Guida all`esame morfologico dello striscio ematico

Guida all’esame
morfologico dello
striscio ematico
Tutte le immagini, se non altrimenti
indicato, sono state osservate con
un microscopio ad alta risoluzione
(obiettivo 100x)
Striscio ematico normale di cane
Striscio ematico normale di gatto
Le immagini e le didascalie sono state
fornite da:
Dennis B. DeNicola, DVM, PhD, DACVP
Rick L. Cowell, DVM, MS, MRCVS, DACVP
Michelle Frye, MS, DVM
Nikola Pantchev, DVM
Risposta
rigenerativa
Policromasia lieve
Policromasia marcata
Colorazione rapida policromasia
NBM - Reticolociti di cane
NBM - Reticolociti di gatto
Sferociti senza policromasia
Sferociti con policromasia
Ghost cells
Agglutinazione
Rouleaux
Cane - 2 corpi di Heinz
Colorazione rapida - gatto 3 corpi di
NBM - Corpi di Heinz
Eccentrociti*
Blister cell e cheratociti
Emazie crenate
Acantociti
Cellule di Burr
Schistocita
Punteggiature basofile
Mycoplasma haemofelis
Mycoplasma haemocanis
Babesia gibsoni
Babesia canis
Anaplasma phagocytophilum
Neutrofilo normale
Neutrofilo ‘a banda’
Neutrofilo - tossicità lieve
Neutrofilo - tossicità moderata
Neutrofilo - tossicità marcata**
Monocita normale
Eosinofilo normale di cane
Eosinofilo normale di gatto
Basofilo normale di cane
Basofilo normale di gatto
Linfocita normale
Linfocita - reattività lieve
Linfocita - reattività
moderata
Linfocita - reattività
moderata
Linfocita - reattività
marcata/blastolinfoide
Conta piastrinica normale
(50x)
Conta piastrinica diminuita
(50x)
Aggregati piastrinici (50x)
Piastrine normali e grandi
Macropiastrina
Anemia Emolitica
Immuno Mediata
Altre
poichilocitosi
heinz poco visibili (frecce) e 2 evidenti
Morfologie
eritrocitarie
varie
Agenti
infettivi*
Leucociti
Piastrine
*In questa guida non sono incluse immagini relative ad agenti infettivi, come la Leishmania, facilmente ritrovabili nelle cellule del midollo.
**Illustration reproduced with permission from Reagan WJ, Rovira AI, DeNicola DB, eds. Veterinary Hematology: Atlas of Common Domestic and Non-Domestic Species. 2nd ed. Ames, IA: Wiley-Blackwell; 2008. Copyright 2008 Wiley-Blackwell.
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Diagnosing the cause of anaemia in feline patients can be frustrating and difficult at best. It is not uncommon
to rule out obvious causes such as bleeding and renal failure and be left with a list of differential diagnoses
that can be a challenge to work through. Often, feline haemotropic mycoplasmosis (FHM), formerly known as
haemobartonellosis or feline infectious anaemia, remains a possibility. Traditionally, diagnosis of this infection
has relied on microscopically identifying the organism on the patient’s blood smear, which is an insensitive
precious time is lost trying to identify the true cause of anaemia.
haemominutum and Candidatus Mycoplasma turicensis
this diagnosis. A positive response does not actually confirm the diagnosis, and if the cat does not respond,
Mycoplasma haemofelis, Candidatus Mycoplasma
method and can result in misidentification. Response to treatment is a common means of trying to confirm
(formerly Haemobartonella) Test
Results in 2 – 7 days
Feline Haemotropic Mycoplasmosis
Feline haemotropic mycoplasmas are parasites that attach to
the outside of erythrocytes and result in anaemia. This organism
was formerly known as Haemobartonella but has been reclassi-
Diagnostic Updates
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If you have questions about the IDeXX RealPCR™ FHM Test,
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fied as a mycoplasma based on recent RNA sequence
analysis. Feline haemotropic mycoplasmas are small (0.3–0.8
μm) gram-negative bacteria that lack a cell wall and infect a variety
of mammalian species, including people. Damage caused by
parasite attachment and immune response by the host results in
increased red blood cell (RBC) destruction and anaemia. There
are three haemotropic mycoplasmas that have been identified in
cats: Mycoplasma haemofelis, Candidatus Mycoplasma haemo-
References
1. Messick JB. Hemotrophic mycoplasmas (hemoplasmas): A review and new insights into pathogenic potential. Vet Clin Pathol. 2004;33:2-13.
