Agave angustifolia Haw

FERTILIZANTES DE LIBERACIÓN LENTA PARA EL CULTIVO DE MAGUEY
MEZCALERO (Agave angustifolia Haw.)
El presente informe reúne un estimado del 40% de avance del proyecto SIP20060266, y
fue realizado en el periodo de enero a diciembre de 2006.
Clave del informe: 4061
RESUMEN
El cultivo de maguey espadín (Agave angustifolia Haw.) es uno de los de mayor tradición
actualmente en el estado de Oaxaca. A partir de el se obtiene la materia prima para la
elaboración de una de las bebidas alcohólicas de mayor reconocimiento en México, el “mezcal”.
La falta de un paquete tecnológico para los productores de maguey para el manejo agronómico
del cultivo nos llevó al planteamiento y operación del presente proyecto, con el objetivo de
realizar los estudios y experimentos necesarios para generar recomendaciones de fertilización
que optimicen el crecimiento y la calidad, para el cultivo de maguey mezcalero en sus diferentes
etapas de desarrollo, con base en la utilización de fertilizantes de liberación lenta (FLL),
orgánicos y minerales.
Se han realizado cinco acciones experimentales de investigación, a partir del muestreo de
suelos de la “región del mezcal” en Oaxaca, para realizar un diagnóstico de las condiciones
actuales de fertilidad de los suelos en donde se cultiva la especie, así como la condición de
nutrición de las plantas. A partir de las muestras se determinó el efecto del sistema de labranza
y la edad del cultivo sobre indicadores de fertilidad del suelo. Asimismo, se realizó un valioso y
pionero trabajo de caracterización de la riqueza y diversidad de hongos formadores de micorriza
arbuscular en este agrosistema. Se evalúa el efecto de la aplicación de fertilizantes minerales y
orgánicos de liberación lenta sobre el crecimiento y nutrición de plantas de maguey espadín en
condiciones semicontroladas de campo experimental. Al mismo tiempo, se estiman las
magnitudes de pérdida de nutrientes por lixiviación en diferentes tipos de suelo y por efecto de
la aplicación de diferentes productos fertilizantes. Finalmente, se valora la influencia de las
prácticas agrícolas sobre el contenido de algunos contaminantes en agua de pozos destinados
al consumo humano y al riego agrícola, a través del muestreo y análisis de esos pozos.
Los trabajos se han realizado durante un año, faltando por evaluar los efectos por dos años
mas, dado el largo ciclo de cultivo del maguey espadín, que va de siete a ocho años.
INTRODUCCIÓN
La importancia del cultivo del “maguey mezcalero” o “maguey espadín” (Agave angustifolia
Haw.) en el estado de Oaxaca queda claramente establecida con los datos recogidos por
Chagoya-Méndez (2004) en el diagnóstico más reciente realizado a la cadena productiva
maguey – mezcal. Descontando la imprecisión del trabajo y la variabilidad de los datos
reportados, es concluyente que se cultivan alrededor de 15,500 hectáreas con esta especie en
el estado de Oaxaca, concentrando la proporción mayoritaria la zona conocida como “región del
mezcal”, que abarca, en orden de superficie cultivada, los distritos político-administrativos de
Tlacolula, Yautepec, Miahuatlán, Ejutla, Ocotlán, Sola de Vega y Zimatlán (Figura 1). Las
plantaciones en Tlacolula, el distrito con mayor producción de toda la región, se localizan a una
altitud de 1,300-1,700 msnm, con una temperatura media de 20.3ºC y una precipitación anual
de 644 mm; mientras que en Yautepec, el distrito productor más importante de la Sierra Sur, la
altitud es de 800-1,200 msnm, con una temperatura media de 24.9ºC y una precipitación de 508
mm (SEDIC, 1998; Curioca, 1999; Garnica, 2005). Se tienen censados alrededor de 13,000
productores de maguey, que cosechan cada año materia prima para producir cerca de
5,000,000 de litros de mezcal en su dos variantes, 100% de agave (tipo I) y mezclas (tipo II).
Aproximadamente 710,000 litros del mezcal tipo I se destinan a la exportación, generando un
importante monto de divisas que llega, en alta proporción, a las zonas rurales productoras de
maguey y mezcal.
No obstante su importancia económica y social, al cultivo de maguey espadín no se le ha dado
la importancia que amerita, y continúa siendo considerado un cultivo rústico, tolerante a
condiciones totalmente adversas de suelo y clima. No existe en la región un plan o programa de
investigación destinado a mejorar las condiciones del conocimiento y desarrollo tecnológico
relativo a la fertilidad del suelo y la nutrición del A. angustifolia. Este tipo de estudios deberán
establecerse a largo plazo, dado que es una especie de lento crecimiento, ya que tarda de 6 a
10 años para alcanzar la madurez adecuada para su cosecha (Vera y Benito, 2001). Durante
todo este tiempo se deben asegurar la presencia y disponibilidad de los nutrientes necesarios
en el suelo para obtener rendimiento alto y producto de calidad sin que, al utilizar fertilizantes
minerales u orgánicos, se afecten negativamente los factores de la producción, suelo y agua.
El manejo que se aplica a los cultivos de maguey espadín ha sido desarrollado a lo largo de los
años por los propios productores, a través de ensayos y errores. Actualmente pueden
describirse varios sistemas de producción que se diferencian claramente por la concurrencia de
dos factores de manejo: a) la situación fisiográfica de las parcelas, cuyos niveles son planicie,
lomerío y montaña, con la presencia o no de cultivos intercalados (maíz, frijol, garbanzo, entre
otros) entre las hileras del maguey espadín durantes sus primeros tres a cuatro años de
establecimiento; b) la densidad y arreglo topológico de las plantaciones, lo que permite
diferenciar en cultivo intensivo, semi-intensivo y extensivo. La combinación de estos factores
permite la existencia de los diversos sistemas de producción en la región, que conllevan
asociadas diferentes tecnologías para la labranza del suelo, el manejo de la nutrición vegetal, la
protección fitosanitaria, las prácticas de conservación de suelo y agua, así como la cosecha. De
acuerdo con Chagoya-Méndez (2004), del total de productores de maguey espadín en la
entidad oaxaqueña en el año 2000, solo el 20% fertilizaba el cultivo con estiércol. En cambio, en
el año 2004 el 52 % de los productores de maguey aplicó algún fertilizante; de éstos, el 80 %
aplicó algún tipo de abono orgánico y el 20 % restante fertilizante mineral, aunque la cantidad
aplicada se estima insuficiente para el buen desarrollo del maguey; la dosificación y frecuencia
de aplicación se decidió en función del interés en el cultivo y de las posibilidades económicas
del productor, mas que basados en recomendaciones técnicas.
Son muy escasos los trabajos en la literatura enfocados a determinar el manejo de la fertilidad
del suelo y la nutrición de la especie, en la región o fuera de ella, por lo cual el presente
proyecto se realizó con el objetivo de realizar estudios y experimentos que nos brinden
información confiable y pertinente para ofrecer un paquete tecnológico destinado al manejo
sostenible de la fertilidad del suelo y la nutrición de los cultivos de A. angustifolia en las regiones
productoras del estado de Oaxaca, con base en el uso de productos fertilizantes de liberación
lenta, orgánicos y minerales.
Las pocas investigaciones que existen sobre la fertilización de especies de A. angustifolia han
sido dirigidas casi exclusivamente hacia la aplicación de fertilizantes minerales: N-P-K (Carrión y
Vinent, 1986, en Arredondo-Velásquez et al 2001). En Oaxaca se desarrolló un trabajo de
investigación en el que se ensayaron diversos tratamientos de fertilización mineral y orgánica en
A. angustifolia , con el objetivo de recomendar una dosis de fertilización para sistemas de
producción de valle y lomerío, incluyendo entre sus tratamientos la aplicación de un inoculante
de hongos de micorriza arbuscular (HMA) de origen desconocido, que fueron desarrollados y
proporcionados en 1999 por la Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y
Figura 1. Ubicación de los distritos que forman la “región del mezcal” en el estado de Oaxaca, México.
Zimatlán
Ocotlán
Tlacolula
Ejutla
Sola de Vega
Yautepec
Miahuatlán
Región del
Mezcal
Oaxaca
México
Alimentación (SAGARPA; Arredondo-Velásquez;2001). Se reportaron resultados positivos
en los parámetros de crecimiento vegetativo a la aplicación del inoculante en el maguey, sobre
todo cuando se aplicó simultáneamente con estiércol y residuos orgánicos domésticos.
Los inoculantes de micorriza arbuscular representan una opción biotecnológica complementaria
para mejorar el crecimiento y desarrollo de las plantas, ya que son capaces de incrementar la
absorción de nutrientes (N, P, K, Ca, Cu, Mg, Mn, Zn, etc) y traslocarlos a la planta, debido a
que incrementan el área de exploración de la raíz a través de la extensión de sus hifas en el
suelo (González et al., 1994; Pedraza et al., 1994; Pedraza et al., 2001 en Arredondo-Velásquez
et al. 2001), promoviendo también mayor resistencia al estrés hídrico y a los patógenos de la
raíz (Vidal et al., 1992; Smith y Read, 1997; Pedraza et al., 2001 en Arredondo-Velásquez et al.,
2001).
Con la inoculación de hongos de micorriza también se puede reducir o sustituir el uso de
fertilizantes minerales para lograr un desarrollo agrícola ecológicamente sostenible que
conduzca a la conservación del suelo desde el punto de vista de su estructura, fertilidad y
biodiversidad (Mandujano, 1993; Vargas et al., 1993; Díaz 1995; Juárez, 1995; Cruz, 1993;
Benítez, 2001).
