Modulhandbuch - Molekulare Biotechnologie

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Modulhandbuch
16 831 Molekulare Biotechnologie
Wissenschaftszentrum Weihenstephan für Ernährung,
Landnutzung und Umwelt
Technische Universität München
http://www.tum.de/
www.wzw.tum.de
Modulhandbuch
Generiert am 19.07.2013
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Allgemeine Informationen und Lesehinweise zum Modulhandbuch
Zu diesem Modulhandbuch:
Ein zentraler Baustein des Bologna-Prozesses ist die Modularisierung der Studiengänge, das heißt die Umstellung
des vormaligen Lehrveranstaltungssystems auf ein Modulsystem, in dem die Lehrveranstaltungen zu thematisch
zusammenhängenden Veranstaltungsblöcken - also Modulen - gebündelt sind. Dieses Modulhandbuch enthält die
Beschreibungen aller Module, die im Studiengang angeboten werden. Das Modulhandbuch dient der Transparenz
und versorgt Studierende, Studieninteressierte und andere interne und externe Adressaten mit Informationen über
die Inhalte der einzelnen Module, ihre Qualifikationsziele sowie qualitative und quantitative Anforderungen.
Wichtige Lesehinweise:
Aktualität
Jedes Semester wird der aktuelle Stand des Modulhandbuchs veröffentlicht. Das Generierungsdatum (siehe
Fußzeile) gibt Auskunft, an welchem Tag das vorliegende Modulhandbuch aus TUMonline generiert wurde.
Rechtsverbindlichkeit
Modulbeschreibungen dienen der Erhöhung der Transparenz und der besseren Orientierung über das
Studienangebot, sind aber nicht rechtsverbindlich. Einzelne Abweichungen zur Umsetzung der Module im realen
Lehrbetrieb sind möglich. Eine rechtsverbindliche Auskunft über alle studien- und prüfungsrelevanten Fragen sind
den Fachprüfungs- und Studienordnungen (FPSOen) der Studiengänge sowie der allgemeinen Prüfungs- und
Studienordnung der TUM (APSO) zu entnehmen.
Wahlmodule
Wenn im Rahmen des Studiengangs Wahlmodule aus einem offenen Katalog gewählt werden können, sind diese
Wahlmodule in der Regel nicht oder nicht vollständig im Modulhandbuch gelistet.
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Qualifikationsprofil des Studiengangs
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Verzeichnis Modulbeschreibungen
CH0136: Grundlagen des Patentrechts (Principles of Patent Law)
CH0213: Internationales Patentrecht (International Patent Law)
CH0659: Einführung in die Biotechnologie (Introduction to Biotechnology)
ED0180: Philosophie und Sozialwissenschaft der Technik (Philosophy and Social Sciences of Technology)
MA9611: Wissenschaftlich-technisches Rechnen (Introduction to Scientific Computing) [WTR]
WI000159: Geschäftsidee und Markt - Businessplan-Grundlagenseminar (Business Plan - Basic Course
(Business Idea and Market)) [Businessplan Basic Seminar]
WI000189: Allgemeine Volkswirtschaftslehre (Introduction to Economics) [VWL]
WZ0019: Biochemie (Biochemistry)
WZ0308(2): Entwicklungsgenetik (Developmental Genetics)
WZ0325: Endo-, para- u. juxtakrine Regelmechanismen (Endo-, para- and juxtakrine Regulation)
WZ0332: Molekularbiologie der Pflanzen (Molecular Biology of Plants)
WZ0402: Strukturbioinformatik (Structural Bioinformatics)
WZ0443: Proteintechnologie: Membranen und Membranproteine (Membranes and Membrane Proteins)
WZ0513: Forschungspraktikum Zellbiologie (Research Project Cell Biology)
WZ1035: Host-Parasite-Interaction (Host-Parasite-Interaction)
WZ1045: Endokrinologie und Reproduktionsbiologie (Endocrinology and Biology of Reproduction)
WZ1085: Labortierwissenschaft (Science of Laboratory Animals)
WZ2002: Einführung in die Genetik (Introduction to Genetics)
WZ2003: Biochemie 2: Stoffwechsel (Biochemistry 2: Metabolism)
WZ2005: Mikrobiologie (Microbiology)
WZ2013: Molekulare Bakteriengenetik (Molecular Genetics of Bacteria)
WZ2014: Molekulare Pflanzenzüchtung (Molecular Plant Breeding)
WZ2015: Molekulargenetik und Regulationsphysiologie der Tiere (Molecular Genetics and Regulation
Physiology of Animals)
WZ2016: Proteine: Struktur, Funktion und Engineering (Proteins: Structure, Function, and Engineering)
WZ2017: Zellkulturtechnologie (Cell Culture Technology)
WZ2019: Metabolic Engineering und Naturstoffproduktion (Metabolic Engineering and Production of Natural
Products)
WZ2045: Bioinformatik für Biowissenschaften II (Introduction to Bioinformatics II)
WZ2066: Weiterführende Bioinformatik (Advanced Bioinformatics)
WZ2130: Molekular-Physiologisches Praktikum (Molecular Physiological Practical Training)
WZ2132: Mikroskopisches Praktikum zur Funktionellen Histologie (Practical Course of Microscopy of
Functional Histology)
WZ2138: Kompaktkurs Membranen und Membranproteine (Practical Course in Membranes and Membrane
Proteins)
WZ2172: Forschungspraktikum Funktionelle Proteomanalyse (Functional Proteomics)
WZ2207: Seminar Aktuelle Probleme der Genetik (Current Problems of Genetics)
WZ2221: Methods in Biotechnology (Seminar) (Methods in Biotechnology)
WZ2226: Projektseminar Membranproteine (Project Seminar Membrane Proteins)
WZ22270: Computer-Aided Drug and Protein Design (optional incl. Seminar) (Computer-Aided Drug and
Protein Design)
WZ2230: Forschungspraktikum Protein Engineering (Advanced Laboratory Course "Protein Technology")
WZ2256: Forschungspraktikum Molekulare Physiologie (Practical Course in Molecular Physiology)
WZ2297: Praktikum Protein- und Wirkstoffmodellierung (Protein and Drug Design)
WZ2327: Forschungspraktikum II Biochemische Genetik (Practical Course in Biochemical Genetics)
WZ2349: Praktikum Epigenetik (Internship Epigenetics)
WZ2371: Molekulare Pflanzenphysiologie 2 (Molecular Plant Physiology 2)
WZ2372: Mikroorganismen als Krankheitserreger (Pathogenic Microorganisms)
WZ2373: Biologie humanpathogener Bakterien (Biology of Human Pathogens)
WZ2374: Mikroorganismen in Lebensmitteln (Microorganisms in Food)
WZ2375: Evolution von Krankheitserregern (Evolution of Pathogens)
WZ2376: Forschungspraktikum Pathogene Bakterien (Research Project on Pathogenic Bacteria)
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WZ2381: Pflanzensystembiologie (Vorlesung und Seminar) (Plant Systems Biology (Lecture and Seminar))
[PlaSysBiol (VL+SE)]
WZ2382: Übung in Pflanzensystembiologie (Exercise in Plant Systems Biology) [PlaSysBiol (UE)]
WZ2384: Forschungspraktikum 2 - Molekularbiologie der Pflanzen (Research Project 2 Molecular Biology of
Plant)
WZ2402: Mikrobielle Toxine in der Nahrung (Microbial Toxins in Food)
WZ2404: Einführung in die Kultivierung von Säugetierzellen (Introduction to Mammalian Cell Culture )
WZ2413: Pharmakologie und Toxikologie für Studierende der Biowissenschaften (Vertiefung)
(Pharmacology and Toxicology for Students of Life Sciences)
WZ2414: Forschungspraktikum Pharmakologie und Toxikologie (Research Project Pharmacology and
Toxicology)
WZ2417: Forschungspraktikum Genetik 2 Entwicklungsgenetik (Research Project Genetics 2 Developmental Genetics)
WZ2420: Molekulare Genetik (Molecular Genetics)
WZ2427: Molekulare Zellbiologie der Tumorentstehung (Molecular Cell Biology of Tumorigenesis)
[MolZellbioTum]
WZ2436: Forschungspraktikum Molekulare Onkologie (Research Project Molecular Oncology)
WZ2439: Proteomics: Analytische Grundlagen und Biomedizinische Anwendungen (Proteomics: Analytical
Basics and Biomedical Applications)
WZ2441: Foschungspraktikum Chemie der Biopolymere (Research Project Biopolymer Chemistry)
WZ2449: Mikrobielle Vielfalt und Entwicklung (Microbial Diversity and Development)
WZ2453: Molekulare Pathologie und organspezifische Karzinogenese (Molecular Pathology and OrganSpecific Carcinogenesis)
WZ2457: Neurobiologie (Neurobiology)
WZ2460: Aktuelle Themen der Neurobiologie (Current Topics in Neurobiology)
