Cameron K,Berndt RS. Working memory retention system: a state of activated long-termmemory.Behavioral and Brain Sciences. 2003;26:709-77. 96 Sadikot AF, Parent A, Smith Y, Bolam JP. Efferent connections of the centromedian and parafascicular thalamic nuclei in the squirrel monkey–A light and electron microscopic study of the thalamostriatal projection in relation to striatal heterogeneity. J Comp Neurol 1992;320:228-242. Santi A, Weise L. The effects of scopolamineon memory for time in rats and pigeons.PharmacolBiochemBehav.1995;51:271-7. Santos-García D, Llaneza M, Abella J, Aneiros A, Santos H, Macías M. Estudios neurofisiológicos en los parkinsonismos. RevNeurol 2012; 54 (Supl 4): S13-22. Sarasa M. Modelos experimentales de la enfermedad de Alzheimer. RevNeurol 2006; 42: 297-301. SARRE, Sophie et al. In vivo characterization of somatodendritic dopamine release in the substantianigra of 6-hydroxydopamine-lesioned rats.In : Journal of Neuroschemistry. 2004. 90:29-39. Sauer, H. y Oertel, W.H. Progressive degeneration of nigrostriatal dopamine neurons following intrastriatal terminal lesions whit 6-hydroxydopamine : A combined retrograde traicing and inmunocytochemical study in rat. In :Neuroscience. 1994. 59:401-415. Savage LM, Pitkin SR, Knitowski KM.Rats exposed to acute pyrithiamineinducedthiamine deficiency are moresensitive to the amnesic effects of scopolamineand MK-801: examination ofworking memory, response selection,and reinforcement contingencies.Behav Brain Res. 1999;104:13-26. Schallert T, Fleming SH M, Leasure JL, Tillerson JL, Bland ST. CNS plasticity and assessment of forelimb sensorimotor outcome in unilateral rat models of stroke, cortical ablation, parkinsonism and spinal cord injury. Neuropharmacol. 2000;39:777-787. 97 Schober A. Classic toxin-induced animal models of Parkinson’s disease: 6hydroxydopamine and 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine. Cell Tiss Res. 2004;318:215-224. Sgambato, V., Maurice, N., Besson, M. J., Thierry, a M., &Deniau, J. M. (1999). Effect of a functional impairment of corticostriatal transmission on cortically evoked expression of c-Fos and zif 268 in the rat basal ganglia. Neuroscience, 93(4), 1313–21. Retrieved from http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10501455. Sherman, Thomas G. y MOODY, Carole A. Alterations in tyrosine hydroxylase expression following partial lesion of the nigrostriatal bundle.In : Molecular BrainResearch. 1995. 29:285-296. Shimohama, S.; Sawada, H.; Kitamura, Y. y Tamiguchi, T. Disease model: Parkinson’s disease. In : Trends. Mol. Med. 2003. 9;8:360-365. Shintaro F, Kazuyoshi T. What informationis represented by prefrontal neuronal activity? IntCongr Ser.2003;1250:93-104. Sholtissen, Bart et al. Funtional investigations into the role of dopamine and serotonine in partial bilateral striatal 6-hydroxydopamine lesioned rats.In : Pharmacology, Biochemistry and Behavior. 2006. 83:175-185. Smeets WJAJ, Marin O, Gonzalez A. Evolution of the basal ganglia: new perspectives through a comparative approach. J Anat 2000;196:501-517. Smith M.P. y Cass W.A. Oxidative stress and dopamine depletion in an intrastriatal 6hydroxydopamino model of Parkinson’s disease.In : Neuroscience. 2007. 144:10571066. 98 Sociedad Española de Neurología a, S. (2009). Guia oficial de la practica clínica en la enfermedad de Parkinson 2009, revista 1-192. Squire LR. Memory and the hippocampus:A synthesis from findings with rats, monkeys, and humans. Psychol Rev.1992;99:195-231. Srimel R, Curtis CE. Persistent neuralactivity during the maintenance of spatial position in working memory.NeuroImage. 2007;39:455-68. Stein JF. Akinesia, motor oscillations and the pedunculopontine nucleus in rats and men. Exp Neurol. 2009;215:1-4. Stromberg I, Bjorklund H, Dahl D, Jonsson G, Sundstrom E, Olson L. Astrocyte responses to dopaminergic denervations by 6-hydroxydopamine and 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6tetrahydropyridine as evidenced by glial fibrillary acidic protein immunohistochemistry. Brain Res Bull 1986;17:225-36. Surmeier, D. J., Guzman, J. N., Sanchez, J., &Schumacker, P. T. (2012). Physiological phenotype and vulnerability in Parkinson’s disease.Cold Spring Harbor perspectives in medicine, 2(7), a009290. doi:10.1101/cshperspect.a009290. Sutherland, R.J., Kolb, B., Whishaw, I.Q., 1982. Spatial mapping: definitive disruptionby hippocampal or medial frontal cortical damage in the rat. Neurosci.Lett. 31, 271–276. Tang YP, Shimizu E, Dube GR, Rampon C, Kerchner GA, Zhuo M, et al. Genetic enhancement of learning and memory in mice. Nature 1999;401: 63-9. 99 Trinidad Herrero M., Luquin M. R., Martín J., De Pablos V. y Fernández Villalba E. (2011). Capítulo 1. Anatomía química de los ganglios basales. La transmisión dinámica Capítulo 2. Organización funcional de los ganglios basales Capítulo 3. Semiología y fenomenología de los trastornos del movimiento Capítulo 4. Genética de los movimientos anormales, 2–21. Disponible en: http://imagem.senderdirect.com/iqdirect/panamericana/2011_10_31/2/micheli.pdf. Trullier, O., Wiener, S.I., Berthoz, A., Meyer, J.A., 1997.Biologically based artificialnavigation systems: review and prospects. Prog.Neurobiol. 