MATERIALES Y MÉTODOS
El proyecto se ha desarrollado a través de la planificación, instalación, seguimiento y evaluación
de distintos experimentos, que se describen a continuación.
1. Diagnóstico de la fertilidad del suelo y el estado nutrimental de plantas de maguey
mezcalero en la “región del mezcal” del estado de Oaxaca.
Selección de los sitios de estudio. Como resultado de recorridos de campo previos, se logró
la participación de productores de las comunidades de: San Carlos Yautepec, distrito de
Yautepec; Tlacolula de Matamoros, San Baltazar Guelavila y La Soledad Salinas, distrito de
Tlacolula; Santo Tomás Mihautlán y Ranchería El Tecolote, distrito de Miahuatlán; Barrio Santa
Anita, distrito de Sola de Vega; San Agustín Amatengo, El Vergel, San Miguel Ejutla y La
Compañía, distrito de Ejutla; San Baltasar Chichicapam, distrito de Ocotlán; Santa Catarina
Quiané y Valdeflores, distrito de Zimatlán (Figura 1). En cada una de las comunidades arriba
mencionadas se ubicaron de tres a seis parcelas cultivadas con maguey mezcalero,
seleccionándolas por su ubicación fisiográfica y manejo del cultivo. Se consideraron como
condiciones de planicie las parcelas con pendiente máximas de 5%, en donde la labranza se
realiza con tracción mecánica (PT); condiciones de lomerío fueron parcelas con pendientes
entre 6 y hasta 25% de pendiente, en donde la labranza es con tracción animal (ADP); y
condiciones de montaña las parcelas con pendientes iguales o superiores a 26%, en donde la
labranza es mínima o reducida y se realiza utilizando fuerza humana con ayuda de
herramientas básicas (MT).
Muestreo de suelos. En cada una de las parcelas seleccionadas se realizó un muestreo del
suelo y de hojas sistemático, en un diseño denominado “cinco de oros”. Se ubicó visualmente la
planta localizada en el centro de la parcela y a partir de ella se ubicaron, hacia los cuatro puntos
cardinales, cuatro plantas más, cada una de ellas ubicada a la mitad de la distancia entre el
centro y el límite de la parcela. En cada planta se seleccionó una hoja, aproximadamente a la
mitad de la distribución de su follaje, la cual se cortó desde la base del tallo, se subdividió en
porciones de alrededor de 10 a 15 cm y se guardó en bolsas de papel para su traslado al
laboratorio. Para la determinación de parámetros físicos y químicos se muestreó el suelo en
cada uno de los puntos ubicados en la inmediación de la planta seleccionada, a profundidades
de 0-20 y 20-40 cm. Las muestras de suelo se almacenaron en bolsas de plástico, se
etiquetaron perfectamente y se trasladaron al laboratorio para su análisis posterior. Para el
análisis de parámetros biológicos asociados a la presencia de hongos formadores de micorriza
arbuscular (HMA), las muestras de suelo recolectadas fueron de suelo rizosférico. En cada una
de las plantas ubicadas se tomaron cuatro muestras, ubicadas en los cuatro puntos cardinales
de la planta. Se limpió la superficie del terreno de residuos orgánicos y piedras, se excavó hasta
una profundidad entre 15 a 20 cm hasta encontrar abundantes raíces del maguey, se tomó
aproximadamente un Kg de suelo de esa zona. Todas las submuestras de una parcela (25 en
total) se homogeneizaron y se redujeron por cuarteo hasta tener una sola muestra compuesta,
la cual se guardó en bolsas de polietileno etiquetadas y se trasladaron al laboratorio, en donde
se almacenaron en refrigeración (4–6 ºC) hasta su análisis. Cada una de las parcelas
muestreadas se ubicó por geoposicionamiento (GPS). En las parcelas del distrito de Tlacolula
se efectuó el estudio de calidad del suelo. En esas parcelas, al momento de tomar las muestras
de suelo, y en cada uno de los cinco puntos seleccionados por parcela, se tomaron lecturas de
resistencia del suelo a la penetración, utilizando un penetrómetro digital portátil.
Acondicionamiento de las muestras de suelo. En el laboratorio, las muestras de suelo se
separaron en dos fracciones: la que se utilizó para los análisis físicos y químicos se secó sobre
plástico bajo condiciones de invernadero. La otra fracción que se empleó para los análisis
biológicos se guardó en refrigeración. Una vez seco el suelo, se procedió a molerlo con un
mazo de madera y a tamizarlo con una malla de 2 mm de abertura, con la finalidad de tener un
tamaño granulométrico uniforme en las muestras. Posteriormente se homogeneizaron por el
método de cuarteo y se almacenaron en bolsas de plástico a temperatura ambiente hasta el
momento de su análisis.
Acondicionamiento de las muestras foliares. Las hojas fueron lavadas con detergente neutro
y agua destilada, se trocearon a tamaño aproximado de dos cm y se secaron en estufa a 65ºC
hasta peso constante, lo que requirió de 96 a 120 horas. Se molieron en molino eléctrico de
aspas a un tamaño de partícula aproximado de 0.5 mm. Las muestras secas y molidas se
guardaron en bolsas de plástico herméticamente cerradas, a temperatura ambiente y en
oscuridad hasta el momento de su análisis.
Análisis físico y químico de las muestras de suelo. Los análisis físicos y químicos para
clasificar la fertilidad del suelo se realizaron de acuerdo a lo recomendado por la Norma Oficial
Mexicana NOM-021 RECNAT-2000 (SEMARNAT, 2002). El pH se determinó por el método AS-
02 en una relación suelo:agua (1:2, peso, volumen); el contenido de carbono orgánico por el
método AS-07, de Walkley y Black; el fósforo disponible por el método AS-10, de Olsen; el
nitrógeno inorgánico por el método AS-08; Ca, Mg, K y Na se extrajeron con acetato de amonio
1M (pH 7) y se cuantificaron por espectrofotometría de absorción atómica. La densidad
aparente se determinó por el método del cilindro (Klute, 1986), la resistencia mecánica del suelo
en campo se midió con un penetrómetro digital y el contenido de agregados hidroestables por el
método de tamizado en húmedo de Kemper y Rosenau (1986) modificado por Bethlenfalvay y
Barea (1994). La actividad microbiana (C en biomasa microbiana) se determinó con el método
de fumigación incubación (Jenkinson y Powlson, 1976). Durante la fase de análisis, al menos
10% de las muestras se escogieron al azar para analizarse por duplicado, y de esta manera
asegurar la calidad del análisis.
Análisis químico de las muestras foliares. La muestra molida se acenizó por calcinación en
mufla a 550ºC con ácido nítrico HNO3 (1:1) y recuperación de las cenizas con ácido clorhídrico
HCL (1:1) caliente. La solución obtenida se filtró y se aforó a 100 mL. Con esta solución se
llevaron a cabo las determinaciones químicas del análisis de planta, excepto la determinación
de
Nitrógeno. Las técnicas empleadas fueron: Nitrógeno por la técnica micro-Kjeldahl, el
material analizado fue la muestra seca y molida; Fósforo por el método colorimétrico del
fosfovanadomolibdato; Potasio por fotometría de llama; Calcio, Magnesio, Hierro, Manganeso,
Zinc, Cobre se determinaron por espectrofotometría de absorción atómica, siguiendo las
recomendaciones del equipo (Perkin-Elmer) para el rango de detección de cada elemento; Boro
se determinó por colorimetría por la técnica del carmín.
Análisis biológico (HMA) de las muestras de suelo. Las muestras se procesaron por el
método combinado de tamizado húmedo y extracción en gradiente de sacarosa para la
recuperación de esporas de HMA. Estas fueron seleccionadas y recuperadas bajo microscopio
estereoscópico e identificadas a nivel de género y especie por observación y caracterización
morfométrica en microscopio compuesto, utilizando como claves para ubicación taxonómica las
de Morton y Benny (1990) y Schenk y Perez (1990).
Interpretación de los resultados analíticos del análisis físico y químico de suelos. La
caracterización de la fertilidad de las muestras de suelo se realizó utilizando los criterios de
interpretación señalados por la Norma Oficial Mexicana NOM-021 RECNAT-2000 (SEMARNAT,
2002). Los datos resultantes individuales de cada parámetro determinado fueron ubicados en un
mapa regional, generando con ello una propuesta de regionalización de la fertilidad de los
suelos cultivados con maguey mezcalero en la “región del mezcal” del estado de Oaxaca. En el
estudio de calidad del suelo los datos fueron analizados estadísticamente por análisis de la
varianza y separación de medias para determinar los efectos de la labranza y la edad de las
plantas en los indicadores de calidad del suelo. La información generada de abundancia y
diversidad de hongos de micorriza arbuscular, utilizados como indicadores de calidad del suelo,
se muestran en gráficos comparativos por sistema de labranza y edad del cultivo; asimismo se
realizaron análisis de correlación con los parámetros físicos y químicos para determinar el grado
de asociación entre estas variables e inferir alguna posible influencia de los segundos sobre las
poblaciones fúngicas. Los resultados de concentración de nutrientes en tejido foliar se
presentan como gráficos por localidad y edad de la planta. No existen referencias sobre
concentración de nutrientes en tejidos de maguey mezcalero con los cuales realizar un análisis
comparativo, por lo cual los datos resultantes fueron sometidos a un análisis de agrupamiento,
para de ahí generar una propuesta de índices de concentración media de referencia para cada
uno de los nutrientes analizados. Para realizar los diferentes análisis citados se utilizaron los
programas informáticos SPSS, SAS y BIODIVERSITY.