WZ2461: Forschungspraktikum Neurobiologie am isolierten Gewebe (Research Project Neurobiology of
Isolated Tissue)
WZ2462: Forschungspraktikum Neurobiologie am intakten Organismus (Research Project Neurobiology of
Intact Animals)
WZ2474: Forschungspraktikum Molekulare Physiologie (Research Project in Molecular Physiology)
WZ2479: Advanced Methods and Findings in Neurophysiology (Advanced Methods and Findings in
Neurophysiology)
WZ2480: Entwicklungsgenetik der Pflanzen 2 (Plant Developmental Genetics 2)
WZ2487: Entwicklung von Starterkulturen (Development of Starter Cultures)
WZ2489: Humangenetik für Biologen (Human Genetics for Biologists)
WZ2490: Neurogenetische Grundlagen von neurologischen und psychiatrischen Erkrankungen
(Neurogenetics: The Pathoetiology of the Neurological and Psychiatric Diseases)
WZ2539: Proseminar Mikrobielle Wirkstoffe (Seminar on Microbial Effectors)
WZ2540: Forschungspraktikum Mikrobielle Physiologie und Genregulation (Research Project Microbial
Physiology and Gene Regulation)
WZ2542: Forschungspraktikum Mikrobielle Diversität und Molekularphylogenie (Research Project Microbial
Diversity and Molecular Phylogeny)
WZ2545: Forschungspraktikum Biotechnologie der Tiere (Research Project Animal Biotechnology )
WZ2549: Peptidchemie und Biochemie (Peptide Chemistry and Biochemistry)
WZ2550: Forschungspraktikum Peptidchemie und Biochemie (Research Project Peptide Chemistry and
Biochemistry)
WZ2561: Forschungspraktikum Protein- und Wirkstoffmodellierung (Research Project Protein Modelling and
Drug Design)
WZ2579: Analysis of High-Throughput Datasets for Biologists (Analysis of High-Throughput Datasets for
Biologists)
WZ2580: Protein-Engineering (Protein Engineering)
WZ2581: Pflanzenbiotechnologie (Plant Biotechnology)
WZ2582: In vitro-Modelle der Zellbiologie (In vitro Models in Cell Biology)
WZ2583: Bioinformatik / Genomik (Bioinformatics / Genomics)
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WZ2584: Biopharmazeutische Technologie (Bioprocessing and Bioseparations)
WZ2585: Kompaktkurs Molekulare Methoden der Bioanalytik (Molecular Methods in Bioanalytics)
WZ2586: Grundlagen der Proteinkristallographie (Principles of Protein Crystallography)
WZ2588: Pharmazeutische Technologie und Biopharmazie (Pharmaceutical Technology and Biopharmacy)
WZ2597: Forschungspraktikum Pharmazeutische Bioprozeßtechnik
WZ2626: Angewandte Mikrobiologie (Applied Microbiology)
WZ2635: Molekulare Onkologie (Molecular Oncology)
WZ2638: Forschungspraktikum zur Tiermedizinischen Mikrobiologie und Hygiene (Research Project in
Veterinary Microbiology and Hygiene)
WZ2927: Forschungspraktikum Molekulare Mikrobielle Enzymatik (Research Project Molecular Microbial
Enzymology)
WZ3036: Molekulare Sensorik (Molecular Sensory Properties )
WZ3207: Nutrition and Microbe-Host Interactions (Nutrition and Microbe-Host Interactions)
WZ3214: Experimental Immunology and Pathology (Experimental Immunology and Pathology)
WZ8058: Immunoinformatik (Immunoinformatics)
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Modulbeschreibung
CH0136: Grundlagen des Patentrechts
Wissenschaftszentrum Weihenstephan für Ernährung, Landnutzung und Umwelt
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Bachelor
Deutsch
Einsemestrig
Sommersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Eigenstudiumsstunden:
Präsenzstunden:
2
45
30
15
* Die Zahl der Credits kann in Einzelfällen studiengangsspezifisch variieren. Es gilt der im Transcript of Records oder Leistungsnachweis
ausgewiesene Wert.
Beschreibung der Studien-/ Prüfungsleistungen:
Prüfungsart:
Prüfungsdauer (min.):
Wiederholungsmöglichkeit:
schriftlich
60
Folgesemester
(Empfohlene) Voraussetzungen:
Gute Deutschkenntnisse erforderlich. Englischkenntnisse sind nicht erforderlich, aber hilfreich
Inhalt:
Einfuehrung in den gewerblichen Rechtsschutz und insbesondere das deutsche Patentsystem.Die Vorlesung
vermittelt Grundkenntnisse im Hinblick auf Anmeldeerfordernisse, Prioritaet, Patentierungs-voraussetzungen,
Pruefungsverfahren, Einspruch, Beschwerde, Durchsetzung und Wirkungen von Patenten
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an der Modulveranstaltung ist der Studierende in der Lage, die patentrechtlichen Aspekte von
Erfindungen zu bewerten.
Lehr- und Lernmethoden:
Die Inhalte der Vorlesung werden durch Vortrag vermittelt. Ferner werden gemeinsam konkrete Fragestellungen
beantwortet und ausgesuchte Beispiele bearbeitet.Die Studierenden sollen zur inhaltlichen Auseinandersetzung
mit den Themen angeregt werden.
Medienform:
Powerpoint, Quiz
Literatur:
Skriptmaterial
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Modulverantwortliche(r):
Angelika Schenk, aschenk@beetz.com
Lehrveranstaltungen (Lehrform, SWS) Dozent(in):
Grundlagen des Patentrechts (LV0054) (Vorlesung, 1 SWS)
Schenk A ( Sellmeier S )
Für weitere Informationen zum Modul und seiner Zuordnung zum Curriculum klicken Sie bitte
www.campus.tum.de oder hier.
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Modulbeschreibung
CH0213: Internationales Patentrecht
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
Wintersemester/Somme
rsemester
Präsenzstunden:
2
60
45
15
ausgewiesene Wert.
Die Prüfungsleistung wird in Form einer Klausur erbracht. Es soll gezeigt werden, dass die Grundzüge des
Patentrechts in Prinzip verstanden sind und auf einfache Fallgestaltungen angewandt werden können. Hilfsmittel
sind erlaubt. Der gesamte Vorlesungsstoff wird abgefragt.
Prüfungsart:
schriftlich
60
Folgesemester
keine
Inhalt:
1. Einführung; 2. PVÜ - Priorität; 3. EPÜ - Anmeldephase; 4. EPÜ - Sachprüfung; 5. EPÜ - Rechtsmittel; 6. PCT
- Anmeldung/Recherche; 7. PCT - vorl. Prüfung/Nationalisierung; 8. Nationale Patentsysteme
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an der Vorlesung ist der Studierende in der Lage, grundlegende Aspekte von Erfindungen im
Zusammenhang des Internationalen Patentrechts zu bewerten.
Die Inhalte der Vorlesung werden durch Vortrag vermittelt. Ferner werden gemeinsam konkrete Fragestellungen
beantwortet und ausgesuchte Beispiele bearbeitet. Die Studierenden sollen zur inhaltlichen Auseinandersetzungen
mit den Themen angeregt werden.
Medienform:
PowerPoint, Quiz
Literatur:
Keine speziellen Lehrbücher, Handzettel
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Angelika, Dr. Schenk, aschenk@beetz.com
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Modulbeschreibung
CH0659: Einführung in die Biotechnologie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Bachelor
Deutsch
Einsemestrig
Sommersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
90
60
30
ausgewiesene Wert.
Die Prüfungsleistung wird in Form einer Klausur erbracht. In dieser soll nachgewiesen werden, dass in begrenzter
Zeit und ohne Hilfsmittel ein Problem erkannt wird und Wege zu einer Lösung gefunden werden können. Die
Prüfungsfragen gehen über den gesamten Vorlesungsstoff. Die Antworten erfordern teils eigene Berechnungen
und Formulierungen teils Ankreuzen von vorgegebenen Mehrfachantworten.
Prüfungsart:
schriftlich
90
Folgesemester
Grundkenntnisse in Biochemie und Molekularer Biotechnologie
Inhalt:
Grundlegende Aspekte der Biotechnologie rekombinanter Proteinproduktion, Proteinfaltung, Antikörpertechnologie,
Bioengineering, Bioreaktoren, biotechnologische Produktionsprozesse. Grundlagen der Immunologie,
Antikörperstruktur, Quelle der Anitkörpervielfalt, Herstellung monoklonaler Antikörper, Biosynthese von
funktionalen Antikörperfragmenten in E.coli; Klonierung von Ig Genrepertoires; Produktion von Antikörpern in
Zellkulturen; Biospezifische und andere Derivate von Antikörpern; Selektion von rekombinanten Ig Fragmenten via
Phage Display.