51, 483–544. Uami, B. (s.f). Manual del Bioterio UAMI Índice, 1–16. Ungerstedt U. Adipsia and aphagia after 6-hydroxydopamine induced degeneration of the nigro-striatal dopamine system. ActaPhysiolScand Suppl 1971;367:95-122. Van Meer, P., &Raber, J. (2005).Mouse behavioural analysis in systems biology.The Biochemical journal, 389(Pt 3), 593–610.doi:10.1042/BJ20042023. Vargas-López, V., Lamprea, M. R., &Múnera, A. (2011). Characterizing spatial extinction in an abbreviated version of the Barnes maze.Behavioural processes, 86(1), 30–8. doi:10.1016/j.beproc.2010.08.002 Wheeler RA, Carelli RM. Dissecting motivational circuitry to understand substance abuse. Neuropharmacology.2008 Jun 25. Whishaw IQ, Woodward NC, Miklyaeva E, Pellis S. Analysis of limb use by control rats and unilateral DA-depleted rats in the Montoya staircase test: movements, impairments and compensatory strategies. Behav Brain Res. 1997;89:167-177. Winocur G, Hasher L. Age and time-ofdayeffects on learning and memory in a nonmatching-to simple test.Neurobiol Aging. 2004;25:1107-15. 100 Woodle MT, Schallert T. The interplay between behaviour and neurodegeneration in rat models of Parkinson’s disease and stroke. Rest Neurol Neurosc. 2004;22:153-161. Yuan, H., Sarre, S., Ebinger, G., &Michotte, Y. (2005).Histological, behavioural and neurochemical evaluation of medial forebrain bundle and striatal 6-OHDA lesions as rat models of Parkinson’s disease.Journal of neuroscience methods, 144(1), 35–45. doi:10.1016/j.jneumeth.2004.10.004. YUAN, Hong; SARRE, Sophie; EBINGER, Guy y MICHOTTE, Yvette. Histological, behavioral and neurochemical evaluation of medial forebrain bundle and striatal 6- OHDA lesions as rat models of Parkinson’s disease. In : Journal of Neuroscience Methods. 2005. 144:35-45. Zhang, Y; Dawson, V; Dawson; T. (2000). Oxidative Stress and Genetics in the Pathogenesis of Parkinson’s Disease. Neurobiology of Disease 7, 240–250. Zhou, Ch., Huang, Y., Przedborski, S. (2008) Oxidative stress in Parkinson’s disease.A mechanism of pathogenic and therapeutic significance.Ann. NY. Acad.Sci. 1147,1: 93– 104. Zigmond MJ, Hastings TG, Pérez RG. Increased dopamine turnover after partial loss of dopaminergic neurons: compensation or toxicity?. Parkin Rel Disord. 2002;8:389-393. 101 ANEXOS 102 Anexo A. MANTENIMIENTO DE UNA COLONIA DE RATAS EN EL BIOTERIO DE EXPERIMENTACIÓN ANIMAL DE LA UNIVERSIDAD DEL TOLIMA - PNT OBJETIVO Garantizar el bienestar de los animales mediante el desarrollo de las actividades de mantenimiento de la colonia de ratas en el BE-UT que aseguren el bienestar animal (cumplimiento de las 3Rs), la calidad genética e higiénico-sanitarias estatus convencional y el macroambiente de un bioterio convencional de producción, mantenimiento y experimentación de pequeños roedores de la Universidad del Tolima. CONDICIONES DE SEGURIDAD Es necesario llevar ropa cómoda y portar los elementos básicos de seguridad como bata, gorro y polainas o zapatos de laboratorio. El uso de guantes de látex puede ser restringido a la manipulación de tipo experimental ya que este material causa malestar al animal al contacto con su pelaje. No usar perfumes, lociones, cremas o cualquier sustancia que tenga olor fuerte, debido a que estos olores afectan el microambiente de las colonias. El cambio de camas debe ser realizado por una sola persona con el fin de garantizar un control zootécnico verídico y permitir un seguimiento constante de las colonias que se tienen en el bioterio, así como disminuir al máximo el estrés de los animales. Se recomienda que la manipulación sea mínima ya que esta causa estrés en el animal y puede llegar a alterar los resultados experimentales y la salud de las colonias 103 EQUIPAMIENTO, LOCALES, MATERIALES Y REACTIVOS Cajas Cisco estéril Solución de hipoclorito Detergente Toallas Escoba Baldes Traperos OPERACIONES PRELIMINARES Cerciorarse que el extractor esté funcionando correctamente y que los accesos a diferentes áreas estén abiertos para que los recambios de aire sean completos, los únicos accesos que deben estar cerrados son el transfer hacia quirófano y la puerta de acceso al laboratorio de conducta. La preparación del agua y la esterilización del cisco previamente garantizan que su tiempo en el bioterio va a ser solo el necesario y al realizar estas actividades simultáneamente ganara tiempo y eficiencia en el proceso. PROCEDIMIENTO 1. Se hace un escaneo general de la sala de mantenimiento para detectar, por ejemplo animales fuera de sus jaulas o cualquier anomalía en dicho recinto. 2. Se sigue al área de lavado en donde se deben servir las cajas de cambio con el material de cama estéril (cisco de arroz) en medidas que se han especificado de acuerdo a las condiciones del bioterio, se deben servir en este lugar debido a que el cisco genera partículas pequeñas que pueden provocar enfermedades respiratorias y dérmicas en los animales. 104 3. Las cajas servidas con el cisco estéril se llevan a la sala de mantenimiento y se comienza con el cambio de camas. Se ubican las cajas de cada entrepaño de los estantes de mantenimiento en la mesa de cambio. 4. Se limpia la superficie y esquinas del entrepaño con solución limpiadora (aún los entrepaños donde no hay animales). 5. Se abre la caja que contiene los animales, con el cuidado mantenerlos dentro de la caja para evitar fugas, así mismo estar atentos para evitar accidentes que incluyan mordeduras o rasguños. 6. Suavemente sujetar al animal por el tronco y pasarlo a la caja donde se encuentra el cisco limpio. 