2. Respuesta de A. angustifolia a la aplicación de fertilizantes de liberación lenta minerales
y orgánicos en condiciones semicontroladas.
Obtención de plántulas. Para obtener las plantas de agave se siguió la metodología reportada
por Arredondo y Espinosa (2005). Las plantas se obtuvieron de una plantación ubicada en la
comunidad de Agua del Espino, Ejutla de Crespo, Oaxaca. Se seleccionaron hijuelos
rizomatosos que presentaron características similares de edad, tamaño y sanidad.
Posteriormente se realizó la poda total de raíz utilizando tijeras de podar y en seguida la
desinfección de los plantas, utilizando una solución de
hipoclorito de sodio al 0.624%. La
desinfección consistió en sumergir totalmente las plantas en
el recipiente que contenía la
solución, permaneciendo en ella por cinco minutos. Las plántulas desinfectadas fueron
colocadas sobre arena húmeda previamente desinfectada por medio del proceso de
solarización (Stapleton et al., 1985) durante un periodo de una semana para formación de callo.
Posteriormente fueron sembradas en arena húmeda por dos semanas para la brotación de
primordios radicales, realizando riegos cada tercer día.
Diseño del experimento. Después de la formación de primordios radicales las plantas fueron
establecidos en campo y distribuidos en 17 tratamientos, resultantes de combinar dos fuentes
de fertilización orgánica: 1) Composta (CM) y 2) Vermicomposta (VC); cuatro fuentes de
fertilizantes de liberación lenta (FLL): 1) Sin fertilización (CON); 2) Turf Builder (TB); 3) Numi
Fer (NF), y 4) Miracle-Gro (MG); y dos momentos de aplicación de los fertilizante 1) única
aplicación (UNI) y 2) repartida en dos aplicaciones (DUE) (Cuadro 1).
Cuadro 1. Tratamientos ensayados en el experimento de respuesta de plantas de A. angustifolia a la aplicación de
fertilizantes de liberación lenta.
No de
Tratamientos
FLL kg de
N/ ha -1
Fertilización
orgánica
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
CON
CON
TB
NF
MG
CON
TB
NF
MG
CON
TB
NF
MG
CON
TB
NF
MG
---CM
CM
CM
CM
CM
CM
CM
CM
VC
VC
VC
VC
VC
VC
VC
VC
Momentos de aplicación
UNI
DUE
FLL Orgánica
FLL
Orgánica (g)
(g)
(g)
(g)
-----400
400
400
400
200
200
200
200
400
400
400
400
200
200
200
200
---160
120
80
--80
60
40
---160
120
80
--80
60
40
------------------200
200
200
200
----------------200
200
200
200
------------------80
60
40
---------------80
60
40
CM= Composta, VC= Vermicomposta, CON= Sin fertilización, TB=Turf Builder, NF= Numi Fer y MG=
Miracle-Gro. FLL= Fertilizantes de Liberación Lenta
El experimento se estableció bajo un diseño trifactorial 2x4x2, más un control absoluto, con
arreglo en bloques completos al azar. La unidad experimental fue una planta y se utilizaron 10
repeticiones por tratamiento.
Las variables en proceso de evaluación son: altura de la planta, número de nuevas hojas
desplegadas, peso seco de hojas, tallo y raíz a la cosecha, contenido de sólidos solubles en la
savia del tallo (ºBx). Con los datos obtenidos de cada variable se realiza el análisis de varianza
y comparación de medias con la prueba de Tukey (p< 0.05), utilizando el programa SAS.
3. Diversidad de hongos formadores de micorriza arbuscular en sistemas de producción de
A. angustifolia.
Sitios de muestreo. En este trabajo se analizaron 12 muestras de suelo colectadas de las
regiones Sierra Sur y Valles Centrales de Oaxaca, las muestras recolectadas fueron
seleccionadas tomando en cuenta solo terrenos de cultivos intensivos de A. angustifolia. Los
sitios muestreados fueron Tlacolula,
Matatlán, San Baltazar
Guelavila en tres diferentes
terrenos de cultivo obteniendo las muestras de suelo de San Baltasar 1, San Baltazar 2 y San
Baltazar 3, San Pedro Quiatoni también en tres diferentes terrenos obteniendo tres suelos de
San Pedro 1, San Pedro 2 y San Pedro 3, Sola de Vega (Barrio Sta. Anita), Miahuatlán, El
Vergel y San Carlos Yautepec. En el cuadro 2 se muestra los tipos de manejo de cada terreno
de cultivo de A. angustifolia y las fechas del muestreo que coinciden en época de invierno.
Cuadro 2. Tipos de manejo en las parcelas cultivadas de Agave angustifolia en Oaxaca
Sitio
de estudio
Tlacolula
Matatlán
San Baltazar 1
San Baltazar 2
San Baltazar 3
San Pedro 1
San Pedro 2
San Pedro 3
Sola de Vega
Miahuatlán
Ejutla
San Carlos Yautepec
Tipo de
labranza
Mecanizado
Mecanizado
Yunta
Yunta
Manual
Manual
Manual
Manual
Mecanizado
Yunta
Mecanizado
Manual
Edad del
cultivo
4
3
5
3
4
4
5
2
4
6
4
4
Procesamiento de las muestras. Se obtuvo un total de 20 submuestras en cada parcela,
las cuales fueron mezcladas y homogeneizadas, reducidas por cuarteo hasta alrededor
de tres Kg por muestra compuesta. Las muestras se llevaron por un proceso de secado
al aire libre en el laboratorio, posteriormente se pesaron 50 g de cada suelo para el
aislamiento de esporas de HMA, mediante la utilización de los métodos de tamizado
húmedo y decantación (Gerdemann y Nicolson, 1963) y de centrifugación en solución
de sacarosa (Walker et al., 1982).
Establecimiento de “plantas trampa”. Debido a que las esporas de hongos que forman
micorriza arbuscular son biotrofos obligados que habitan en el suelo, para poderlos identificar es
necesario propagarlos por medio de plantas trampa que se establecieron utilizando como
sustrato de crecimiento una mezcla de suelo y arena de río en proporción 1:1, esterilizada por
medio de vapor fluente por una hora durante tres días consecutivos, la arena estéril se coloco
en una maceta desinfectada con formaldehído y alcohol. La maceta se lleno hasta tres cuartas
partes de su capacidad total. El inóculo micorrízico se coloco en una capa homogénea de tres
cm aproximadamente. Las macetas se llenaron hasta su capacidad total. Se procedió a la
siembra con semillas desinfectadas, se mantuvo bajo un microinvernadero por tres meses, se
utilizo sorgo como planta trampa ya que para la propagación de esporas de HMA se recomienda
plantas de crecimiento rápido.
Identificación a nivel de género. Se separaron las esporas en buen estado con su hifa de
sostén y se procedió a agrupar por colores y por forma (globosa, elipsoide, subglobosa). En
cuanto a los colores se utilizó como referencia la carta de colores del INVAM, los cuales se
manejan por medio de claves que consisten en los porcentajes presentes de los colores negro,
amarillo, rojo y azul (Anónimo, 2004). Posteriormente se prepararon montajes en laminillas con
las esporas a identificar. El medio de montaje que se utilizó fue alcohol polivinilico-ácido lácticoglicerol (PVLG), ya que es el medio que menos afecta la morfología de las esporas; y PVLG
con reactivo de Melzer en una proporción 1:5 (Walker, 2002). Una vez agrupadas las esporas
por morfotipos bajo el microscopio estereoscópico se realizaron las preparaciones permanentes,
depositando con pinzas de 20 a 25 esporas intactas sobre una gota de PVLG en un extremo del
portaobjetos. En el otro extremo se colocó otro grupo de esporas del mismo morfotipo sobre una
gota de PVLG con reactivo de Melzer. Enseguida se colocaron cuidadosamente los
cubreobjetos, evitando formar burbujas. Estas preparaciones se dejaron secar durante 24-48
horas a temperatura ambiente, en posición horizontal.
Identificación a nivel de especie. Se examinaron bajo microscopio compuesto las
características de las esporas intactas en ambos medios de montaje (color, diámetro, forma,
grosor de la pared, etc.). Cuando las esporas están en el reactivo de Melzer, en algunos casos
se puede observar un cambio de color de rosa pálido a rojo intenso en la pared externa. Para
la identificación de las especies se requiere determinar el tamaño de las esporas y la estructura
de la pared, este último es el principal criterio que se utiliza para la delimitación de las especies.
Para medir las esporas, la o las capas de la pared de la espora (Figura 15) y de la hifa
sustentadora. Actualmente, la descripción
del número y tipos de capas presentes en las
esporas es característica fundamental para la ubicación taxonómica de los HMA. Se utilizó un
ocular micrométrico, en un microscopio óptico el cual fue previamente calibrado. Se midieron de
20-50 esporas para obtener la media estadística.
P
X
E
L
C
M
G
A
U
CAPAS EXTERNAS
Figura 2. Tipos de capas que pueden presentar las esporas de hongos micorrízicos arbusculares. P =
peridial, X = expandible, E = Evanescente, L = laminada, C = cariácea, M = membranosa, G = germinal, A
= amorfa, U = unitaria (Schenck y Perez, 1990).