Lernergebnisse:
Nach der erfolgreichen Modulteilnahme verstehen die Studierenden die grundlegenden theoretischen und
technologischen Aspekte der Produktion von rekombinanten Proteinen und von Antikörpern. Sie lernen die
verschiedenen Bioreaktoren zu unterscheiden und sind in der Lage, biotechnologische Produktionsprozesse im
Ablauf zu skizzieren.
Die Modulveranstaltung besteht aus einer Vorlesung (2 SWS). Die Inhalte der Vorlesung werden im Vortrag, durch
Präsentation des Vorlesungsstoffes an der Tafel und mit Projektionsmethoden vermittelt. Durch Fragen an die
Studenten und Diskussion mit den Studenten sollen diese gezielt zur inhaltlichen Auseinandersetzung mit den
Themen angeregt werden.
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Medienform:
Powerpointpräsentation, Bücher, Skript, Tafelanschrieb
Literatur:
Bioprocess Engineering Principles, Doran, Pauline M., Academic Press Lim., London, 1995, ISBN 0-12-220855-2
bzw. 0-12-220856-0 (pbk); Glick, Pasternak, 'Molecular Biotechnology, Principles and Applications of
Recombinant DNA', ASM Press, 3 rd edition, 2003; Janeway, Travers, Walport, Shlomchik, 'Immunology: The
Immune System in Health and Disease', Garland Science Publishing, 5 th edition, 2001.
Johannes Buchner, johannes.buchner@tum.de
Einführung in die Biotechnologie (LV0135) (Vorlesung, 2 SWS)
Buchner J, Skerra A, Weuster-Botz D
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Modulbeschreibung
ED0180: Philosophie und Sozialwissenschaft der Technik
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Bachelor
Deutsch
Einsemestrig
Sommersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
90
60
30
ausgewiesene Wert.
Studienleistungen - Besuch der Vorlesung im Umfang von 2 SWS (2 SWS = 1 CP); - Lektüre von Texten (30 h =
1 CP); - Bearbeitung der drei Onlineaufgaben (30 h = 1 CP) Das Semester begeleitend werden drei schriftliche
Aufgaben zu Teilabschnitten des Vorlesungsinhaltes gestellt, die individuell zu bearbeiten sind. Die
Aufgabenstellung erfolgt online. Bearbeitungszeit ist jeweils 7 Tage. Die Ergebnisse der Online-Aufgaben werden
über TUMonline bekannt gegeben. Die Prüfungsnote wird aus den Ergebnissen der drei Online-Aufgaben gebildet.
Eine Wiederholung in Form einer mündlichen Prüfung ist möglich; Voraussetzung hierfür ist die vorangehende
Beteiligung an den Online-Aufgaben. Bei Nichtbestehen der Nachprüfung ist das gesamte Modul zu wiederholen.
Prüfungsart:
schriftlich
semesterbegleitende
Online-Aufgaben
Semesterende
Hausaufgabe:
Ja
keine
Inhalt:
In dieser Vorlesung werden philosphische und sozialwissenschaftliche Perspektiven zur Betrachtung und
Beurteilung von Technik erarbeitet. Es wird untersucht, welche politischen, soziologischen und ökonomischen
Dimensionen moderner Technik unser Leben mitbestimmen und wie soziale
Faktoren in die Gestaltung von Technik eingehen.
Lernergebnisse:
Ziel der Veranstaltung ist es, jenseits natur- und ingenieurwisenschaftlicher Spezialisierung ein umfassendes Bild
von den Wirkungsformen und den meist nur stillschweigend mitgedachten, gesellschaftlichen
Funktionsvoraussetzungen moderner Technik zu vermitteln.
mit medialer Unterstützung
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Medienform:
elektronische Vorlesungsskripte, Präsentationen
Literatur:
Je spezifisch zu den einzelnen Vorlesungswochen im Skript angegeben.
Ulrich Wengenroth, ulrich.wengenroth@mytum.de
Philosophie und Sozialwissenschaft der Technik (Vorlesung, 2 SWS)
Wengenroth U
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Modulbeschreibung
MA9611: Wissenschaftlich-technisches Rechnen [WTR]
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
4
45
120
75
ausgewiesene Wert.
Klausur
Prüfungsart:
schriftlich
90
Folgesemester
MA9601 Höhere Mathematik 1 (WZW), MA9603 Höhere Mathematik 3 (WZW)
Inhalt:
Iterationsverfahren zur Nullstellenbestimmung, Grundzüge numerischer Verfahren der linearen Algebra,
Interpolation und Approximation, numerische Differentiation und Integration mit weiterführenden Anwendungen,
Prinzipien des numerischen Lösens von Differentialgleichungen
Lernergebnisse:
Die Studierenden sind nach der Teilnahme der Modulveranstaltung in der Lage, für entsprechende
Anwendungsfälle das geeignete Verfahren auszuwählen und anzuwenden.
Vorlesung und Übung, Rechnen von Übungsaufgaben
Medienform:
Skript, Übungsblätter, Vorlesungsnotizen, Fälle und Lösungen
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Literatur:
Opfer, G., Numerische Mathematik für Anfänger, Teubner.
Quarteroni, A., Saleri, F., Sapelza, K., Wissenschaftliches Rechnen mit MATLAB, Springer Press.
W. H., Teukolsky, S. A., Vetterling, W. T, Flannery, B. P., Numerical Recipes, Cambridge University Press.
Rizzo, M. L., Statistical computing with R, CRC Press.
Hannes Petermeier, hannes.petermeier@tum.de
Übungen zu Wissenschaftlich-Technisches Rechnen [MA9611] (Übung, 1 SWS)
Petermeier J
Wissenschaftlich-Technisches Rechnen [MA9611] (Vorlesung, 2 SWS)
Petermeier J
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WI000159: Geschäftsidee und Markt - Businessplan-Grundlagenseminar
[Businessplan Basic Seminar]
Geschäftsidee & Markt
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Bachelor/Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
3
90
60
30
ausgewiesene Wert.
Die Prüfungsleistung besteht in der Ausarbeitung wesentlicher Teile eines fünf- bis siebenseitigen Businessplans
(als Teamleistung) sowie der mündlichen Prüfung (als Einzelleistung). Das Team erhält ein schriftliches Feedback
zu dem Businessplan. Damit melden die Dozenten dem Team zurück, was es erreicht hat, wo es noch Schwächen
hat und, wesentlich, was es tun kann, um in Zukunft an ihrer Geschäftsidee weiter zu arbeiten.
Prüfungsart:
schriftlich und mündlich
mündlich: 30 Minuten
Folgesemester
Hausaufgabe:
Gespräch:
Vortrag:
Hausarbeit:
Ja
Ja
Ja
Ja
" Kenntnisse: Keine expliziten Voraussetzungen; Bereitschaft mitzumachen
" Fähigkeiten: Chancen erkennen; Teamarbeit; Kommunikationsfähigkeit; Leistungsbereitschaft, Verbindlichkeit
" Fertigkeiten: Offenheit; analytisches Denken; visuelles Denken; Eigeninitiative
Inhalt:
In kreativer Atmosphäre lernen die Teilnehmer, eine Geschäftsidee zur Lösung eines Kundenproblems strukturiert
in Form eines Businessplans zu durchdenken und zu präsentieren. Dazu werden grundlegende Kapitel eines
Businessplans entwickelt. Die Teilnehmer vernetzen sich mit Personen aus dem Gründerumfeld der TUM.
- Grundlagen Innovation
- Überblick Businessplan-Erstellung
- Kunde und Kundennutzen
- Geschäftsmodell
- Beurteilung von Geschäftsideen
- Markt und Wettbewerb
- Pitch der Geschäftsideen
- Präsentationstraining: Kunde, Kundennutzen, Markt, USP
- Bildung von schlagkräftigen Unternehmerteams
- Gewerblicher Rechtsschutz
Modulhandbuch
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Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an den Modulveranstaltungen ist der Studierende in der Lage:
" den Unterschied zwischen Idee, Erfindungen und Innovationen zu verstehen;
" den Nutzen von einer iterativen Vorgehensweise bei der Entwicklung von Geschäftschancen zu verstehen;
" Chancen zu erkennen und Geschäftskonzepte prototypisch, z.B. mit Hilfe eines Businessplans, anzuwenden;
" Ideen zu bewerten und Geschäftschancen zu erkennen;
" Märkte zu segmentieren und potentielle Nischenmärkte zu analysieren;
" die eigene Geschäftsidee mit Hilfe von Kundenfeedback, Beobachtungen bei Stakeholdern und Interviews zu
bewerten;
" ein reales Kundenproblem zu identifizieren und mit der vorgeschlagenen Lösungsidee einen Kundennutzen zu
schaffen.
Seminaristischer Stil: Die Dozenten sind Unternehmer, Mehrfach-Gründer, Coaches und ehemalige
Geschäftsführer.