7. Se ajusta la tapa y se acomoda nuevamente en su estante. Es necesario en este paso verificar la información de las fichas de mantenimiento como número de individuos y sexo y en caso del banco genético número de crías, fecha de nacimiento y destete, así como observaciones adicionales como aspecto del individuo y si presenta alguna alteración de cualquier tipo. 8. Se limpia la tapa, la botella y se verifica el agua de bebida (si se llena o se cambia). 9. El proceso se repite con cada caja e individuo de las colonias 10. Una vez terminado el cambio las cajas sucias se llevan a la zona de lavado. 11. Se barren TODAS las áreas del bioterio, se limpian TODAS las superficies, se eliminan telarañas se mueven los estantes del área de mantenimiento y del banco genético, se limpia las mesas de cambio y se trapea con solución limpiadora dos veces. 105 12. Se cierran los accesos y el trabajo se concentra en el área de lavado. 13. Con guantes domésticos se retira el cisco de todas las cajas y se deposita en la caneca de riesgo biológico. 14. Se procede al lavado de cajas. 15. Terminado este proceso se debe barrer y trapear el área de lavado, así como limpiar las superficies de los mesones que se ubican en esta área. 16. En este momento se pueden llenar los teteros que se necesitan y ubicarlos en las cajas. 17. El cisco que se ha estado esterilizando se almacena en el recipiente destinado para tal fin. 18. Las bolsas rojas con el cisco sucio que resultan del cambio se deben sacar del Bioterio antes de las 10:30 am, deben ser debidamente marcadas con la procedencia y la fecha para que puedan ser llevadas hasta el cuarto frío por el operario de la Universidad y posteriormente sean recogidas por la empresa encargada de su incineración. 19. Si los chupos de los teteros están en mal estado es necesario cambiarlos y/o fabricarlos en caso de que no hayan. CÁLCULO E INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS 106 El Jefe del Bioterio de Experimentación Animal de la Universidad del Tolima, evaluará la ejecución del protocolo, aprobando, corrigiendo y tomando las medidas correctivas necesarias de acuerdo con la condiciones del bioterio. CONTROL El aseo permanente del laboratorio, el bueno estado higiénico – sanitario y la calidad genética del estatus convencional de los animales son la garantía de buenas prácticas en el mantenimiento de la colonia. REQUISITOS DE DOCUMENTACIÓN Para la producción y mantenimiento de pequeños roedores en un bioterio, es necesario primero conocer la biología, genética y fisiología del animal, mantener un micro y macroambiente adecuado, que garanticen la calidad del reactivo biológico, que consiste en: Un estatus genético acorde con los intereses de los estudios, para lo que es necesario utilizar sistemas de cruzamiento isogénicos o no isogénicos según correspondan con las líneas o colonias que se mantienen. El estatus higiénico-sanitario esperado, que aseguren la no presencia de gérmenes patógenos o zoonóticos que interfieran en los resultados de experimentos o proyectos de investigación o que afecten el bienestar de animales, cuidadores e investigadores. Estatus de bienestar animal que asegure la calidad de los reactivos biológicos, que debe ser inversamente proporcional con los niveles de estrés. Control zootécnico de la colonia que nos permitirá entrelazar los diferentes estatus y comprobar el estado real del Banco genético, banco de expansión y experimentación. 107 A continuación se describen cuáles son las actividades que deben realizar para asegurar estos tres estatus. El bioterio de experimentación de la UT tiene un área de, divido en las siguientes áreas: 1. Almacén de alimento y encamado 2. Sala de mantenimiento del Banco genético y banco de expansión 3. Área de Lavado y esterilización. 4. Sala de mantenimiento de animales de Experimentación. El tamaño de las jaulas elegidas debe ser apropiado para cada especie mantenida. Las jaulas no deben permitir solamente alojar los animales de una manera segura, sino también asegurar su comodidad y seguridad, permitiendo ajustes de postura y de comportamiento normales, y por contribuir al enriquecimiento ambiental. Las jaulas deben ser adecuadamente ventiladas, permitir un campo visual satisfactorio y un acceso fácil a los animales. Los sistemas de bebederos y de distribución de alimentos deben ser planificados y ubicados para permitir su acceso fácil, sin que se contaminen con excrementos. El diseño de las jaulas debe facilitar su limpieza y desinfección. Tipo de caja y cantidad de animales que se pueden alojar La cama de las jaulas de los animales deberá ser de un material no tóxico, absorbente, pero que no provoque la deshidratación de los neonatos, entre los materiales que se pueden usar como encamando para pequeños roedores tenemos: viruta de madera (pino), bagazo de azúcar (desmollado y presecado) cisco de arroz, todos los materiales para encamado deben ser seleccionados, que están libres de otras sustancias y contaminantes y deben ser esterilizados por calor húmedo (121º C o 1,5 at, durante 30 minutos o sistema de irradiación). La cama debe ser cambiada tan frecuentemente como sea necesario para mantener los animales limpios, secos, y relativamente sin mal olor, y para mantener el nivel de amoníaco en las jaulas en niveles aceptables. En ratas, este nivel es de 25 ppm y para los animales menores de laboratorio, se debe cambiar la cama de las jaulas de una a tres veces por semana según variables tales como el tamaño de los animales, la densidad de la población, el tipo de jaula y el grado de producción de excrementos. 