Mediante la aplicación de una leve presión al cubreobjetos se rompieron las esporas, para
realizar el estudio de la estructura de su pared. Se contaron las capas de la pared de la espora,
tomando en cuenta el tipo de ornamentación. Para la representación de las capas se utilizo un
murografo. También se observaron las características morfológicas de la hifa de sostén,
teniendo en cuenta forma, color, capas y mecanismo de separación del contenido de la espora
de la hifa.
Una vez que se registraron estos datos, se utilizaron las claves de Schenk y Pérez (1990) y del
INVAM (Morton, 2003) para completar la identificación a nivel de género
y
especie. Las
especies identificadas fueron corroboradas con la valiosa ayuda de la experta nacional de
taxonomía de los Hongos Micorrizicos Arbusculares. Dra. Lucia Varela Fragoso.
Análisis estadístico y determinación de índices de diversidad, riqueza y abundancia de
HMA. Se utilizó un análisis de diferenciación mediante el error típico con el programa de
Microsoft Excel, este análisis se aplicó para la determinación de la riqueza y abundancia de
HMA así como la comparación de los índices de diversidad. Para la evaluación de la riqueza de
especies se utilizó la siguiente formula:
Riqueza:
R = Número de especies establecidas en el muestreo
Para la determinación de la abundancia relativa de cada especie de HMA, en los sitios de
muestreo se utilizo la siguiente formula:
(n/N) 100
donde:
n = número de esporas que pertenecen a una especie
N = número total de esporas en el sitio de muestreo
Para la determinación de la diversidad de HMA se utilizó el índice de diversidad de Shannon
Wiener, el cual se obtuvo mediante el software Diversity (Universidad de Oxford, 1995).
4. Determinación de contaminantes en agua de pozos, originados por prácticas agrícolas.
Sitios de muestreo. Se han efectuado muestreos de los pozos de agua que son utilizados
para consumo humano y para riego agrícola en la región de los valles centrales de Oaxaca,
siguiendo el cauce de los ríos que forman los tres valles de la región. Los sitios son Santa Cruz
Xoxocotlán, Nazareno Xoxocotlán, Rancho Sangre de Cristo, Colonia Reforma, San Felipe del
Agua, Santa Rosa Panzacola, Santa Lucia del Camino, San Juan Guelavía, Tanivet, San
Antonino Castillo Velasco, San Pedro Apóstol, Santa Cruz Etla, San Pablo Etla y Nazareno Etla.
Los muestreos se realizaron en tres
periodos: mayo-junio, agosto-septiembre y octubre-
noviembre de 2006, al iniciar, a mediados y al finalizar el ciclo de lluvias en la región.
Recolección de las muestras. Se utilizaron frascos de polietileno de un litro bien lavados y
enjuagados con agua tridestilada; los frascos se llenaron totalmente para evitar la gasificación
de algunos componentes que podrían provocar reacciones químicas y alterar la composición de
las muestras. La profundidad a la que se tomaron las muestras de agua es variada, esto se
debe a las estructuras de las rocas en el subsuelo. En algunos casos no se utilizan
muestreadores, ya que tienen sistema de bombeo. Para este caso se dejó bombear agua
durante un tiempo considerable para evitar las posibles interferencias por acumulamiento de
las sales, oxidación de tuberías etc. Las muestras recolectadas se etiquetaron con información
descriptiva completa: lugar, fecha de muestreo, nombre del
propietario, edad del pozo,
profundidad y se podrá agregar información adicional mediante una forma del colector.
Transporte y análisis de las muestras. Una vez realizados estos procedimientos, las
muestras se transportaron al Laboratorio de Suelos del CIIDIR-Oaxaca, inmediatamente se
refrigeran para ser valorados lo mas pronto posible.
Se determinaron los siguientes parámetros fisicoquímicos: pH (potenciometría), conductividad
eléctrica (conductimetría), concentración de cloruros (método de Volhard), nitratos (método del
sulfato de brucina), nitritos (método de Zambelli), sodio (fotometría de llama) y potasio
(fotometría de llama).
Análisis de resultados. Se analizarán y compararán los resultados de las muestras de agua de
pozo para usos humanos y agrícolas obtenidos en el laboratorio mediante; graficas, análisis de
varianza y comparación de medias.
5. Lixiviación de nutrientes (N y K) de suelos de características contrastantes, por efecto de
la aplicación de fertilizantes minerales y orgánicos de liberación lenta.
Se establecieron tres experimentos similares, utilizando como plantas modelo lechuga, alfalfa y
maguey espadín.
Muestreo y análisis de suelos. Se utilizó suelo de tres comunidades de la región de los Valles
Centrales de Oaxaca en donde se cultiva maguey espadín: Santa Cruz Xoxocotlán, Reyes
Mantecón y San Baltasar Guelavila. Para el muestreo de las parcelas se utilizó a técnica “cinco
de oros” que ya ha sido utilizada en otros trabajos de muestreo de este proyecto. Se colectaron
alrededor de 300 Kg de suelo de cada parcela, se transportaron en sacos y se extendieron a la
sombra sobre polietileno para secarlos. De cada una de las muestras se tomó una submuestra
de alrededor de un Kg, se tamizó por malla de 2 mm y fue utilizada para la caracterización de la
fertilidad de los suelos: pH, CE, textura, contenido de materia orgánica, de fósforo extraíble, de
nitrógeno total. Para el análisis se utilizaron las técnicas oficiales que señala la norma NOM021-RECNAT-2000 (SEMARNAT; 2002).
Diseños experimentales. Se utilizaron los tratamientos de aplicación de fertilizantes utilizados
en el experimento 2 de este proyecto. En total se ensayaron seis tratamientos para cada tipo de
suelo y especie vegetal. Los tratamientos fueron:
Composta (CO)
Vermicomposta (VC)
Sin fertilización (SF)
Turf Builder (TB)
Numi Fer (NF)
Miracle-Gro. (MG
La unidad experimental fue una maceta de polietileno con capacidad para 2500 g de suelo. Se
utilizaron cuatro repeticiones para cada tratamiento. La lechuga y la alfalfa se sembraron
directamente en la maceta, las plantas de maguey espadín provinieron de hijuelos de raíz y se
les dio el mismo manejo descrito en el experimento 2. El crecimiento se realizó en condiciones
controladas, las plantas fueron regadas a capacidad de campo dos veces por semana. La
duración de los experimentos fue de cuatro y seis meses para las diferentes plantas.
Obtención y análisis de lixiviados. A los dos y cuatro meses de establecidos los experimentos
se aplicó un exceso de agua para provocar alrededor de 500 mL de lixiviado. Se colectaron
estos lixiviados, se filtraron y se llevaron a refrigeración (4-6ºC) hasta su análisis. Se analizaron
concentración de nitratos (método del sulfato de brucina), nitritos (método de Zambelli) y potasio
(fotometría de llama). La biomasa fue cosechada y determinados los pesos fresco y seco. Parte
del tejido foliar será analizado para determinar las concentraciones de nitratos, nitritos y potasio.
Análisis de resultados. Los datos colectados se someterán a análisis de la varianza y una
prueba pertinente de separación de medias. Se utilizará el software SPSS o SAS. Se realizarán
análisis de correlación entre las magnitudes de la lixiviación y las características de los suelos y
la producción de biomasa por las plantas.
RESULTADOS
1. Diagnóstico de la fertilidad del suelo y el estado nutrimental de plantas de maguey
mezcalero en la “región del mezcal” del estado de Oaxaca
Los cambios observados en los parámetros indicadores de la calidad de los suelos en las
parcelas de maguey estuvieron fuertemente asociados al tipo de labranza utilizado. La mayoría
de las propiedades del suelo tuvieron patrones de respuesta similares en las muestras de las
dos profundidades analizadas, variando solo por el tipo de labranza.
Propiedades físicas de los suelos
El valor de la densidad aparente (DB) del suelo bajo MT fue significativamente mayor,
B
comparado con ADP y PT (P < 0.0001, Figura 4). Los suelos bajo MT registraron el mayor valor
de resistencia a la penetración (CPR), seguidos por PT y ADP (P < 0.0001). Hussain et al.
(1999b), Wander y Bollero (1999) y Özpinar y Çay (2005) observaron que los suelos manejados
con labranza cero (NT) siempre presentaron una mayor y significativamente diferente CPR y DB
B
que los suelos bajo labranza convencional (CT). Las profundidades del suelo a las que se
presentó un valor CPR < 3 MPa fueron 7.80 ± 0.88 cm para MT, 19.6 ± 1.54 cm para PT y 22.53
± 0.80 cm para ADP. Por debajo de estas profundidades el penetrómetro alcanzó el valor
máximo de su capacidad de registro (50 Kg), debido a la presencia de material parental o capas
de suelo compactado (como ocurrió bajo MT).
Los suelos bajo MT registraron una más alta proporción de agregados hidroestables (WSA)
de tamaño 0.7-1.0 mm que los suelos bajo ADP y PT (P < 0.0001, Figura 4). La proporción de
agregados de tamaño 0.5 mm (2.0 ± 0.10 %) no varió significativamente entre los tres sistemas
de labranza. Özpinar y Çay (2005) reportaron que el porcentaje de agregados entre 1.0-2.0 mm
y entre 0.5-1.0 mm fueron significativamente mayores en suelos MT que en suelos bajo CT.