" Interdisziplinarität: Die Teilnehmer bilden kursübergreifende Teams, um eine zielführende Mischung von
Fachwissen und Fähigkeiten im Team sicherzustellen.
" Action-based learning: Alle Teilnehmer werden dazu aufgefordert, selbst aktiv zu werden und durch Erfahrung zu
lernen.
" Learning-by-doing: Jedes Team verfolgt eine reale oder für das Seminar gewählte Geschäftsidee. Ein
besonderes Augenmerk liegt hierbei auf dem wirklichen Verstehen des Kunden, zum Beispiel durch Befragung,
Beobachtung oder Expertengespräch.
" Prototyping: Anhand von einfachen Prototypen entwickeln die Teams ihre Geschäftsidee und machen sie
fassbar.
" Online Vernetzung: Die Arbeit im Seminar wird durch Onlinewerkzeuge begleitet, um die Teambildung und
Ideenfindung zu unterstützen.
" Elevator Pitch Training: Durch das Üben des Elevator Pitches werden die Teilnehmer in die Lage versetzt, ihre
Geschäftsidee kurz und knackig darzulegen.
" Präsentationstraining: Jedes Team präsentiert seine Geschäftsidee 1-2 mal und erhält Feedback zum
Präsentationsstil sowie Inhalt.
Medienform:
" Hand-out (wird verteilt)
" Download der Handouts auf www.unternehmertum.de
" Case study
" Beispiele
" Intranet Diskussionsforum
- Intranet Kundenproblemdatenbank
- Intranet Projektbörse
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Literatur:
" Münchener Business Plan Wettbewerb: Der optimale Businessplan, München
" Hand-out der Powerpoint-Folien aus dem Seminar
" UnternehmerTUM (2011): Handbuch Schlüsselkompetenzen, 7. Auflage (erhält jeder Teilnehmer)
" Moore, Geoffrey A. (2002).: Crossing the Chasm, Harpercollins
" Timmons, Jeffry A. / Spinelli, Stephen (2007): New Venture Creation, 7.th edition, McGraw Hill Professional
" Malek, Miroslaw / Ibach, Peter K. (2004): Entrepreneurship, Dpunkt Verlag
" Faltin, Günter (2008): Kopf schlägt Kapital, Hanser
Oliver Bücken, buecken@unternehmertum.de
Geschäftsidee und Markt - Businessplan-Grundlagenseminar (Seminar, 2 SWS)
Heyde F [L], Jopen B, Bücken O, Heyde F, Maier-Eicher S
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Modulbeschreibung
WI000189: Allgemeine Volkswirtschaftslehre [VWL]
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Bachelor
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
90
60
30
ausgewiesene Wert.
Zur Vorbereitung auf die Vorlesung soll das entsprechende Kapitel des Lehrbuchs durchgelesen und daran
anschließend die Widerholungsfragen beantwortet und das Arbeitsskript vervollständigt werden. Anhand der
Vorlesung können die Antworten überprüft, und die Inhalte verfestigt werden. Eine Klausur (60 min, benotet) dient
der Überprüfung der in Vorlesung erlernten Kompetenzen. Die Studierenden zeigen in der Klausur, ob sie in der
Lage sind, das erlernte Wissen zu strukturieren und die wesentlichen Aspekte darzustellen. Darüber hinaus zeigen
sie ihre Fähigkeit, die erlernten Methoden auf einfache Fragestellungen anzuwenden.
Prüfungsart:
schriftlich
60min
Folgesemester
Keine
Inhalt:
MIKROÖKONOMIE:
" Einführung in das Volkswirtschaftliche Denken (Zehn volkswirtschaftliche Regeln);
" Was bestimmt Angebot und Nachfrage;
" Elastizitäten und ihre Anwendung;
" Wirtschaftspolitische Maßnahmen und deren Wirkung auf Angebot und Nachfrage;
" Konsumenten, Produzenten und die Effizienz von Märkten;
" Die Kosten der Besteuerung;
" Die Ökonomik des öffentlichen Sektors (Externalitäten);
" Produktionskosten;
" Unternehmungen in Märkten mit Wettbewerb;
MAKROÖKONOMIE:
" Die Messung des Volkseinkommens;
" Produktion, Produktivität und Wachstum;
" Sparen, Investieren und das Finanzsystem;
" Das monetäre System;
" Geldmengenwachstum und Inflation;
" Gesamtwirtschaftliche Nachfrage und Angebot und Wirtschaftspolitik
Modulhandbuch
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Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an diesem Modul sind die Studierenden in der Lage die grundlegenden Funktionsweisen von
Märkten, die Gründe für Marktversagen und die wirtschaftspolitischen Möglichkeiten in Märkte einzugreifen, zu
verstehen. Sie haben einen ersten Einblick darüber wie Firmen im Wettbewerb ihre Entscheidungen treffen. Sie
sind mit makroökonomischen Zusammenhängen zwischen Inflation, Arbeitslosigkeit, Zinssätze und
Wirtschaftswachstum, so wie die Möglichkeiten diese Faktoren durch Wirtschaftspolitik zu beeinflussen, vertraut.
Sie verstehen welche Größen kurzfristig und langfristig das Wirtschaftswachstum bestimmen. Darüber hinaus
kennen Sie die wichtigsten ökonomischen Grundbegriffe (economic literacy). Ebenfalls verstehen Sie wie in den
Wirtschaftswissenschaften mit Hilfe von Abstraktion und Annahmen komplexe Probleme auf das wesentliche
reduziert werden können.
Studium des Lehrbuchs; Überprüfung des gelernten mittels Widerholungsfragen und Arbeitsskripts; Verfestigung
der Inhalte in der Vorlesung
Medienform:
PowerPoint, Arbeitsskriptum
Literatur:
Mankiw: Grundzüge der VWL, 3. Auflage, Verlag Schäffer-Poeschel
Klaus Salhofer, salhofer@wzw.tum.de
Allgemeine Volkswirtschaftslehre (Vorlesung, 2 SWS)
Salhofer K
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ0019: Biochemie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Bachelor
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
4
120
78
42
ausgewiesene Wert.
Regelmäßige, aktive Teilnahme an der Lehrveranstaltung (verstehen und erkennen in der Lehrveranstaltung und
im Eigenstudium). Der Lehrende gibt Art, Dauer und Termin der Prüfungsleistung zu Beginn der Lehrveranstaltung
bekannt. Eine Klausur dient der Überprüfung der erlernten Kompetenzen. Die Lernenden zeigen in der Klausur, ob
sie die erarbeiteten Informationen beschreiben, interpretieren und auf ähnliche Sachverhalte übertragen können
sowie die unterschiedlichen Informationen zu einem neuartigen Ganzen verknüpfen können. In der schriftlichen
Überprüfung demonstrieren die Studierenden, ob sie in der Lage sind, das erlernte Wissen zu strukturieren und die
wesentlichen Aspekte darzustellen.
Prüfungsart:
schriftlich
90
Folgesemester
Hausaufgabe:
Ja
Vorlesungen: Anorganische Chemie, Organische Chemie
Inhalt:
Die Biochemie bildet die Basis aller zellbiologischen und physiologischen Vorgänge in der Biologie. Im
Vordergrund dieser Vorlesung stehen die Struktur-Funktionsprinzipien der biomakromolekularen Stoffklassen
sowie die Grundzüge des Stoffwechsels: Biomoleküle, Struktur und Funktion Aminosäuren, Proteine,
Kohlenhydrate, Lipide und biologische Membranen, Nukleinsäuren; Einführung in die biochemische
Thermodynamik und Kinetik; Enzymkatalyse und Metabolismus; Glycolyse, Citratzyklus, oxidative
Phosphorylierung; DNAReplikation, Transkription und Translation/Proteinbiosynthese.
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an dem Modul verfügen die Studierenden über theoretische Grundlagen der Biochemie als
Voraussetzung zum Verständnis vertiefender Lehrveranstaltungen. Die Studierenden erwerben die Fähigkeit:
Biochemische Grundstrukturen wichtiger Stoffklassen zu verstehen, Prinzipien des Stoffwechsels zu verstehen, die
erworbenen Kenntnisse als Grundlage zum Verständnis der im Studiengang folgenden weiterführenden
biochemischen Lehrveranstaltungen anzuwenden.