108 De la misma forma deberán ser tratadas y cambiada el agua de bebida y los materiales que tengan contacto con los animales. REFERENCIAS/DOCUMENTOS APLICABLES Bonilla A., Bonilla L. 2006. Ciencia del animal de laboratorio: El primer peldaño hacia la neurociencia y la experimentación animal. 109 Anexo B. INYECCIÓN INTRAPERITONEAL (IP) OBJETIVO Descripción general del proceso de aplicación de sustancias vía intraperitoneal en ratas Wistar, con un manejo adecuado de los animales. CONDICIONES DE SEGURIDAD Uso de bata, polainas y gorro De ser necesario, usar de guantes para la manipulación del animal Utilizar una aguja diferente por cada animal que se inyecta Eliminar los elementos corto punzantes en un guardián Evitar los pinchazos en la piel del investigador EQUIPAMIENTO, LOCALES, MATERIALES Y REACTIVOS Animal de experimentación Jeringa y Aguja Sustancia a Inocular OPERACIONES PRELIMINARES Limpiar el área de trabajo Preparar la solución a inocular y tenerla preferiblemente a temperatura corporal o ambiente Tener al alcance de la mano todos los elementos a utilizar PROCEDIMIENTO 1. La jaula debe ser abierta con cuidado evitando incomodar los animales 110 2. Permitir que el animal se habitúe a la presencia del investigador 3. Tomar el animal cuidadosamente de la base de la cola y sacarlo de la jaula 4. Sujetar con firmeza el animal desde detrás, rodeando debajo de las patas delanteras con los dedos índices y pulgar evitando apretar el cuerpo, los demás dedos se usan de sujeción. Asegura una de sus patas traseras con la cola para facilitar la inyección. 5. Se divide imaginariamente la cavidad abdominal en cuatro secciones, aplicando la inyección en las regiones posteriores, inclinando el animal hacia el cráneo, introduciendo la aguja en ángulo de 35° aproximadamente para no tocar las vísceras. 6. Aplicar la solución y retirar cuidadosamente la aguja 7. Regresar el animal a su jaula 8. Desechar la aguja CÁLCULO E INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS El animal debe quedar en perfectas condiciones inmediatamente después del procedimiento. Dependiendo de qué tipo de solución se aplica en el animal, su efecto se verá posteriormente. CONTROL Cuando se ve el efecto de la solución aplicada puede comprobarse la correcta aplicación de la inyección. Cualquier otra anomalía, paro cardíaco, peritonitis u otra reacción adversa, puede deberse a una mala aplicación. REQUISITOS DE DOCUMENTACIÓN En la manipulación, cuando el animal es pequeño se permitir que se agarre de la tapa de la jaula sujetando bien su cola con una mano para poder sujetar la piel suelta de la nuca con los dedos índice y pulgar de la otra mano, se debe procurar hacer esto en un 111 solo movimiento rápido. Una vez sujetado firme pero sin apretar demasiado, el animal puede sujetarse sobre la palma de la mano con los dedos restantes. REFERENCIAS/DOCUMENTOS APLICABLES Centro de Investigación, Hospital General Universitario de Valencia. (1990). Anestesia en el animal de laboratorio. Roedores. Research in surgery. Recuperado de: http://www.oc.lm.ehu.es/Fundamentos/Doctorado/cursos/CirExp/015.pdf Muñoz, J., Saldivar, S., Maldonado, C., Muñoz, C., & Moreno, M. (2010). La habilidad para sujetar y manejar animales de laboratorio no se adquiere fácilmente. Revista electrónica de Veterinaria. 12 (5B), 1695 - 7504. http://www.veterinaria.org/revistas/redvet/n050511B/051116.pdf. 112 Recuperado de: Anexo C. Lesión con 6OHDA en sustancia nigra pars compacta OBJETIVO Realizar la aplicación Intracerebroventricular de 6OHDA mediante cirugía estereotáxica, permitiendo acceder directamente al cerebro evitando la barrera hematoencefálica. CONDICIONES DE SEGURIDAD Uso de bata, polainas y gorro Mantener el área de trabajo limpia Tener precaución con los elementos corto punzantes que se utilizan Dejar al alcance de la mano todos los elementos a utilizar Permitir una buena iluminación del área de trabajo EQUIPAMIENTO, LOCALES, MATERIALES Y REACTIVOS Estereotáxico Lámpara Fresa Material quirúrgico (Bisturí, pinzas, tijeras, etc) Jeringa Hamilton Jeringa de Insulina Solución a Inyectar Thimerosal Peróxido de Hidrógeno Anestésicos Gasa 113 Aguja de sutura Hilo de sutura Marcador Solución salina OPERACIONES PRELIMINARES Definir las coordenadas de trabajo. Éstas medidas se establecen con un Atlas de coordenadas esterotáxicas para rata, por ser una inyección bilateral en ventrículo las medidas son: Antero-Posterior (AP): -4,4, Medio Lateral (ML): +1,2 y Dorso Ventral (DV): -7.8. Se debe tener en cuenta las conversiones para que las unidades del Atlas y el Aparato Estereotáxico sean las mismas. Preparar la solución a inyectar. Preparar la mesa de cirugía con el montaje del aparato estereotáxico con la aguja Hamilton, la fresa, y una lámpara PROCEDIMIENTO 1. Anestesiar el animal mediante la aplicación intraperitoneal de Ketamina y Xilacina en las proporciones requeridas para el peso del animal 2. Esperar que el animal este completamente dormido, verificando la ausencia de respuesta a estímulos externos o ausencia de reflejos (pellizcar pata, la nariz, tirar de las vibrisas, ausencia de reflejo corneal y palpebral, etc), ritmo respiratorio regular y relajado, sin apnea respiratoria 3. Cortar al rape el pelo del animal sobre la zona en que se va a realizar la cirugía 4. Posicionar el animal en el estreotáxico ajustando bien el cráneo en las estructuras