Probablemente los resultados registrados se debieron a que en los suelos bajo PT y ADP se
obtuvieron valores de contenido de carbono orgánico del suelo (SOC) menores que los valores
registrados bajo MT. Los valores de contenido de agregados hidroestables estuvieron altamente
correlacionados con el del SOC (r = 0.414, P < 0.0001). Los contenidos de las tres fracciones de
WSA no resultaron significativamente diferentes entre las dos profundidades estudiadas.
Figura 3. Agregados hidroestables de tres tamaños de partícula (> 0.5 mm, > 0.7 mm, > 1 mm) y
densidad aparente (DB) de suelos cultivados con maguey mezcalero en el distrito de Tlacolula, Oaxaca.
B
Profundidad
0-20 cm
21-40 cm
PT
ADP
Clases
de
MT
M
l Till
Edad
Propiedades químicas de los suelos.
El valor de pH y los contenidos de SOC, Fósforo extraíble Olsen (POlsen) y Ca2+, K+, Mg2+ y
Na+ intercambiables fueron afectados por el tipo de labranza. Los resultados para estos
parámetros fueron similares en las dos profundidades del suelo analizadas.
Los suelos bajo MT registraron el contenido más alto de SOC (P < 0.0001, Figura 5). Chan y
Heenan (2005) han señalado que la labranza es uno de los dos mayores procesos
Figura 4. Contenidos de carbono orgánico (SOC), carbono de la biomasa microbiana (SMBC), fósforo
extraíble Olsen (POlsen), nitrógeno inorgánico total (TIN) y pH de suelos cultivados con maguey mezcalero
en el distrito de Tlacolula, Oaxaca.
Soil depth
0-20 cm
21-40 cm
ADP
PT
Clases
MT
Man al Tillage
de
Edad
responsables de la reducción del contenido de SOC (el otro es la quema de los residuos
vegetales). Este valor mayor de contenido de SOC bajo MT en comparación con ADP y PT
probablemente es resultado de una baja tasa oxidativa de la materia orgánica (SOM) debida
Figura 5. Contenidos de calcio (Ca+2), magnesio (Mg+2), potasio (K+) y sodio (Na+) intercambiables de
suelos cultivados con maguey mezcalero en el distrito de Tlacolula, Oaxaca.
Profundidad
0-20 cm
21-40 cm
PT
ADP
Clases
de
MT
M
l Till
Edad
a la labranza reducida que implica menor perturbación del suelo y una tasa menor de
descomposición de los residuos orgánicos depositados en el suelo (Reicosky et al., 1995).
Dalal (1989) ha señalado que la MT reduce la erosión del suelo y la escorrentía y,
consecuentemente, el contenido de SOC en estas condiciones de manejo es superior que en
suelos bajo CT. Rahman et al. (2003) y Özpinar y Çay (2005) también encontraron un mayor
contenido de SOC bajo MT en comparación con suelos bajo CT.
Se registró un valor de pH del suelo menor bajo MT que el registrado bajo PT y ADP (P <
0.0001, Figura 5). En varios trabajos se han reportado resultados que no coinciden con los
reportados aquí. Hussain et al. (1999a), Wander y Bollero (1999) y Liebig et al. (2004) no
encontraron efectos significativos del tipo de labranza sobre el pH del suelo.
El contenido de Ca2+ intercambiable estuvo positiva y significativamente correlacionado con el
pH del suelo (r = 0.764, P < 0.0001). Bajo MT los suelos registraron un contenido de Ca2+
intercambiable más bajo (P < 0.0001, Figura 6). Contrario a estos resultados, Hussain et al.
(1999b) encontraron valores de Ca2+ intercambiable mayores en suelos bajo NT que en aquellos
que fueron trabajados con labranza mecánica.
Los suelos bajo PT registraron valores más altos de POlsen y K+, Mg2+ y Na+ intercambiables
que los suelos bajo ADP y MT (P < 0.0001, Fig. 5). Hussain et al. (1999a) reportaron un
comportamiento similar en los contenidos de P en suelos bajo CT comparados con los de
suelos bajo NT.
El N asimilable (20.54 ± 0.93 mg Kg-1) no resultó afectado por la labranza. En contraste,
Wander y Bollero (1999) encontraron que este parámetro fue significativamente modificado por
NT y CT en Mollisoles y Alfisoles de Illinois. Los contenidos de N asimilable en los suelos bajo
MT no fueron significativamente superiores a los de los suelos bajo ADP y PT (Figura 5).
Los contenidos de SOC, POlsen, N asimilable y Na+ intercambiable fueron significativamente
mayores a la profundidad 0-20 cm que a la de 21-40 cm, dentro de cada sitio (P < 0.0001), en
los tres tipos de labranza. Wander y Bollero (1999) también reportaron valores mayores de
estos parámetros en la capa de suelo superficial. Los contenidos de Ca2+, K+ y Mg2+
intercambiables y el pH no fueron significativamente diferentes entre sí en ambas profundidades
del suelo.
Propiedades biológicas de los suelos.
El carbono de la biomasa microbiana del suelo (SMBC) cambió significativamente entre tipos
de labranza, siguiendo el siguiente orden: MT > ADP > PT (P < 0.0001, Figura 5). Carter (1992)
reportó resultados similares, encontrando un contenido de SMBC mayor bajo cero labranza en
comparación con labores de barbecho. Aslam et al. (1999), Salinas-García et al. (2002) y Balota
et al. (2004) también reportaron mayores contenidos de SMBC bajo el sistema NT que en el
sistema CT. El SMBC respondió con rapidez a los cambios en el tipo de labranza utilizado. Para
los tres tipos de labranza estudiados, la acumulación de SMBC ocurrió en la capa superficial 020 cm del suelo. Wander y Bollero (1999) también encontraron que la acumulación de SMBC
fue mayor en la capa superficial del suelo que en la subsuperficial.
Cambios en las propiedades de los suelos asociados a la edad del cultivo de maguey
mezcalero.
La mayoría de las propiedades de los suelos (pH, SOC, POlsen, N disponible, K+, Ca2+, Na+ y
Mg2+ intercambiables, SMBC y CPR) resultaron modificadas por la edad de los cultivos de
maguey (P < 0.004). Solamente cuatro de los 14 parámetros del suelo analizados no cambiaron
significativamente con la edad de las plantaciones (P > 0.13): DB y los contenidos de las tres
B
fracciones de WSA analizadas.
No hubo diferencia en los valores de pH del suelo entre los cultivos de clase de edad 1 (7.96
± 0.11) y clase 2 (7.96 ± 0.06), pero se registró un valor mayor en la clase 3 (8.23 ± 0.09). Los
valores de los parámetros SOC (1.56 ± 0.14 % en la clase 1; 1.48 ± 0.15 % en la clase 2 y 1.65
± 0.12 % en la clase 3), POlsen (2.12 ± 0.19 mg kg-1 en la clase 1; 2.66 ± 0.33 mg kg-1 en la clase
2 y 3.33 ± 0.51 mg kg-1 en la clase 3) y Ca2+ intercambiable (31.87 ± 1.76 cmolc kg-1 en la clase
1; 33.22 ± 1.40 cmolc kg-1 en la clase 2 y 39.17 ± 1.96 cmolc kg-1 en la clase 3) incrementaron
con la edad del cultivo. En contraste, el contenido de N disponible disminuyó (23.24 ± 0.97 mg
kg-1 en la clase 1; 18.50 ± 1.20 mg kg-1 en la clase 2 y 19.78 ± 1.02 mg kg-1 en la clase 3). Los
contenidos de los cationes intercambiables, K+ (12.74 ± 1.35 cmolc kg-1 en la clase 1; 20.26 ±
3.34 cmolc kg-1 en la clase 2 y 19.62 ± 4.26 cmolc kg-1 en la clase 3), Na+ (1.56 ± 0.199 cmolc kg1
en la clase 1; 1.84 ± 0.22 cmolc kg-1 en la clase 2 y 1.52 ± 0.20 cmolc kg-1 en la clase 3) y Mg2+
(1.22 ± 0.10 cmolc kg-1 en la clase 1; 1.75 ± 0.22 cmolc kg-1 en la clase 2 y 1.52 ± 0.20 cmolc kg-1
en la clase 3) aumentaron de la clase 1 a la clase 2, pero disminuyeron ligeramente en la clase
3.
El contenido de SMBC disminuyó con la edad de los cultivos (650.31 ± 37.78 µg-1 en la clase
1; 630.20 ± 46.68 µg-1 en la clase 2 y 628.67 ± 45.41 µg-1 en la clase 3). El valor de la CPR del
suelo aumentó al hacerlo la edad de los cultivos (1.44 ± 0.08 MPa en la clase 1; 1.42 ± 0.07
MPa en la clase 2 y 1.82 ± 0.11 MPa en la clase 3). No hay referencias bibliográficas acerca de
la influencia de la edad del cultivo sobre las propiedades del suelo, para el maguey mezcalero.
Los datos aquí presentados constituyen un aporte original al conocimiento del comportamiento
de las variables físicas, químicas y biológicas indicadoras de la calidad de los suelos bajo cultivo
de A. angustifolia.
En promedio, los suelos de la región son pobres en fósforo asimilable, y pobres a medios en
materia orgánica y nitrógeno total. Estos factores llegan a ser limitantes para la producción, de
ahí que sea necesaria la restitución de los nutrientes que las cosechas extraen, a través de la
práctica del abonado y la fertilización.
Tabla 3. Propiedades químicas indicadoras del nivel de fertilidad (media ± error estándar), a 0-40
cm de profundidad, de suelos cultivados con Agave angustifolia Haw. en seis distritos
pertenecientes a la “región del mezcal” del estado de Oaxaca, México.