Modulhandbuch
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Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Vorlesung
Lernaktivität: Literaturstudium
Lehrmethode: Vortrag
Medienform:
Präsentationen mittels Powerpoint, Skript
Literatur:
Voet, Voet, Pratt, Lehrbuch der Biochemie, Wiley-VCH, 2002; Berg, Tymoczko, Stryer, Biochemie, Spektrum
Akademischer Verlag, 2007; Lehninger, Nelson, Cox, Lehninger Biochemie, Springer, 2009
Arne Skerra, arne.skerra@mytum.de
Biochemie 1: Grundlagen der Biochemie (Vorlesung, 3 SWS)
Skerra A [L], Skerra A
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ0308(2): Entwicklungsgenetik
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Bachelor
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
50
20
30
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
schriftlich
60
Folgesemester
Grundlegende Kenntnisse der Biologie (insbesondere Zellbiologie und Genetik)
Inhalt:
1.) Molekulare Prinzipien der Entwicklungsbiologie: laterale Inhibition Organisationszentren Rechts-Linksorganisation Epitheliale-Mesenchymale Transformation
2.) Molekulare Grundlagen essentieller entwicklungsbiologischer Prozesse: Befruchtung Implantation
Gastrulation Achsenbildung Differenzierungsprozesse Stammzellbiologie - Altern
3.) Molekulare Grundlagen der Organogenese: Nervensystem Sinnesorgane Darm Lunge Pankreas
Knochen (Extremitäten) Muskeln
Lernergebnisse:
Am Ende der Veranstaltung sollen die Studenten
1.) Kenntnisse über die grundlegenden zellbiologischen Vorgänge der tierischen Entwicklungsbiologie besitzen;
2.) die Prinzipien der molekularen Regulation dieser Prozesse benennen und erklären können
Vortrag
Vorlesung auf Deutsch (Folien auf englisch);
Vorlesung mit Fragen (im Verlauf oder am Ende der Vorlesung);
Skript zur Nacharbeit während Vorlesung - kurz vor Prüfung online
Modulhandbuch
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Medienform:
Literatur:
1.) Developmental Biology, Gilbert, 9th edition; Sinauer Associates
2.) Vorlesungsskript, verteilt in Vorlesung, kurz vor Prüfung online
Wolfgang Wurst, w.wurst@mytum.de
Vorlesung Entwicklungsgenetik (Vorlesung, 2 SWS)
Wurst W, Hrabé de Angelis M, Beckers J, Huber Broesamle A, Vogt Weisenhorn D
Modulhandbuch
Seite 25 von 209
Modulbeschreibung
WZ0325: Endo-, para- u. juxtakrine Regelmechanismen
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Bachelor
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
mündlich
30
Folgesemester
Inhalt:
Lernergebnisse:
Medienform:
Literatur:
,
Modulhandbuch
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Endo-, para- und juxtakrine Regelmechanismen [WZ0325] (Vorlesung, 2 SWS)
Pfaffl M, Ulbrich S, Riedmaier-Sprenzel I, Fürst R
Modulhandbuch
Seite 27 von 209
Modulbeschreibung
WZ0332: Molekularbiologie der Pflanzen
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Bachelor
Deutsch/Englisch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
90
60
30
ausgewiesene Wert.
Klausur
Prüfungsart:
schriftlich
90
Folgesemester
Vorlesung Einführung in die Pflanzenwissenschaften bzw. Allgemeine Biologie und Pflanzenphysiologie. Solide
zellbiologische und genetische Kenntnisse.
Inhalt:
Diese Vorlesung beschäftigt sich einerseits mit der Struktur von Genen und der Funktion und Regulation der
Genexpression. Gegenstand der Veranstaltung sind auch die Genomanalyse, funktioneller Genomik und
Systembiologie anhand des Modellorganismus Arabidopsis thaliana. Die behandelten Themen schliessen den
Gentransfer mit Agrobakterium mit ein, die Identifikation und Analyse von Genen in Pflanzen, ausgewählte
Beispiele der Signaltransduktion und Regulation der Transkript- und Proteinmenge sowie des Membranverkehrs.
Lernergebnisse:
Ein detailliertes Verständnis der Regulation der Genexpression, der Analysemöglickeiten und der Techniken des
genetischen Engineerings in Pflanzen, sowie ein Verständnis von aktuellen Entwicklungen in funktioneller Genomik
und Systembiologie.
Vorlesung, Diskussion, Gruppenarbeit
Medienform:
Präsentationen mittels Powerpoint, Tafelanschrieb, Skript (Downloadmöglichkeit für Vorlesungsmaterial)
Literatur:
Skript (Downloadmöglichkeit für Vorlesungsmaterial)
Modulhandbuch
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Erwin Grill, erwin.grill@mytum.de
Molekularbiologie der Pflanzen [WZ0332] (Vorlesung, 2 SWS)
Grill E, Assaad-Gerbert F
Modulhandbuch
Seite 29 von 209
Modulbeschreibung
WZ0402: Strukturbioinformatik
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
Vortrag:
Hausarbeit:
Inhalt:
Lernergebnisse:
Medienform:
Literatur:
,
Modulhandbuch
Seite 30 von 209
Strukturbioinformatik (Vorlesung und Übung) (Vorlesung, 4 SWS)
Frischmann D
Modulhandbuch
Seite 31 von 209
Modulbeschreibung
WZ0443: Proteintechnologie: Membranen und Membranproteine
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Sommersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
90
60
30
ausgewiesene Wert.
Teilnahme an jedem Tag der Lehrveranstaltung wird erwartet. Eine schriftliche Prüfungen (90 min, benotet) dient
der Überprüfung der in der Vorlesung erwähnten und im Skript zur Lehrveranstaltung dargelegten Inhalte. Die
Studierenden zeigen in der Klausur, ob sie in der Lage sind, die theoretischen Hintergründe dessen zu verstehen,
was sie in der Vorlesung gehört haben und das Gelernte zu verknüpfen um Fragestellungen aus dem Bereich der
Vorlesung beantworten zu können.
Prüfungsart:
schriftlich
90
Folgesemester / Semesterende
Belegung des Fachs Biochemie oder Proteinbiochemie im Masterstudium
Inhalt:
Struktur und physikalische Eigenschaften von biologischen Membranen, Biogenese und Struktur von
Membranproteinen, experimentelle Charakterisierung von Membranproteinen, Theoretische Grundlagen und
praktische Methoden zum Verständnis von Protein-Protein-Wechselwirkungen, Struktur-Funktionsbeziehungen
an Hand ausgewählter Beispiele; Seminarraum des LS Chemie der Biopolymere
Lernergebnisse:
Nach diesem Modul sind die Studierenden in der Lage zu verstehen, wie die Struktur biologischer Membranen
deren physikalische Eigenschaften beeinflusst, wie die Biogenese und die Strukturbildung bei Membranproteinen
abläuftund wie man Membranproteine experimentell charakterisierenkann. Darüberhinaus besitzen sie Kenntnisse
in den theoretische Grundlagen und praktische Methoden zum Verständnis von Protein-ProteinWechselwirkungen.
Lehrtechnik: Vorlesung.
Lernaktivitäten: hören der Vorlesung
Modulhandbuch
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Medienform:
Vorlesungsskript
Literatur:
Vorlesungsskript
Dieter Langosch, langosch@tum.de
Proteintechnologie: Membranen und Membranproteine (Vorlesung, 2 SWS)
Langosch D
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ0513: Forschungspraktikum Zellbiologie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
10
300
75
225
ausgewiesene Wert.
Kontinuierliche, aktive Teilnahme am Forschungspraktikum ist verpflichtend. Primär wird die Aktivität, Produktivität,
Kreativität und Eigenständigkeit jedes Studierenden bewertet. Weiterhin zeigen die Studierenden anhand des
Laborjournals, eines zusammenfassenden Protokolls und 1-2 Präsentationen, dass Sie in der Lage sind, die
wesentlichen Aspekte der Versuche strukturiert und reflektiert darzustellen.
Prüfungsart:
immanenter
Prüfungscharakter
Vortrag:
Ja
Inhalt:
In diesem Forschungspraktikum werden einzelne Aspekte aktueller Forschungsprojekte bearbeitet. Die Themen
werden auf akute experimentelle Fragestellungen abgestimmt. Methodisch stehen Techniken zur Aufklärung oder
Nutzung der Signaltransduktion, primär in humanen Zellkulturmodellen im Vordergrund.
Beispiele wären:
- Etablierung von Reportersystemen in Tumorzellinien
- Entwicklung von Zellchip-Assays
- Untersuchung der Zell-Wirkstoff-Interaktion
- Entwicklung funktionaler Zellassays (z.B. Invasionsassay)
Methodisch:
Zellkulturtechnologie, molekularbiologische und proteinbiochemische Methoden.
Generell ist der Inhalt nicht fixiert.
Modulhandbuch
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Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an der Modulveranstaltung sind die Studierenden in der Lage, experimentelle Lösungen für
definierte, zellbiologische Fragestellungen zu schaffen. Die Studierenden erlangen hierbei ein vertieftes
Verständnis, wie Ergebnisse vor dem experimentellen Hintergrund zu werten sind. Neben methodischen
Fähigkeiten, primär in Zellkulturtechnologie und molekularbiologischen Methoden, werden selbständiges agieren
und eigenverantwortliche Entscheidung gefördert.