del oído y los dientes en la parte anterior del aparato 114 5. Esterilizar la zona en la que se realiza la disección con Timerosal 6. Realizar la disección del animal desde la parte anterior de la cabeza, cuidando de no acercarse mucho a los ojos hasta la parte posterior del cráneo, pretendiendo abarcar desde bregma hasta lambda Figura 1. Esquema del cráneo de rata Fuente: Murcia, E. 2010 7. Limpiar el área de disección con Peróxido de Hidrógeno para facilitar la visibilidad 8. Colocar la aguja Hamilton sobre el bregma y tomar las coordenadas Antero posterior y Medio Lateral que marca el aparato para este animal 9. Sumar las coordenadas de trabajo a las coordenadas del aparato y se obtienen las coordenadas reales, son éstas últimas las que se deben ajustar en el estereotáxico para realizar la cirugía 10. se marca el punto en que se realizará la inyección 115 11. Realizar trepanado al cráneo para acceder al cerebro del animal. Los trépanos deben realizarse cuidadosa y precisamente para no dañar el cerebro, pero acertando correctamente al lugar en que se realiza la inyección 12. Ubicar la punta de la aguja justo sobre el cerebro y tomar la coordenada Dorso ventral del aparato 13. Sumar la coordenada de trabajo a la coordenada del aparato para obtener la coordenada dorso ventral real 14. Cargar la jeringa con 3μl de 6OHDA 15. Inyectar el animal hasta la coordenada real, se debe ser muy cuidadoso en no pasar de esta medida 16. Aplicar lentamente la 6OHDA y en ausencia de luz ya que la toxina es fotosensible , la aplicación completa del 6OHDA debe durar alrededor de 5 minutos, esto permite a la solución implantarse en el tejido 17. Dejar la aguja insertada unos minutos más para evitar que la solución de 6OHDA ascienda al sacarla 18. Sacar lentamente la aguja para evitar que la toxina suba por capilaridad 19. Suturar la herida 20. Desinfectar con timerosal la sutura 21. Desmontar el animal del estereotáxico 116 22. Colocar el animal cuidadosamente de regreso a su caja y vigilar su recuperación CÁLCULO E INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS El éxito del procedimiento se puede ver posteriormente con el revelado del marcaje. Posterior a la cirugía, el animal debe recuperarse del procedimiento. REQUISITOS DE DOCUMENTACIÓN Para una mejor preservación de la 6OHDA, ésta debe ser mantenido a -20°C, por lo que se recomienda sacarlo de congelación solo unos minutos antes de la aplicación en la rata, teniendo el tiempo suficiente para que se descongele y quede a temperatura corporal justo antes de su inyección. REFERENCIAS/DOCUMENTOS APLICABLES BLANCO–LEZCANO, Lisette et al. Núcleo pedúnculopontino: Una estructura involucrada en el procesamiento motor y emocional. En: Rev Neurol. 2003. 36; 12:1181-1185. KIRIK, Deniz; ROSENBLAD, Carl y BJÖRKLUND, Anders. Characterization of behavioral and neurodegenerative changes following partial lesions of the nigrostriatal dopamine system induced by intrastiatal 6-hydroxydopamine in the rat. In: Exp Neurol. 1998. PAVÓN, Nancy et al. Evaluación conductual del modelo de lesión unilateral en ratas con 6-hidroxidopamina: Correlación entre las rotaciones inducidas por Danfetamina, apomorfina y la prueba de habilidades manuales. En: Rev neurol. 1998. 26; 154:915-918. PAXINOS George y WATSON Charles. The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates.5th Edition. Elsevier Academic Press, 2005. 206 p. 117 Anexo D. PERFUSIÓN DE TEJIDO CEREBRAL OBJETIVO Fijación del tejido cerebral con Paraformaldehído a través de la perfusión. CONDICIONES DE SEGURIDAD Uso de guantes quirúrgicos, gorro, tapabocas y gafas Realizar procedimiento en Campana de extracción EQUIPAMIENTO, LOCALES, MATERIALES Y REACTIVOS Anestésicos (Ketamina/Xilacina, Pentobarbital, etc) Solución Salina Solución de fijado (Paraformaldehído 4%) Agujas Jeringas Equipo de disección Guillotina Superficie de apoyo para el animal Sistema de Perfusión OPERACIONES PRELIMINARES Preparar la solución de fijado, Paraformaldehído al 4% que para un litro consta de: 750ml de agua desionizada 118 250ml de PB 0.4M 40gr de Paraformaldehído Para preparar el Paraformaldehído se debe calentar 400 de agua desionizada a 65°C, adicionar lentamente el paraformaldehído y agitar permanentemente hasta que se disuelva completamente. Posteriormente se adicionan 250ml de PB 0.4M al paraformaldehído y completa el volumen con el agua desionizada. PROCEDIMIENTO 1. Anestesiar de acuerdo a las proporciones requeridas para el peso del animal 2. Esperar que el animal este completamente dormido, verificando la ausencia de respuesta a estímulos externos o ausencia de reflejos (pellizcar pata, la nariz, tirar de las vibrisas, ausencia de reflejo corneal y palpebral, etc), ritmo respiratorio regular y relajado, sin apnea respiratoria 3. Colocar el animal en posición decúbito supino sobre una superficie adecuada para la recolección de los tejidos de lavado y fijación, se debe sujetar el animal con cinta en sus patas para garantizar que este no se mueva durante el procedimiento 4. Realizar un corte en la parte superior del abdomen, en su esternón, separa la piel y cortar las costillas en paralelo hasta exponer el corazón y los pulmones 5. Insertar la aguja del sistema de perfusión por el ventrículo izquierdo y llegar hasta alcanzar la aorta ajustando la aguja a este nivel 119 FIGURA 1. Inserción de la aguja en el corazón de la rata Fuente: Ministerio de Ciencia e Innovación. 