Distrito
Labranza
n
pH
MO
CO
NT
---------------------(%)--------------------EJ
MI
MI
OC
OC
SCY
SV
SV
SV
ZI
Mecánica
Mecánica
Yunta
Mecánica
Yunta
Manual
Mecánica
Manual
Yunta
Mecánica
21
6
8
4
7
12
2
2
8
14
7.60±0.26
6.76±0.54
7.72±0.09
6.62±0.30
8.52±0.04
6.72±0.16
8.32±0.00
8.33±0.04
8.27±0.04
6.82±0.15
1.41±0.08
1.87±0.20
1.36±0.19
1.28±0.05
3.01±0.28
3.06±0.28
2.02±0.16
2.01±0.05
1.95±0.40
1.53±0.27
0.82±0.04
1.08±0.11
0.79±0.11
0.74±0.03
1.74±0.16
1.77±0.16
1.17±0.09
1.16±0.03
1.13±0.23
0.89±0.15
0.024±0.004
0.025±0.005
0.015±0.003
0.05±0.004
0.07±0.013
0.01±0.000
0.005±0.005
0.01±0.000
0.02±0.005
0.01±0.001
P Olsen
mgkg-1
3.85±0.35
4.75±0.28
4.37±0.46
3.62±0.23
5.28±1.29
2.10±0.21
3.25±0.25
3.75±0.25
5.50±1.75
3.64±0.38
Mgi
-----cmolcKg-1---9.58±1.48
7.20±1.75
6.60±1.17
8.40±2.07
13.02±2.15
11.60±1.58
15.60±3.60
13.20±1.20
12.60±1.80
6.00±1.05
n= número de muestras; MO= materia orgánica; CO= carbono orgánico; NT= nitrógeno total;
P Olsen= fósforo Olsen; Mgi, Cai= Magnesio y Calcio intercambiables.
La mayor parte de los suelos son de textura ligera, lo que conlleva una muy baja capacidad de
retención de humedad y dificultades para la agregación de las partículas individuales, que se
traduce en una mala estructura que dificulta el crecimiento vegetal. Todo ello puede verse
reflejado en los resultados mostrados en la tabla 4.
2
1
1
2
5
2
3
4
4
1
Tabla 4. Propiedades físicas indicadoras del nivel de fertilidad (media ± error estándar), a 0-40 cm
de profundidad, de suelos cultivados con Agave angustifolia Haw. en seis distritos pertenecientes
a la “región del mezcal” del estado de Oaxaca, México.
Distrito
Labranza
n
Agregados
> 1.0 mm
Agregados
>0.7 mm
Agregados
> 0.5 mm
Humedad
Arena
Limo
89.51±0.96
91.54±1.58
93.91±1.04
97.50±1.17
96.60±0.71
93.43±2.62
95.04±1.00
91.04±1.00
89.54±1.29
94.61±0.32
10.16±0.94
8.06±1.67
5.87±1.07
2.41±1.14
2.14±0.72
3.30±0.39
4.81±1.00
8.81±1.00
9.74±1.16
4.95±0.37
A
%
EJ
MI
MI
OC
OC
SCY
SV
SV
SV
ZI
Mecánica
Mecánica
Yunta
Mecánica
Yunta
Manual
Mecánica
Manual
Yunta
Mecánica
21
6
8
4
7
12
2
2
8
14
1.59±0.20
0.71±0.15
0.70±0.11
2.82±0.54
1.70±0.56
6.48±0.64
8.90±1.98
1.50±0.22
4.24±1.19
3.54±1.02
0.75±0.17
0.72±0.16
0.64±0.15
1.78±0.18
0.58±0.17
2.94±0.36
3.97±0.68
0.76±0.15
1.18±0.30
1.60±0.20
1.43±0.20
1.28±0.62
1.09±0.27
1.36±0.50
1.54±0.33
3.41±0.40
3.43±0.38
0.93±0.00
1.08±0.20
1.20±0.27
2.04±0.22
2.96±0.63
2.93±0.40
3.46±0.21
5.01±0.24
4.55±0.29
4.40±0.15
3.94±0.16
3.61±0.40
1.80±0.20
n= número de muestras
rango de potasio
rango de fosforo
25
20
frecuencia
10
5
0
14.17 –
11.60
11.59 –
8.99
8.98 –
6.38
6.37 –
3.77
15
10
5
0
3.76 - 1.16
-5
214.17 189.22
rango de concentracion
189.21- 163.95– 138.69–
163.96
138.70
113.44
rango de concentracion
rango de hierro
frec u e n c ia
15
10
5
0
153.80 –
127.35
127.34 –
100.90
100.89 –
74.45
113.43 –
88.17
rango de calcio
20
frecuencia
frecuencia
20
15
74.44 –
48.00
-5
rango de concentracion
48.01 - 21.57
20
18
16
14
12
10
8
6
4
2
0
390.0 332.19
332.18 – 274.25 – 216.32 –
274.26
216.33
158.4
rango de concentracion
158.3 100.38
0.3
0.3
0.2
0.0
1.2
0.7
0.1
0.1
0.7
0.4
rango de boro
25
frecuencia
20
15
10
5
0
392.16 329.93
329.92 267.79 205.81 267.80
143.69
rango de205.82
concentracion
143.68 81.56
Figura 6. Frecuencias en que se registraron los resultados de concentración de nutrientes en las
muestras de tejido foliar de A. angustifolia cultivado en la “región del mezcal del estado de Oaxaca.
2. Respuesta de A. angustifolia a la aplicación de fertilizantes de liberación lenta minerales
y orgánicos en condiciones semicontroladas.
Altura de la planta. De acuerdo al análisis de varianza realizado para esta variable, a la fecha
de la primera toma de datos no se encontraron aun efectos significativos entre tratamientos
(α=0.05).
En la Figura 7 se observa que el grupo de platas fertilizadas con composta registraron mayores
incrementos de altura de la planta comparadas con las plantas que fueron fertilizadas con
vermicomposta, aunque de manera no significativa (Tukey α=0.05).
El incremento de la altura de las plantas de agave respecto a la combinación de fertilizantes de
liberación lenta y abonos orgánicos, se observa que las plantas que fueron fertilizadas con MG
presentaron mayor incremento tanto para el grupo de plantas con composta y vermicomposta,
aunque de manera no significativa respecto a los demás tratamientos (Tukey α=0.05).
16
14
Altura (cm)
12
10
8
6
4
2
NF
Composta (g)
200
SF
400
Testigo
200
400
0
Fertilizantes de
Liberación
Lenta
Vermicomposta (g)
SF= Sin fertilización, TB=Turf Builde, NF= Numi Fer y M-G= Miracle-Gro.
Figura 7. Incremento de altura en plantas de Agave angustifolia en respuesta a la fertilización combinada
de abonos orgánicos y fertilizantes de liberación lenta.
La probable explicación a que aun no existan diferencias significativas entre tratamientos a la
respuesta de los abonos orgánicos y fertilizantes de liberación lenta por las plantas de agave,
quizá se deba al tipo de cultivo, ya que como bien se sabe su ciclo de vida es de siete a ocho
años, por lo tanto para obtener una mejor respuesta de los tratamientos se necesita esperar un
poco más para una mejor evaluación.
En la tabla 5 se observa que las plantas tratadas con CO400MG obtuvieron el mayor
incremento de longitud (14.063 cm) aunque de manera no significativa (α=0.05).
Número de hojas. El análisis de varianza mostró que al menos uno de los tratamientos es
diferente respecto a la formación de hojas en plantas de A. angustifolia.
El grupo de plantas fertilizadas con vermicomposta mostraron que a menor cantidad de abono
menor incremento en el despliegue de hojas. Para el caso de las plantas fertilizadas con
composta muestra un incremento similar en las dos dosis de fertilización (Figura 7).
Respecto a la combinación de la fertilizacion orgánica y los fertilizantes de liberación lenta, se
observa en la figura 7 que las plantas que recibieron el tratamiento VC400NF presentó el mayor
incremento en el número de hojas (10.625).
Tabla 5. Resultados de la comparación de medias para las variables altura de planta y número de hojas
en A. angustifolia
Trat.
Altura de la planta (cm)
Número de
hojas
1
12.563 a
9.625 ab
2
11.438 a
9.375 ab
3
13.688 a
10.25 ab
4
10.050 a
8.875 ab
5
14.063 a
9.75 ab
6
11.0 a
7.875 b
7
11.813 a
10.125 ab
8
13.125 a
9.375 ab
9
12.250 a
10.125 ab
10
8.063 a
9.00 ab
11
12.563 a
9.75 ab
12
12.888 a
10.625 a
13
10.063 a
9.75 ab
14
11.138 a
9.00 ab
15
11.125 a
9.125 ab
16
12.088 a
8.875 ab
17
13.375 a
8.25 ab
Valores con la misma letra son significativamente iguales (Tukey α=0.05).
12
No. de Hojas
10
8
6
4
2
M- G
NF
TB
Fertilizantes de
Liberación
Lenta
200
SF
400
Testigo
Compost
a (g)
200
400
0
Vermicomposta
SF= Sin fertilización, TB=Turf Builde, NF= Numi Fer y M-G= Miracle-Gro.
Figura 7. Incremento del número de hojas en plantas de A. angustifolia en respuesta a la fertilización
combinada con abonos orgánicos y fertilizantes de liberación lenta.