Lehrtechnik: Praktikum; Lernaktivitäten: Bearbeiten von zellbiologischen Fragestellungen und deren
Lösungsfindung; Üben von labortechnischen Fertigkeiten; Konstruktives diskutieren und kritisieren eigener
Experimente; Lehrmethode: Fragend-entwickelnde Methode
Medienform:
Skriptum
Literatur:
Einführende Literatur wird zum jeweiligen Praktikumsthema als Ausgangspunkt für eigene Recherchen der
aktuellsten Literatur zur Verfügung gestellt.
Karl Kramer, karl.kramer@tum.de
Forschungspraktikum Zellbiologie (Praktikum, 10 SWS)
Kramer K, Küster B
Modulhandbuch
Seite 35 von 209
Modulbeschreibung
WZ1035: Host-Parasite-Interaction
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Englisch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
150
80
70
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
90
Vortrag:
Ja
Grundlagen in den Pflanzenwissenschaften
Inhalt:
Vorlesung/Seminar: In diesem Modul werden umfassend biologischen Grundlagen der Interaktion von Kultur- und
Modellpflanzen mit Mikroorganismen erlernt. Das Modul soll auch die Lücke zwischen Grundlagenforschung und
Anwendung/Biotechnologie schließen. Interaktives Erarbeiten von komplexen Zusammenhängen in Kleingruppen.
Praktikum: Im Praktikum werden molekulare und mikroskopische Techniken der Untersuchung bzw. Beeinflussung
von Wirt-Parasit-Interaktionen erlernt und durchgeführt. Verstehen und Fördern der pflanzlichen Immunität.
Methoden: quantitative PCR, Pflanzentransformation, Mikroskopie von Resistenzreaktionen, Konfokale
Laserscanningmikroskopie ect.
Lernergebnisse:
Ausbildung zum Phytopathologen mit einem Verständnis der biowissenschaftlichen Grundlagen von Krankheit und
Resistenz an Kulturpflanzen. Befähigung zur Entwicklung von Strategien zum genetischen und biotechnologischen
Pflanzenschutz. Bewertung von Pflanzenschutzmaßnahmen auf ihrer biowissenschaftlichen Grundlage.
Vorlesung, Übung, Seminar
Medienform:
Modulhandbuch
Seite 36 von 209
Literatur:
Ralph Prof. Dr. Hückelhoven, phyto(at)lrz.tu-muenchen.de
Host-Parasite-Interaction (Master) (Kurs, 4 SWS)
Hückelhoven R, Pröls R, Höfle C
Modulhandbuch
Seite 37 von 209
Modulbeschreibung
WZ1045: Endokrinologie und Reproduktionsbiologie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
150
94
56
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
mündlich
30
Erfolgreiche Grundlagen- und Orientierungsprüfung
Bachelor Agrarwissenschaften oder äquivalenter Abschluss
Inhalt:
Vorlesung: Reproduktionsbiologie und Endokrinologie der Wirbeltiere (Regelmechanismen, Anatomie,
Morphologie, vergleichende Physiologie; Systematik der Reproduktionshormone und Hormonrezeptoren,
Wirkungsmechanismen der Reproduktionshormone, Hypothalamus-Hypophysen System, Spermatogenese;
Oogenese, Sexualzyklusregulation und Manipulation, Gravidität und Geburt; Reproduktionsmanagement);
Praktikum: Erkennung funktionaler Veränderungen bei unterschiedlichen Physen der Reproduktion
Lernergebnisse:
Ausbildung für wissenschaftliche Arbeit (Forschung) und Praxis (Besamungsstationen, Tierzucht, assistierte
Reproduktion)
Vorlesung, Praktikum
Medienform:
Literatur:
Friedemann Döcke "Veterinärmedizinische Endokrinologie", Gustav Fischer Verlag Jena, Stuttgart 1994, ISBN 3334-60432-2
Modulhandbuch
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Bajram PD Dr. Berisha, Berisha(at)wzw.tum.de
Endokrinologie und Reproduktionsbiologie (Vorlesung, 4 SWS)
Ulbrich S, Pfaffl M, Gellrich K, Kliem H
Modulhandbuch
Seite 39 von 209
Modulbeschreibung
WZ1085: Labortierwissenschaft
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Sommersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
150
90
60
ausgewiesene Wert.
Regelmäßige, aktive Teilnahme an den Lehrveranstaltungen wird erwartet. Eine Klausur (60 min, benotet) dient
der Überprüfung der in Vorlesung und Praktikum erlernten theoretischen Kompetenzen. Die Studierenden zeigen
in der Klausur, ob sie in der Lage sind, das erlernte Wissen zu strukturieren und die wesentlichen Aspekte
darzustellen. Sie sollen die erarbeiteten Informationen beschreiben, interpretieren, sinnvoll kombinieren und auf
ähnliche Sachverhalte übertragen können. Die Klausurnote bildet die Gesamtnote des Moduls.
Prüfungsart:
schriftlich
60
Folgesemester
Zum besseren Verständnis sind Kenntnisse in Zoologie und/oder Tierwissenschaft erforderlich
Inhalt:
Umfang, Art und Zweck von Tierversuchen in Deutschland; Ethische Abwägungen, 3-R-Prinzip; Anatomische,
physiologische und ethologische Grundlagen von Labortieren; Fütterung, Haltung, Züchtung und Krankheiten von
Labortieren; Hygienemaßnahmen in der Labortierhaltung; Tierschutzrecht und rechtliche Grundlagen zur
Betreibung von Versuchstierhaltungen.
Lernergebnisse:
Tierartgerechte Haltung und Umgang mit Labortieren unter den spezifischen Anforderungen größerer und kleinerer
Forschungslaboratorien; Vorbereitung auf die Konzeption von Tierversuchen und Tierversuchsanträgen; Reduktion
von Tierversuchen nach dem 3-R-Prinzip
Vorlesung im Seminarstil
Medienform:
Powerpoint-Präsentationen, die den Teilnehmern zur Verfügung gestellt werden
Modulhandbuch
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Literatur:
Weiss, J., Maeß, J., Nebendahl,. K. (Hrsg.): Haus- und Versuchstierpflege, 2. Auflage, 2003, Enke-Verlag,
Stuttgart.
Johann Bauer, johann.bauer@mytum.de
Labortierwissenschaften (Vorlesung, 4 SWS)
Bauer J, Hölzel C, Kliem H, Schnieke A, Paulicks B, Flisikowski K, Pfaffl M
Modulhandbuch
Seite 41 von 209
Modulbeschreibung
WZ2002: Einführung in die Genetik
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Bachelor
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
4
120
75
45
ausgewiesene Wert.
Regelmäßige, aktive Teilnahme an den Lehrveranstaltungen wird erwartet. Die Prüfungsleistung wird in Form einer
Klausur erbracht. Die Klausur dient der Überprüfung der in der Vorlesung und Übung erlernten theoretischen
Kompetenzen. Die Studenten zeigen in der Klausur, ob sie in der Lage sind, das erlernte Wissen zu strukturieren
und die wesentlichen Aspekte darzustellen. Sie sollen die erarbeiteten Informationen beschreiben, interpretieren,
sinnvoll kombinieren und auf ähnliche Sachverhalte übertragen können. Die Laborpraktischen Anteile des Moduls
sind von den Studierenden persönlich zu erbringen.
Prüfungsart:
schriftlich
90
Folgesemester
Hausaufgabe:
Ja
Keine
Inhalt:
Im Rahmen der Vorlesung werden theoretische Grundlagen zu folgenden Themen vermittelt: Struktur von Genen
und Genomen, Genfunktion, Vererbung von Genen, Rekombination, Gene und Chromosomen, Mutationen,
Bakteriengenetik, rekombinante DNA Technologie, Genomik, Transposons, Kontrolle der Genexpression, die
genetische Basis der Entwicklung. In der Übung wird das Erlernte anhand von Beispielen und Problemfällen
angewandt und vertieft.
Lernergebnisse:
Nach erfolgreicher Absolvierung dieses Moduls erhält man ein grundlegendes Verständnis genetischer Prinzipien
sowie der molekularen Grundlagen der Vererbung. Des Weiteren werden praxis-relevante Einblicke in Forschung
und Anwendung gewonnen. Studenten können abstrakte genetische Logik anwenden und haben erste Fähigkeiten
zur wissenschaftlichen Problemlösung erworben.
Modulhandbuch
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"Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Vorlesung, Präsentation, Übung.
Lernaktivitäten: Studium von Vorlesungsskript, -mitschrift, und Literatur. Verabeiten der Podcasts. Lösen von
Problemen (unter Anleitung sowie selbständig). Hausaufgabe."
Medienform:
"Präsentationen mittels Powerpoint,
Skript, Audio- und Videopodcasts (Downloadmöglichkeit für Vorlesungsmaterial)."