2012 6. Hacer una incisión en la aurícula derecha que permita la salida de la circulación 7. Comenzar a circular la solución de lavado a una velocidad moderada, agregando 200ml de solución salina de a 50ml por vez 8. Circular la solución de fijado que debe estar a temperatura ambiente. Se agregan 150ml de solución (aunque esta cantidad puede variar dependiendo del tamaño del animal). Cuando el Paraformaldehído entra en el animal, usualmente sufre una serie de contracciones musculares que es un indicativo de una correcta fijación 9. Retirar la aguja del animal y extraer el cerebro separando inicialmente la cabeza con la guillotina y posteriormente separando el tejido cuidadosamente para no dañar el cerebro 10. Los cerebros se almacenan en recipientes con paraformaldehído, por separado y debidamente marcados. 11. Los cerebros permanecen hasta un día en paraformaldehído, después de esto son lavados 3 veces en PB al 0.1% por 5 minutos y posteriormente puede ser almacenados en PB para su uso. 120 CÁLCULO E INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS Cuando el procedimiento se realizó adecuadamente el animal no expulsa líquidos por la nariz, el cuerpo del animal sufre de contracciones musculares y toma dureza durante la aplicación de la solución fijadora, finalmente al extraer el cerebro, este debe tener una consistencia dura y sin rastro de sangre, de otra forma se dificulta la preservación y manipulación del tejido. REQUISITOS DE DOCUMENTACIÓN Para una preservación prolongada de los cerebros deben almacenarse en criopreservante a -20°C. Para criopreservar los cerebros, deben someterse a gradientes de sacarosa al 7, 15 y 30% por un día cada uno o hasta que se precipite el cerebro, posteriormente se sumergen en un criopreservante que consta de: 200ml de PB 0.4M 300ml de Etilenglicol 300ml de Glicerol 150ml de Agua destilada REFERENCIAS/DOCUMENTOS APLICABLES Ministerio de Ciencia e Innovación. (2012). Técnicas de obtención e inoculación de muestras. Consejo superior de investigaciones científicas. Centro Nacional de Biotecnología. Universidad Autónoma de www.cnb.csic.es/.../CEEA/CEEA_Tecnicas61_2.doc 121 Madrid. Recuperado de: Anexo E Normalización de la preparación y uso de 6OHDA OBJETIVO Normar la metodología de la preparación y el uso de la 6-hidroxidopamina(Sigma, Chemical Co. USA, H-4381);(Neurotoxina utilizada para inducir un síndrome parkinsoniano en roedores). CONDICIONES DE SEGURIDAD Uso de guantes quirúrgicos, gorro, tapabocas y gafas Realizar procedimiento en Campana de extracción Lavado de materiales al finalizar con agua destilada EQUIPAMIENTO, LOCALES, MATERIALES Y REACTIVOS Balanza analítica Volumetrico 5ml Pipetas 1 ml, 875µl y 40µl Viales eppendorf Acido ascórbico Solución salina 0.9% 6-hidroxidopamina(Sigma, Chemical Co. USA, H-4381) 1.3 mg acido ascorbico OPERACIONES PRELIMINARES 122 Conservar a -20ºC el producto procedente de la firma Sigma, Chemical Co. USA, H4381 en el momento en que se recibe. Acotar su entrada en el file de control de productos almacenados en el refrigerador de -20 ºC. PROCEDIMIENTO 1. Tomar el frasco con 6-OHDA del refrigerador -20ºC y dar baja a la cantidad que se pesará distribuyéndose en soluciones alicuotadas en una gradilla con tubos Eppendorf. 2. Pesar en balanza analítica 1 mg de Ácido ascórbico. 3. Enrasara a 5 ml con solución salina en un volumétrico. 4. Pesar 0.5 mg de 6-OHDA en la balanza analítica. Registrar el empleo del equipo en el registro correspondiente. 5. Completar hasta 1.875ml con la solución salina de ácido ascórbico 6. Pipetear alícuotas de 40µl por vial. Cada vial debe estar protegido con papel metálico para evitar la descomposición de la sustancia por la iluminación 7. Conservar en el refrigerador a -20ºC el frasco de 6OHDA, acotar la entrada y almacenamiento de este producto al refrigerador. 8. Descontar cada vez se utilice un vial de solución. 9. Inyectar estereotáxicamente en cada animal, según los pasos normados, un volumen de 3 µl, que contienen según la preparación 8µg de 6OHDA. CONTROLES Comprobar por parte del técnico del grupo de trastornos del movimiento que la preparación de esta sustancia sigue estrictamente los pasos normados en este PNT, lo cual es muy importante para el éxito de la lesión. Antes de utilizar un vial de esta disolución chequear cuidadosamente la coloración del mismo. REFERENCIAS Comunicación personal con Brundi P. 123 Anexo E Protocolo para la preparación y tinción de Nills OBJETIVO Normar la metodología de la preparación y el uso de la tinción de Nills para la coloración de cuerpos celulares. CONDICIONES DE SEGURIDAD Uso de guantes quirúrgicos, gorro, tapabocas y gafas Realizar procedimiento en Campana de extracción Lavado de materiales al finalizar con agua destilada EQUIPAMIENTO, LOCALES, MATERIALES Y REACTIVOS Azul de toluidina 1g en 100ml de alcohol al 70% Cloruro de sodio al 1% Medidor de pH HCl OPERACIONES PRELIMINARES Preparación de la solución Stock 1g de de Azul de Toluidina en 100ml de alcohol al 70%. 124 Preparación solución de trabajo de Azul de Toluidina 10ml de solución stock + 40 ml de cloruro de sodio. PROCEDIMIENTO Tinción. 