3. Diversidad de hongos formadores de micorriza arbuscular en sistemas de producción de
A. angustifolia.
Especies de hongos micorrizógenos arbusculares identificadas
En la tabla 6 se indican las especies encontradas, así como su ubicación taxonómica. Se
identificaron 19 especies que corresponden a siete géneros reportados, seis en el orden
Glomales y uno en el orden Diversisporales.
En la mayor parte de los suelos se registró una mezcla de especies de hongos MA asociados a
las raíces de las plantas. Las esporas en estos suelos se presentan en diferentes etapas de
madurez, parasitadas o aún muertas. Previamente el establecimiento de cultivos monoespóricos
a partir de inóculo esporal, es conveniente propagar en maceta las esporas presentes en suelos
de campo.
Tabla 6. Listado de taxa de HMA encontrados en agrosistemas de A. angustifolia.
ORDEN
GLOMALES
SUBORDEN GLOMINEAE
FAMILIA
ESPECIES
DIVERSISPORALES
GLOMACEAE
Glomus aggregatum
ACAULOSPORACEAE GIGASPORACEAE
Acaulospora
Scutellospora
Glomus clarum
Glomus geosporum
Glomus intraradices
Glomus macrocarpum
Glomus mosseae
Glomus tortuosum
Sclerocystis
pakistanica
Sclerocystis rubiformis
sclerocystis sinuosum
Sclerocystis
liquidambaris
scrobiculata
Acaulospora spinosa
Entrophospora
infrecuens
DIVERSISPORACEAE
Diversispora etunicatum
verrucosa
Gigaspora albida
Gigaspora decipiens
Gigaspora
ramisporophora
Existen diferentes estrategias para cultivar las especies autóctonas. En este estudio, aun
cuando se logró incrementar el número total de esporas de los suelos muestreados, no en todas
las especies se logró la misma tasa de multiplicación del número de esporas. Esto coincide con
lo señalado por Morton y Benny (1990), quien observó que algunas especies presentes en los
suelos pueden disminuir su número, o incluso desaparecer, cuando se les intenta multiplicar en
macetas de propagación, debido a factores ambientales desconocidos o a las condiciones del
invernadero. Otras especies raras o aparentemente inexistentes pueden, en cambio,
incrementar su número.
Propagación y obtención de cultivos monoesporicos. Se establecieron 19 cultivos
monoespecificos (plantas trampa), uno por cada especie identificada, lográndose solamente el
incremento del número de esporas de una especie, Acaulospora scrobiculata, las cuales se
obtuvieron después de ocho meses de cultivo.
Gavito (1991) reportó que algunas especies de estos hongos esporulan abundantemente a las
ocho semanas. El poco éxito y el tiempo requerido para la obtención de los cultivos
monoespecificos pudo deberse a que se utilizo un sustrato que no reúne las condiciones físicas,
químicas y biológicas del suelo original. Por otro lado, aun cuando se ha reportado que estos
hongos son inespecíficos y pueden asociarse con un gran número de plantas, también se
considera que las plantas trampa utilizadas pudieron no ser las mas adecuadas.
Identificación de especies de hongos micorrizicos arbusculares. Se encontraron
representantes de todas las familias del orden Glomales, identificándose especies de los seis
géneros conocidos de HMA: Glomus, Acaulospora, Sclerocystis, Scutellospora, Gigaspora y
Diversispora, de los cuales Glomus y Acaulospora fueron los mas abundantes. Se presentaron
con mayor frecuencia y con mayor número de especies. Los géneros Scutellospora, Gigaspora
y Diversispora están poco representados y solamente se encontró una especie de cada uno de
ellos (Tabla 6).
Es importante señalar que en algunos sitios existen varias especies que no fue posible
identificar, debido a que se encontraron una o dos veces, pero en forma extremadamente
escasa y parasitada, por lo que no fueron consideradas en el listado de especies de HMA.
Diversidad de hongos micorrízicos arbusculares en los sistemas agrícolas magueyeros.
Con relación a la abundancia de HMA, esta suele evaluarse a través del número de esporas
presentes. El sitio de San Pedro 2 presentó mayor abundancia con respecto a los sitios de San
Baltazar 1, San Baltazar 2, San Baltazar 3, Mazatlán, San Pedro 3 y Ejutla que mostraron
similitud en cuanto a menor abundancia de esporas de HMA, mientras que Tlacolula y San
Carlos Yautepec, mostraron similitud de abundancia de esporas pero en menor proporción que
San Pedro 3 (figura 8). La mayoría de los sitios muestreados presentaron bajo numero de
esporas de HMA y esto puede deberse a que son terrenos que están sujetos a los fenómenos
erosivos, dado que son terrenos con pendientes pronunciadas (Barea y col. 1998), inclusive los
sitios Matatlán y Ejutla, que son terrenos planos, presentaron pobreza en cuanto a numero de
esporas de HMA, ya que son terrenos de cultivos intensivos en los cuales utilizan algunos
agroquímicos para plagas o bien para la incorporación de nutrimentos en los suelos para
cultivos de temporal intercalados en los cultivos de maguey. En el sistema de labranza
mecanizado la abundancia de esporas de HMA el sitio de Tlacolula presentó mayor abundancia
de esporas de HMA, el cual es de terreno plano que es menos expuesto a las inclemencias del
clima a pesar del tipo de manejo del terreno que es considerado más agresivo debido que
presenta mayor remoción del suelo y por lo tanto mayor desestabilización de la microbiota
(Lara, 2003), en comparación con Matatlán y Sola de Vega que son terrenos con pendientes
mas pronunciadas que presentaron menor abundancia de esporas, esto es debido al la
perturbación del suelo y por consiguiente a la perdida de microbiota. En el sistema de labranza
a mano el sitio San Pedro 2 presentó mayor abundancia a pesar de ser un sitio con mayor
pendiente que los demás sitios de muestreo, pero es un sitio con muy poco manejo en cuanto a
limpieza del cultivo y esto puede repercutir a conservar parte de la microbiota del suelo. Los
sitios San Baltazar 3, San Pedro 1, San Pedro 3 presentaron menor abundancia de esporas,
esto puede deberse a que son terrenos que además de poseer una pendiente pronunciada son
terrenos manipulados con mayor frecuencia. En cuanto al sistema de labranza con yunta San
Baltazar 1 registró mayor abundancia de esporas con respecto a San Baltazar 2 y Miahuatlán,
los sitios de estudio son muy diferentes en cuanto tipo de manejo y sistema de labranza es por
ello que presentaron diferencia (Figura 9).
80
60
40
20
s
Ya
ut
ep
ec
Ej
ut
la
ar
lo
C
Sitios de muestreo
Sa
n
3
2
Sa
n
Pe
dr
o
Pe
dr
o
at
at
la
n
Sa
n
Sa
n
M
Tl
ac
o
-20
Ba
l ta
za
r1
Sa
n
Ba
l ta
za
r2
Sa
n
Ba
l ta
za
r3
0
lu
la
Abundancia de HMA en 50gr.de suelo
100
Figura 8. Abundancia de hongos formadores de micorriza arbuscular en los sitios de muestreo.
Para la riqueza de especies, los sitios Tlacolula, San Baltazar 1 y Matatlán presentaron mayor
riqueza que los demás sitios, los cuales presentaron similitud entre ellos, como se puede
apreciar en la figura 10. La baja riqueza de especies de HMA se registró en los sitios San
Baltazar 2, San Baltazar 3, San Pedro 2, San Pedro 3, Ejutla y San Carlos Yautepec. Estos
sitios corresponden a agrosistemas altamente erosionados, ya que Ejutla posee un terreno con
manejo mecánico y manejan algunos agroquímicos para el control de plagas, es un terreno
plano pero de cultivo intensivo, lo cual implica el desgaste del suelo y pérdida de la microbiota
natural. El resto de los sitios son terrenos que presentan pendientes pronunciadas y como se
sabe, los terrenos con pendientes son más expuestos a la erosión (Barea y col., 1998).
Figura 9. Abundancia de esporas de HMA por sitios de muestreo con diferentes sistemas de labranza;
labranza por manejo mecanizado; MTL (Tlacolula), M MA (Matatlán), M SV (Sola de Vega), labranza a
mano; MN SB3 (San Baltazar 3), MN SP1 (San Pedro 1), MN SP2 (San Pedro 2), MN SP3 (San Pedro 3),
MN SCY (San Carlos Yautepec), labranza por yunta; Y SB1 (San Baltazar 1), Y SB2 (San Baltazar 2), Y
MI (Miahuatlán).
El índice de diversidad de Shannon Wiener determina la riqueza de especies en un área
determinada con respecto a otras, toma en cuenta dos aspectos de la diversidad, la riqueza de
las especies y la uniformidad de la distribución del número de individuos de cada especie
(Tracy, 2000). La determinación de este índice mostró que en los sitios de estudio Tlacolula y
Matatlán presentaron similitud de diversidad, pero son diferentes a San Baltazar 1, el cual es el
sitio que presento el mayor valor del índice de diversidad (1.696). Los demás sitios de estudio
presentaron bajo índice de diversidad de HMA con respecto a los sitios mencionados
anteriormente (figura 11).