Literatur:
"Griffiths, A.J.F., Wessler, S.R., Carroll, S.B., Doebley, J. (2012). Introduction to Genetic Analysis. 10th Edition.
WH Freeman and Company, New York, USA.
Pierce, B.A. (2010) Genetics Essentials: Concepts and Connections. WH Freeman and Company, New York,
USA."
Kay Schneitz, schneitz@wzw.tum.de
Genetik-Übung für Studiengang Biochemie/Molekulare Biotechnologie (Übung, 4 SWS)
Glawischnig E, Gierl A, Römisch-Margl L
Genetik (Vorlesung, 2 SWS)
Schneitz K, Schwechheimer C
Modulhandbuch
Seite 43 von 209
Modulbeschreibung
WZ2003: Biochemie 2: Stoffwechsel
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
Vortrag:
Hausarbeit:
Inhalt:
Lernergebnisse:
Medienform:
Literatur:
,
Modulhandbuch
Seite 44 von 209
Biochemie 2: Reaktionswege und Stoffwechsel (Vorlesung, 2 SWS)
Skerra A, Schlapschy M
Modulhandbuch
Seite 45 von 209
Modulbeschreibung
WZ2005: Mikrobiologie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
Vortrag:
Hausarbeit:
Inhalt:
Lernergebnisse:
Medienform:
Literatur:
,
Modulhandbuch
Seite 46 von 209
Allgemeine Mikrobiologie (Vorlesung, 2 SWS)
Scherer S
Modulhandbuch
Seite 47 von 209
Modulbeschreibung
WZ2013: Molekulare Bakteriengenetik
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Bachelor
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
90
60
30
ausgewiesene Wert.
der Überprüfung der in der Vorlesung erlernten theoretischen Kompetenzen. Die Studierenden zeigen in der
Klausur, ob sie in der Lage sind, das erlernte Wissen zu strukturieren und die wesentlichen Aspekte darzustellen.
Sie sollen die erarbeiteten Informationen beschreiben, interpretieren, sinnvoll kombinieren und auf ähnliche
Sachverhalte übertragen können.
Prüfungsart:
schriftlich
90
Folgesemester
Grundkenntnisse in Genetik und Mikrobiologie
Inhalt:
"Molekulare Bakteriengenetik: Plasmide, Bakteriophagen, Transposons, Wirte. Mutagenese-Strateigen. Bakterielle
Genome. Grundlagen der bateriellen Genregulation: Transkription in Bakterien. Promotoren und
Transkriptionsfaktoren. Kontrolle der Genregulation durch RNA. Globale Genregulation. Ein ausführliches
Inhaltsverzeichnis findet sich auf der home page des Lehrstuhls für Mikrobielle Ökologie -> Studenten ->
Lehrveranstaltungen -> Inhalt.
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an den Modulveranstaltungen besitzen die Studierenden das grundlegende theoretische
Verständnis und Fachwissen zur molekularen Genetik und Regulationsphysiologie von Bakterien und Tieren. Die
Studierenden haben gelernt, in moelularen Regulationscircuits zu denken und deren Bedeutung für die Interaktion
von Bakterien und Tieren mit ihrer Umwelt einzuschätzen. Das Modul soll weiterhin Fähigkeiten zum Lösen von
Problemen entwickeln helfen, sowie das Interesse an molekulargenetischen Problemen und deren Bedeutung für
anwendungsorientioerte Fragestellungen fördern.
Modulhandbuch
Seite 48 von 209
"Lehrtechnik: Vorlesung
Lehrmethode: Vortrag, Fallstudien, interaktiver Diskurs mit Studenten während der Vorlesung.
Lernaktivitäten: Studium von Vorlesungsskript und Mitschrift, Auswendiglernen, Lösen von Übungsaufgaben,
Studium von Literatur"
Medienform:
"Tafelanschrieb, Präsentationen mittels Powerpoint, Kurzvideos.
Skript für Vorlesungsmaterial und Praktikumsskript (Downloadmöglichkeit)"
Literatur:
Snyder L, Champness W (2007) Molecular genetics of bacteria. 3rd ed, ASM Press Washington.
Siegfried Scherer, siegfried.scherer@mytum.de
Molekulare Bakteriengenetik [MID=WZ2013] (Vorlesung, 2 SWS)
Scherer S, Fuchs T
Modulhandbuch
Seite 49 von 209
Modulbeschreibung
WZ2014: Molekulare Pflanzenzüchtung
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
90
60
30
ausgewiesene Wert.
Die Prüfungsleistung wird in Form einer Klausur erbracht. In dieser soll nachgewiesen werden, dass in begrenzter
Zeit und ohne Hilfsmittel ein Problem erkannt wird, und Wege zu einer Lösung gefunden werden können. Die
Prüfungsfragen gehen über den gesamten Vorlesungsstoff.
Prüfungsart:
schriftlich
90
Folgesemester
Grundkenntnisse in Genetik und Molekularbiologie
Inhalt:
" Grundlagen der Pflanzengenetik (klassisch und molekular)
" Gen- und Genomkartierung in Nutzpflanzen (monogene und polygene Merkmale, physikalische Kartierung,
Genomsequenzierung)
" Methoden Forward und Reverse Genetics (kartengestützte Klonierung, Charakterisierung von Mutanten,
Genisolierung)
" Transgene Nutzpflanzen
Lernergebnisse:
Verständnis für Methoden und Forschungskonzepte der Genomanalyse und molekularen Genetik in
landwirtschaftlichen Nutzpflanzen.
Lernaktiviät: Literaturstudium
Lehrmethode: Vortrag mit PowerPoint Präsentationen
Modulhandbuch
Seite 50 von 209
Medienform:
Präsentationen mittels Powerpoint
Folien werden als pdf online zur Verfügung gestellt
Literatur:
T.A. Brown: Genome und Gene - Lehrbuch der molekularen Genetik; Spektrum Akademischer Verlag GmbH;
ISBN: 978-3-8274-1843-2
Robert H. Tamarin: Principles of Genetics, McGraw Hill Higher Education; ISBN: 0070486670
Heiko Becker: Pflanzenzüchtung, UTB für Wissenschaft, Eugen Ulmer Verlag Stuttgart; ISBN: 3-8252-1744-2
Weiterführende aktuelle Fachliteratur wird jeweils am Ende der Vorlesung angegeben.
Eva Dr. Bauer, eva.bauer@wzw.tum.de
Molekulare Pflanzenzüchtung [WZ2014] (Vorlesung, 2 SWS)
Bauer E, Westermeier P, Rademacher S
Modulhandbuch
Seite 51 von 209
Modulbeschreibung
WZ2015: Molekulargenetik und Regulationsphysiologie der Tiere
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
Vortrag:
Hausarbeit:
Inhalt:
Lernergebnisse:
Medienform:
Literatur:
,
Modulhandbuch
Seite 52 von 209
Molekulare Genetik und Regulationsphysiologie der Tiere (Vorlesung, 2 SWS)
Fries H, Schnieke A, Gellrich K
Modulhandbuch
Seite 53 von 209
Modulbeschreibung
WZ2016: Proteine: Struktur, Funktion und Engineering
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Bachelor/Master
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
90
60
30
ausgewiesene Wert.
im Eigenstudium). Der Lehrende gibt Art, Dauer und Termin der Prüfungsleistung zu Beginn der Lehrveranstaltung
bekannt. Eine Klausur dient der Überprüfung der erlernten Kompetenzen. Die Lernenden zeigen in der Klausur, ob
sie die erarbeiteten Informationen beschreiben, interpretieren und auf ähnliche Sachverhalte übertragen können
sowie die unterschiedlichen Informationen zu einem neuartigen Ganzen verknüpfen können. In der schriftlichen
Überprüfung demonstrieren die Studierenden, ob sie in der Lage sind, das erlernte Wissen zu strukturieren und die
wesentlichen Aspekte darzustellen.
Prüfungsart:
schriftlich
90
Folgesemester
Voraussetzungen für die erfolgreiche Teilnahme sind theoretische und praktische Kenntnisse der Grundlagen der
Biochemie.
Inhalt:
Die Proteine bilden die funktionell vielfältigste Stoffklasse innerhalb der Biomakromoleküle. Als Enzyme, Hormone
und Antikörper, Membran-, Struktur-, Transport- und Speicherproteine erfüllen sie eine Vielzahl von Aufgaben
innerhalb und außerhalb der Zelle. Die Gentechnik ermöglicht heute nicht nur die Überproduktion von Proteinen in
mikrobiellen Expressionssystemen oder Zellkultur; vielmehr ist durch Manipulation der kodierenden Gensequenz
auch der Austausch von Aminosäuren innerhalb eines Proteins oder gar die Verknüpfung verschiedener Proteine
zu einer einzigen Polypeptidkette möglich. Dieses Protein-Engineering macht sich neben biophysikalischen
Methoden auch die modernen Techniken der Strukturanalyse zunutze, u.a. X-ray und NMR. Auf folgende Aspekte
wird insbesondere eingegangen: Aminosäuren, Polypeptide und Proteine; selektive chemische Modifizierung;
Grundlagen und Beschreibung der dreidimensionalen Struktur; Faltung und Denaturierung von Proteinen;
Molekulare Erkennung; Praktische Modellsysteme des Protein-Engineerings zum Studium der Faltung,
Ligandenbindung und enzymatischen Katalyse.