1. Sumergir los cortes en la solución de trabajo de Azul de Toluidina durante 17 minutos 2. Lavar con H2O desionizada por 3 veces ( inmersión ) 3. Deshidratar rápidamente Alcohol 95% por 2 minutos (1 vez) Etanol 100% por 2 minutos ( 2 veces) 4. Aclaramiento con Xileno 3 minutos (2 veces) 5. Cubrir con medio para montaje REFERENCIAS Protocolo modificado 125 Anexo F. Protocolo Test Neurologico y Pole Test OBJETIVO CONDICIONES DE SEGURIDAD EQUIPAMIENTO, LOCALES, MATERIALES Y REACTIVOS Plataforma lisa. Tubo metálico con superficie abrasiva de 60 cm de largo por 3 cm de diámetro. Cámara o formato de registro de datos Animal de experimentación temporizador alcohol al 70% y toalla OPERACIONES PRELIMINARES Limpiar plataforma con alcohol al 70% Aclimatación del animal 126 PROCEDIMIENTO 1. Reflejo de caída: es el reflejo que corrige la orientación del cuerpo cuando se toma fuera de su posición vertical normal al animal. 2. Reflejo de flexión- retención : es el reflejo de las extremidades el cual cuando estas son estiradas tiende a recogerse 3. Reflejo de corrección: cuando el animal es dispuesto boca arriba en una superficie plana el tiende a corregir posición 4. Reacción de apoyo o localización por contacto: Se suspende la rata de la cola y se acerca a una superficie plana. Cuando las vibrizas hacen contacto con la superficie ella tiende a estirar sus extremidades para equilibrarse. 5. Localización visual: Se suspende la rata horizontalmente de tal manera que las patas anteriores alcancen la superficie. 6. Pole Test: El animal se coloca en la cima de un tubo de 60 cm de largo por 3 cm de diámetro. Por el que deberá descender en un tiempo max de 60 seg.se tendrán en cuenta la corrección de la posición, numero de extremidades usadas y el uso de la cola Los puntos del 1 al 5 serán tenidos en cuenta como 0(cero) si no se realizó y 1 (uno) si se realizó. Los animales con un estado neurológico normal mostraran comportamientos completamente afirmativos para las pruebas. REFERENCIAS Bures, J., & Buresova, O. (1983).Techniques and basic experiments for the study of brain and behavior. 2nd ed. Amsterdam: Elsevier Science Publishers B. V. 127 Anexo G. Protocolo Test de Barnes Modificado OBJETIVO Descripción de la metodología que permite evaluar la memoria y deterioro cognitivo en rata Wistar. CONDICIONES DE SEGURIDAD después del uso con cada animal EQUIPAMIENTO, LOCALES, MATERIALES Y REACTIVOS Cuarto oscuro con paredes oscuras y de mismo tono. Cámara o formato de registro de datos Plataforma circular de Barnes con 1,22 metros de diámetro, hecha en triplex y forrada con fórmica de color blanco, con 18 agujeros de 9,5cm de diámetro cada uno, espaciado a 30° uno de otro y forrado con fórmica de color negro y la base tiene 90cm de alto. Señal intralaberintica (Bandera blanca) Estímulos aversivos de luz (Bombillo 150Watt) y sonido (Blanco 90 Db). Animal de experimentación temporizador alcohol al 70% y toalla 128 OPERACIONES PRELIMINARES Limpiar plataforma con alcohol al 70% Revisar la posición de la bandera y caja de escape Verificar el funcionamiento de los estímulos aversivos (luz y sonido). Preparar la cámara de vídeo o el formato de registro de los datos. Se realiza 1 sesión de aclimatación donde el animal se manipulará por la persona encargada del desarrollo de la prueba de manera que este se familiarice con dicha persona. Se realiza 1 sesión de habituación al laberinto, en la que se colocaran indistintamente a los sujetos experimentales en la caja de arranque, plataforma y la caja de escape, en ausencia de ruido y en presencia de luz tenue con un bombillo de luz roja de 25 watts. PROCEDIMIENTO 1. Sujetar gentilmente al animal a evaluar y extraerlo de su caja. 2. Ubicar el animal en la caja de escape cuidando de que no observe la posición de la bandera 3. Levantar la caja de arranque al mismo tiempo que se encienden las aversiones, el temporizador y la cámara de video 4. Luego de 60sg guiar el animal hacia la bandera e introducirlo al agujero de escape si no la ha encontrado 5. Tomar el tiempo que le toma al animal en encontrar el agujero de escape 6. Repetir los pasos 1, 2, 3, 4 y 5 en los 7 ensayos restantes limpiando la plataforma antes de comenzar cada prueba. 129 Figura 1. Test de Barnes modificado y sus especificaciones VARIABLES A MEDIR E INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS Variable Descripción Latencia del primer agujero Tiempo en que el animal llega y explora el primer agujero. Distancia recorrida Distancia recorrida en 60 segundos. Numero de errores Numero de agujeros erróneos que explora. CONTROL 130 Numero aciertos de Número de veces que el animal encuentra el agujero de escape en un día de prueba. Latencia escape de Tiempo en que el animal ingresa al agujero de escape. Por ser una prueba de aprendizaje, una animal en condiciones normales, debe aprender a asociar la bandera con la posición de la caja de escape por lo cual en los ensayos tiene que ir disminuyendo en errores y latencia de escape. REFERENCIAS/DOCUMENTOS APLICABLES Navarrete, F., Pérez-ortiz, J. M., Femenía, T., & García-gutiérrez, M. S. (2008). Métodos de evaluación de trastornos cognitivos en modelos animales, RevNeurol 2008; 47(3), 137–145. Barnes, C.A., 1988. Spatial learning and memory processes: the search for their neurobiological mechanisms in the rat. MODIFICACION POR AUTOR. 