8
R iqueza de especies de H M A
7
6
5
4
3
2
1
0
Tlacolula
San
San
San
Baltazar 1 Baltazar 2 Baltazar 3
Matatlan San Pedro San Pedro
2
3
Ejutla
Sitios de muestreo
San
Carlos
Yautepec
Figura 10. Riqueza de hongos micorrícicos arbusculares en los sitios muestreados
2
1.5
1
0.5
s
lo
ar
.C
Sn
n
la
Ej
ut
at
la
hu
M
de
So
la
ia
Ve
ga
3
ro
2
ed
.P
ed
Sn
Sn
.P
ed
ro
ro
1
r3
.P
za
Sn
ta
al
Sn
.B
al
.B
Sn
Sn
.B
al
ta
ta
za
za
r1
lan
at
at
M
ol
Tl
ac
-0.5
r2
0
u la
In d ic e d e d iv e rs id a d d e H M A
2.5
Sitios de muestreo
Figura 11. Índice de diversidad de Shannon Wiener en los sitios de muestreo.
Se han realizado muy pocos estudios sobre la MA asociada a especies de Agave con los cuales
poder realizar un análisis comparativo de los resultados del presente trabajo. Armenta (2001)
reportó, para A. angustifolia creciendo de manera silvestre en Sonora, solo dos géneros de
HMA, los cuales fueron Acaulospora y Glomus, sin llegar a la identificación a nivel de especie.
El presente trabajo constituye, pues, el mayor estudio que hasta el momento se ha realizado de
abundancia y diversidad de especies de HMA asociadas a una especie de Agave cultivada, con
19 especies identificadas, se han realizado otros estudios de identificación de HMA en el estado
de Oaxaca pero enfocado a cultivos de tomate, chile y maíz, en este estudio se identificaron
ocho especies del género Glomus solamente (López – Guerra, 2003). Los sitios de estudio son
en su mayoría agrosistemas altamente perturbados debido al manejo constante de los terrenos
de cultivo, además de poseer pendientes pronunciadas que son mas expuestas a la erosión, por
esta problemática
es importante seguir realizando estudios en agrosistemas, evaluando la
diversidad de microorganismos, particularmente en la identificación de hongos micorrizicos
arbusculares en áreas perturbadas, para así poder trabajar con especies sabiendo su identidad
y seleccionar las especies que toleren el estrés en el cual están creciendo las plantas para
posteriormente elegir a los micosimbiontes que contribuyan al mejoramiento de los suelos y, por
consiguiente, a la recuperación de áreas perturbadas tanto en agrosistemas naturales como en
sistemas agrícolas. La identificación de las 19 especies es una información esencial para el
seguimiento de la selección del micosimbionte adecuado para el cultivo del Agave angustifolia
Haw.
4. Determinación de contaminantes en agua de pozos, originados por prácticas agrícolas.
Se realizaron los tres muestreos programados y, hasta el momento, se tienen solo los datos de
los resultados analíticos parciales de dos de ellos. Se continuará trabajando con este
experimento, previsto para finalizar totalmente en el mes de abril de 2007. No obstante, a partir
de la revisión de los datos puede observarse que la contaminación de los cuerpos de agua
Tabla 7. Resultados del primer y segundo muestreo de agua de pozos destinados a consumo
humano y riego agrícola en la región de los Valles Centrales de Oaxca.
Lugar de
muestreo
San J.guelavia
Cond.E.
pH
Nitritos
ppm
0.01934
Nitratos
ppm
0.14998
sodio
potasio
9.19
Cloruros
ppm
1128
3655
-
-
Rancho S.C
1113
8.26
49.7
0.32158
-0.0828
-
-
Colonia Reforma
925
8.21
85.2
0.03777
-0.1675
-
-
Santa Rosa P.
656
8.25
35.5
0.03040
-0.1701
-
-
San Antonino
.C.V
Tanivet
849
7.88
--
0.03040
1.1288
-
-
1131
9.18
--
0.01934
0.3404
-
-
ITAO
582
8.01
71
0.03409
-0.1145
-
-
San Felipe .A
1001
8.31
241.4
0.04514
-0.0457
-
-
San
Pedro
.A.casa
San Pedro
.A.Zona riego
CIIDIR
845
7.63
28.4
----------
0.1949
-
-
540
8.01
--
0.02303
0.1288
-
-
873
8.43
156.2
0.03777
-0.1727
-
-
Santa L.Camino.
856
8.10
80.94
0.03409
0.8749
-
-
Santa.Cruz
.E.
San
Pablo.E.campo
Nazareno Etla.
776
8.62
113.6
0.07094
0.9145
927
8.14
56.8
0.02303
-0.1913
-
-
720
7.83
28.4
0.13729
-0.1304
-
-
Paraje L.
T.
San
Pablo.E.Llave.
743
8.01
--
0.03040
-0.0140
-
-
247
9.59
--
0.08200
-0.1860
-
-
Resultados del segundo muestreo.
Lugar de muestreo
Cond.E.
pH
San J.guelavia
3569
7.06
Cloruros
ppm
937.2
Nitritos
ppm
0.0230
Nitratos
ppm
sodio
potasio
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-0.1992
Rancho S.C
1303
7.61
198.8
1.9396
-0.1304
Colonia Reforma
766
8.24
28.4
0.0119
-0.1939
Santa Rosa P.
838
7.14
14.2
0.0304
-0.1754
San A.C.V
908
7.05
---
0.0119
Tanivet
1479
7.36
---
-0.0101
ITAO
591
7.35
---
-0.0322
0.8934
-0.0061
0.2134
San F.A
993
7.09
85.2
-0.0322
-0.1913
San P.A.casa
548
7.27
---
-0.0285
-0.1727
San P.A.pozo
933
7.16
---
-0.0138
0.1658
CIIDIR
1031
7.13
---
0.0046
-0.1542
Santa L.C.
Santa.C.E.
San P.E.pozo
Nazareno E.
Paraje L.
San P.E.Llave.
1069
-
7.15
Falta de
hacer
-
-
-
-
Falta de
hacer
-
-0.0166
---
-
-
-
-
-
--
-
-
-
-
-
---
-
-
subterránea en la región no está ocurriendo de manera grave, dado que solamente una muestra
en una sola fecha superó el límite máximo permisible de nitratos. Queda aun por analizar los
contenidos de sodio y potasio, que pueden ser indicadores de peligro potencial de utilizar esta
agua para riego agrícola, si los contenidos de esos elementos es elevado, lo que implicaría
riesgo de salinización del suelo.
5. Lixiviación de nutrientes (N y K) de suelos de características contrastantes, por efecto de
la aplicación de fertilizantes minerales y orgánicos de liberación lenta.
Tabla 8. Valores analíticos registrados de tres suelos a los que se aplicaron fertilizantes minerales y
orgánicos de liberación lenta para determinar la magnitud de la lixiviación de nutrientes vegetales.
SUELOS
Determinación
CIIDIR
Reyes
Guelavila
pH
7.5 3 med-al
8.26 med-ac
5.68 mod -ac
Densidad
1.54
1.55
1.38
MO (%)
0.218
1.09
2.179
Nitrógeno (%)
0.01 b
0.054 b
0.108 b
Fósforo mg/kg
20.5 m
16.3 m
13.01 mod-b
Textura
% Arena 90.4
% Arcilla 3.60
% Limo 6.00
% Arena 76.4
% Arcilla 11.60
% Limo 12.00
% Arena 75.68
% Arcilla 11.60
% Limo 12.72
Arenoso
Arenoso franco
Arenoso franco
C.E µs
830.5
712
450.5
Retención de
humedad (%)
20.8
a= alto
ac= ácido
med=medianamente
b=bajo
36.5
al=alcalino
33.2
m=medio
mod=moderadamente
Los resultados analíticos de parámetros de fertilidad de tres suelos nos permite visualizar que
podría haber dificultades para la disponibilidad de nutrientes en los suelos de Reyes y Guelavila
por efecto de valores de pH, alcalino y ácido respectivamente. El suelo CIIDIR es notoriamente
el menos fértil, por su muy bajo contenido de materia orgánica y su alta cantidad de arena y
muy baja de arcilla. Por ello mismo es el que menor capacidad de retención de humedad
presentó, lo que lo hace necesariamente dependiente del riego para asegurar cosechas
óptimas. Bajo estas consideraciones, se espera que todos los suelos presenten niveles altos de
lixiviación, en orden de mayor a menor: CIIDIR>Reyes>Guelavila.
Figura 12. Magnitud de la lixiviación de nitrato de suelos que recibieron aplicación de diferentes fuentes
de fertilización, orgánica y mineral. Fueron tres tipos de suelo y dos tipos de material aplicado: orgánico
(composta y vermicomposta) y mineral (fertilizantes comerciales de liberación lenta de tres marcas
registradas).
a
[ ] de Nitratos lixiviados
(mgL-1)
160
140
120
100
80
b
60
40
c
d
d
d
20
0
SF
C
V
TB
NF
MG
Fertilizantes
a
120
[ ] de Nitratos lixiviados
(mgL-)
100
80
60
b
40
20
c
0
CIIDIR
Reyes
Suelos
Guelavila
Impacto
Se han iniciado actividades de experimentación en terrenos de productores cooperantes
interesados en conocer esta tecnología. Estos experimentos serán materia de informe del
segundo año de operación del proyecto. Se ha logrado captar el interés de la Fundación
Produce Oaxaca A.C., la cual ha otorgado apoyo financiero para el proyecto, por un monto de
$185,000 para el periodo agosto de 2006 a junio e 2007. Se espera lograr el apoyo para un
segundo año de operación, durante el cual la mayoría de los experimentos continuarán siendo
evaluados, y podremos tener algunos resultados concluyentes del desarrollo de un paquete
tecnológico para el manejo de la fertilidad del suelo y la nutrición vegetal del maguey espadín en
la región productora del estado de Oaxaca.