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on pathogenicity of the small variant of Haemobartonella felis in cats. am J Vet res. 2002;63:1172-1178.
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Wetherby, West Yorkshire LS22 7DN
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IDEXX Reference Laboratory Wetherby
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minutum and most recently Candidatus Mycoplasma turicensis.
(Candidatus designation is given to incompletely characterised
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Haemotropic mycoplasma in red blood cells (1000x), Picture Nikola Pantchev
tion. On physical examination, mucous membranes are pale and
ed were positive for infection.
anorexia or inappetence, weakness, weight loss and dehydra-
work performed, and 28% of sick cats where FHM was suspect-
mia in cats. Cats with FHM present with depression, lethargy,
cats, 14.5% of healthy client-owned cats having routine blood
FHM is a common cause of severe haemolytic ane-
Recent studies revealed that 12.7% of healthy blood donor
sometimes icteric. Tachypnea, tachycardia and a heart murmur
clinical sign of the disease.
than 4 to 6 years, presentation during summer months, positive
Subclinical carriers of feline haemotropic mycoplasmas show no
include: access to the outdoors, fleas, male gender, age of less
may be present. Fever and splenomegaly are not uncommon.
Risk factors associated with haemotropic mycoplasma infection
FeLV status, history of cat bite abscesses and absence of current
vaccination.
The CBC in cats presenting with clinical signs of illness reveals
a haematocrit that is often 50% of normal. The anaemia is usually
hyperbilirubinaemia from haemolysis may be present.
recipient.
profile is usually normal, but increases in ALT from hypoxia and
transfusion with infected blood can result in infection of the blood
CBC may be normal or reveal only a mild anaemia. A biochemical
sive behaviour have been associated with transmission. Blood
illness or infection with FeLV. In cats with subclinical infections, the
lice. Kittens can be infected from the queen. Biting and aggres-
regenerative, but may be nonregenerative if there is concurrent
Transmission can occur through fleas and possibly ticks and
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referto completo ed esaustivo
Un esame ematologico accurato è
dato da un sistema performante e
dall’analisi dello striscio ematico.
EX
ssicurarsi che lo striscio di sangue sia completamente asciutto prima di passare alla colorazione. Se l’umidità è
†A
alta, asciugare il vetrino con un ventilatore a bassa velocità o semplicemente agitare il vetrino all’aria tenendolo in
mano. Non usare l’asciugacapelli ne altre apparecchiature.
* Per campioni con ematocrito basso (anemia), si deve aumentare l’angolo tra i vetrini per avere un film di sangue
più spesso. Per campioni con ematocrito alto (disidratazione, policitemia ecc.), l’angolo tra i vetrini deve essere
diminuito per preparare un film più sottile.
6. Lasciare asciugare lo striscio all’aria.†
5. Con un movimento fluido ma saldo,
muovere il vetrino ‘diffusore’ verso
la restante parte del primo vetrino
mantenendo fermo l’angolo di 30 gradi e
senza sollevarlo. Il sangue dalla goccia
seguirà il vetrino e si diffonderà lasciando
un sottile film sul vetrino di base. Lo
striscio di sangue dovrebbe essere 3- 4
cm di lunghezza.
4. Aspettare che il sangue diffonda per
capillarità sul margine del secondo
vetrino.
3. Far scivolare il vetrino ‘diffusore’ in
modo che venga a contatto con la
goccia di sangue.
2. Disporre un secondo vetrino ”diffusore”
nuovo e pulito di fronte alla goccia di
sangue cercando di formare un angolo
di 30° rispetto al primo vetrino.*
1. Depositare
una piccola goccia di
sangue fresco e/o correttamente
miscelato con l’anticoagulante su di
un vetrino nuovo e pulito a circa 2 cm
dal bordo.
Completate il vostro esame ematologico realizzando uno striscio di ottima qualità
Come preparare un striscio ematico corretto
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L’esame dello striscio ematico
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