131 Anexo H. Protocolo anestésico para ratas OBJETIVO La prevención y alivio del dolor deben estar en estrecha relación con los procedimientos y protocolos quirúrgicos en animales de experimentación. Las lesiones inducidas durante una cirugía sin una adecuada analgesia o anestesia, constituyen un estímulo doloroso inapropiado con niveles inaceptables de stress y diestress, lo cual afecta la respuesta orgánica y puede modificar los resultados de un experimento; además, el practicar intervenciones quirúrgicas en animales sin un adecuado nivel anestésico, es una práctica totalmente inaceptable desde el punto de vista ético y humanitario. Los anestésicos pueden ser fijo (inyectables) o inhalatorios (líquidos volátiles o gases) siendo los más utilizados el Isoflirane y el enflurane dentro de los halógenos, el Pentobarbital entre los barbitúricos, Ketamina como disociativo y el Hidartocloral (esferoidal). Casi todos se pueden asociar con tranquilizantes, sedantes (acepromacina o Xilacina) analgésicos narcóticos y no narcóticos, además de los vagolíticos (atropina). Los analgésicos más eficientes suelen ser los narcóticos opioides como la morfina, meperidina y fentanilo. Es así como el determinar la cantidad necesaria para prevenir y aliviar el dolor en procedimientos quirúrgicos en ratas de experimentación se hace un procedimiento de suma importancia a la hora de realizar cualquier procedimiento quirúrgico. 132 RESPONSABILIDADES: Implementación: responsables del área de quirófano y Bioterio. Ejecución: todos los estudiantes de pregrado y posgrado pertenecientes a el grupo MECZH. Control: Jefe de Quirófano y Bioterio. ALCANCE Aplicación en áreas de fisiología, Neuroanatomía, Biología celular, Bioquímica y Experimentación animal. CONDICIONES DE SEGURIDAD Uso de bata, polainas y gorro Limpiar superficie de apoyo después del uso con cada animal EQUIPOS, MATERIALES Y REACTIVOS Jeringas de insulina U-100 X 1 ml 27 GX1/2” Pesa Atropina Sulfato 1:1000 Inyectable. Xilacina monoclorhidrato 2% Inyectable. Ketamina Clorohidrato 100 mg/2 ml inyectable. Meperidina Clorohidrato 100 mg/ 2 ml inyectable. Formato de protocolo técnico (ver anexo 1) 133 PROCEDIMIENTO 1. Pesar la rata y diligenciar el formato del protocolo técnico (Anexo 1). 2. Premedicación y preanestesia (Atropina SO4) a una posología de 0.04 a 1.0 mg/Kg de peso vía subcutánea (SC). 3. Anestesia general disociativa (Ketamina 5%+ Xilacina 2%) a posológia de 90:10 mg/Kg de peso respectivamente por vía Intraperitoneal (IP) en la misma jeringa (Tabla 1). Para procedimientos prolongados (>45 min) en los cuales se requiere más de una aplicación, pueden usarse posología más bajas 70 mg/Kg p.v. (Ketamina + 5mg/Kg p.v. (Xilacina) mezcladas en la misma jeringa. 4. El efecto anestésico logrado es de 30-45 minutos. Para procedimientos superiores a 45 minutos se deberá aplicar una segunda dosis de la mezcla anteriormente descrita y dosis sucesivas según la respuesta individual. 5. El refuerzo de la dosis de la mezcla (2° dosis), permitirá un tiempo quirúrgico aproximado de 45 – 60 minutos adicionales y un tiempo de recuperación de aproximadamente 1-3 horas. 6. Analgesia (Mepridina), Una vez finalizado el procedimiento quirúrgico, se deberá administrar Meperidina a posología de 10-20 mg/Kg vía 134 GRUPO : Modelos Experimentales para las PNT N° Ciencias Zoohumanas Hoja 3 de 4 Aprobado por : Doris Eelna Navarro C Emisión N° 1 Firma : Fecha : 20-05-2008 TITULO: PROTOCOLO ANESTESICO PARA RATAS Intramuscular o (IM) o subcutánea. La dosis puede ajustarse a 10 mg/Kg para la mayoría de procedimientos y repetirse cada 2-4 horas de ser necesario. 7. Las soluciones Stock pueden permanecer a temperatura ambiente. Una vez preparada la mezcla Ketamina / Xilacina, que debe ser preparada en la cantidad mínima necesaria. En caso de sobrar está mezcla debe ser refrigerada a 4 C y ser usada máximo en las 24 horas siguientes. Tabla 1: Dosificación de la asociación anestésica Ketamina / Xilacina según el peso Ketamina 5% Xilacina 2% Peso 90 mg/Kg (gramos) miligramos Mililitros miligramos Mililitros (mililitros) 50 4.50 0.090 0.50 0.03 0.120 100 9.00 0.180 1.00 0.05 0.230 Volumen 10 mg/Kg 135 Volumen Total 150 13.50 0.270 1.50 0.08 0.350 200 18.00 0.360 2.00 0.10 0.460 250 22.50 0.450 2.50 0.130 0.580 300 27.00 0.540 3.00 0.150 0.690 350 31.50 0.630 3.50 0.180 0.810 400 36.00 0.720 4.00 0.200 0.920 450 40.50 0.810 4.50 0.230 1.040 500 45.00 0.900 5.00 0.250 1.500 NOTA: La Ketamina se clasifica como un anestésico disociativo selectivo con poco poder depresor de los centros cerebrales (cardiovascular y respiratorio); sin embargo, puede producir Sialorrea, hipertonicidad muscular y en algunos casos puede sobrevenir un paro respiratorio, por lo cual es recomendable asociarlo con atropina. La Meperidina (peptidina) es un derivado opioide, de gran poder analgésico. A corto plazo puede producir somnolencia y depresión respiratoria dependiendo de la dosis por lo cual debe administrarse con precaución y a dosis bajas. Aunque la dosis recomendada en ratas es de 10-20 mg /Kg cada 2-3 hora es suficiente con una dosis de 5 mg / Kg p.v. vía IP o SC. Estos dos medicamentos tienen control especial por parte del fondo nacional de estupefacientes. 136 BIBLIOGRAFIA PROTOCOLO ANESTESICO EN RATAS WISTAR. Grupo de Neurociencias de Antioquia. Versión 001. Protocolo Técnico Fecha: Código: Peso: Sexo Espacie: M: H: Edad: PREANESTESIA Ayuno Si No Atropina Si No Dosis: Ref 1/Vía Hora Ref. ANESTESIA Medicamento Dosis/Ví Hora a 2/Vía ANALGESIA 137 Hora PORCEDIMIENTO Temperatura C Hora de registro Hora de Inicio Hora de finalización Hora de sutura Elaborado por : Doris Elena Navarro Firma: Cl Fecha: 20-05-2008 Cargo: Investigador Asociado MECZH Revisado por: Firma: Fecha: Firma: Fecha: Cargo: Aprobado por : Cargo 138