Modulhandbuch
Seite 54 von 209
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an dem Modul verfügen die Studierenden über theoretische Grundlagen der Struktur und
Funktion der Proteine. Lernergebnisse umfassen einerseits Kenntnisse über den chemischen Aufbau der Proteine
aus Aminosäuren und die daraus resultierenden Reaktivitäten und andererseits die Zusammenhänge zwischen
Raumstruktur, biophysikalischen Wechselwirkungen innerhalb der Polypeptidkette, mit dem Lösungsmittel Wasser
sowie mit Liganden und Substraten. Damit sind die Studierenden in der Lage, das Verhalten von Proteinen unter
praktischen Aspekten einzuschätzen und Strategien zu ihrer Optimierung für gegebene Anwendungsbedingungen
zu entwickeln.
Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Vorlesung/Präsentation
Lernaktiviät: Literaturstudium
Lehrmethode: Vortrag
Medienform:
Die Vorlesung erfolgt mit graphischen Präsentationen (Projektor und PowerPoint). Die Folien werden den
Studenten in elektronischer Form oder als Ausdruck rechtzeitig zugänglich gemacht.
Literatur:
Fersht, "Structure and Mechanism in Protein Science", W.H.Freeman, 1998.
Petsko, Ringe, "Protein Structure and Function", Sinauer Associates, 2004.
Whitford, "Proteins - Structure and Function", John Wiley & Sons, 2005.
Arne Skerra, skerra@tum.de
Proteine: Struktur, Funktion und Engineering (Vorlesung, 2 SWS)
Modulhandbuch
Seite 55 von 209
Modulbeschreibung
WZ2017: Zellkulturtechnologie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Bachelor
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
90
60
30
ausgewiesene Wert.
Regelmäßige, aktive Teilnahme an der Lehrveranstaltung wird erwartet. Eine Klausur (90 min, benotet) dient der
Überprüfung der in der Vorlesung erlernten theoretischen Kompetenzen. Die Studierenden zeigen in der Klausur,
ob sie in der Lage sind, das erlernte Wissen zu strukturieren und die wesentlichen Aspekte darzustellen. Sie sollen
die erarbeiteten Informationen beschreiben, interpretieren, sinnvoll kombinieren und auf ähnliche Sachverhalte
übertragen können. Die Klausurnote bildet die Gesamtnote des Moduls.
Prüfungsart:
schriftlich
90
Folgesemester
Zur erfolgreichen Teilnahme am Modul wird das Basiswissen Zellbiologie aus dem Grundstudium BSc Biologie
vorausgesetzt.
Inhalt:
Die Vorlesung dient als theoretische Einführung in die Grundlagen der Zellkulturtechnik. Neben einer allgemeinen
Einführung wird hier ein breiter Bereich von Zellkulturtechniken praxisnah vorgestellt. Im Vordergrund stehen
unterschiedliche Formen der Kultur von Säugerzellen gepaart mit einer Auswahl an Applikationen, die am Bedarf
von Studierenden der Biologie orientiert ist.
Grundlagen Zellkulturlabor, Steriltechnik, Kulturmedien, Routinemethoden
Zellkulturen Primärkultur, Permanentlinien, Säugerzellkultur (Bsp. Stammzellen), Kultur von Pflanzen-, Verte- und
Invertebratenzellen
Applikationen Modellsysteme in der Forschung, Toxizitätstests, Tissue engineering, zellbasierte Produktion,
Virologie, Gentherapie, Drug discovery mit HTS/HCS etc.
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an der Modulveranstaltung sind die Studierenden in der Lage, aus dem Spektrum der
Zellkulturtechniken geeignete Methoden zur Bearbeitung konkreter wissenschaftlicher Fragestellungen
auszuwählen und diese, zumindest in Theorie gezielt einzusetzen. Zudem sollen Sie eine fundierte Befähigung
darin erlangen, den Einfluss einzelner Parameter der Zellkultur auf das Versuchsergebnis einzuschätzen.
Modulhandbuch
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Lehrtechnik: Vorlesung;
Lernaktivitäten: Studium von Vorlesungsskript, -mitschrift und Literatur.
Medienform:
Präsentationen mittels Powerpoint (Downloadmöglichkeit für Vorlesungsmaterial); Tafelarbeit
Literatur:
Es ist kein Lehrbuch verfügbar, das alle Inhalte dieses Moduls abdeckt. Das Präsentationsmaterial wird durch
spezifische Literaturhinweise für die einzelnen Themen ergänzt. Als Grundlagen werden empfohlen:
Animal Cell Culture -a practical approach (R.I. Freshney), IRL press
Kultur tierischer Zellen (S.J. Morgan, D.C. Darling), Labor im Fokus, Spektrum Verlag
Animal cell culture methods (J.P. Mather, D. Barnes)
Zell-und Gewebekultur (T. Lindl), Spektrum Verlag
Zellkulturtechnologie: Grundlagen und praktische Anwendungen [WZ2017] (Vorlesung, 2 SWS)
Kramer K, Küster B
Modulhandbuch
Seite 57 von 209
Modulbeschreibung
WZ2019: Metabolic Engineering und Naturstoffproduktion
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Bachelor/Master
Deutsch
Einsemestrig
Sommersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
90
62
28
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
schriftlich
90
Folgesemester
Grundkenntnisse der Enzymkatalyse, der Reaktivität funktioneller chemischer Gruppen, der Chiralität, zur Struktur
und Biosynthese von Naturstoffen.
Inhalt:
Industrielle Anwendungen von Hydrolasen, Oxidoreduktasen, Transferasen, Isomerasen, Lyasen und Ligasen in
der Biokatalyse; Recyclisierung von Cofaktoren; Immobilisierungstechniken; Biotechnologische Produktion von
Citronensäure, Glucono-delta-lacton, Glutaminsäure, u.a.
Lernergebnisse:
Kenntnisse über enzymatisch katalysierbare Reaktionen und deren mögliche Anwendungen in der Biokatalyse;
Beispielhafte Kenntnisse zur Manipulation bakterieller und pflanzlicher Stoffwechselwege;
Problemlösungsvermögung bei der Entwicklung eines biotechnologischen Verfahrens
Vorlesung
Medienform:
Präsentation und Skript
Modulhandbuch
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Literatur:
K. Faber, Biotransformations in Organic Chemistry, Springer, 6. Auflage, Springer Verlag
Wilfried Schwab, Wilfried.Schwab@tum.e
Metabolic Engineering und Naturstoffproduktion (Vorlesung, 2 SWS)
Schwab W
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ2045: Bioinformatik für Biowissenschaften II
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Bachelor
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
4
54
24
30
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
schriftlich
60
Folgesemester
Teilnahme an Vorlesung und Übung Einführung in die Bioinformatik I
Inhalt:
Einführung in grundlegende Konzepte und Methoden in der Bioinformatik (Fortsetzung der Einführung in die
Bioinformatik I). Themenschwerpunkte sind u.a.:
- Genvorhersagen
- Grundlagen der Proteinstrukturen
- Grundlagen von Phylogenie und molekularer Evolution
- Grundlagen der Genregulation und der entsprechenden Algorithmen
- Grundlagen metabolischer Netzwerke und ihrer Analyse
- Eigenschaften biologischer Netzwerke
- Einführung Datenbanken und Datenintegration in den Biowissenschaften
Lernergebnisse:
Grundlegende Kenntnis wichtiger Konzepte und Methoden der Bioinformatik
Fähigkeit Ergebnisse ausgewählter bioinformatischer Werkzeuge zu bewerten
Vortrag
Medienform:
Modulhandbuch
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Literatur:
Understanding Bioinformatics, Marketa Zvelebil, Jeremy O. Baum, Garland. 2007;
Bioinformatics, David Mount, 2nd ed, 2004, Cold Spring Harbour Laboratory Press;
Bioinformatik Eine Einführung, Arthur M. Lesk, Spektrum Akademischer Verlag (2002)
,
Übung zur Vorlesung Bioinformatik f. Biowissenschaften II (Übung, 2 SWS)
Frischmann D
Bioinformatik f. Biowissenschaften II (Vorlesung, 2 SWS)
Frischmann D
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ2066: Weiterführende Bioinformatik
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
6
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
Vortrag:
Hausarbeit:
Inhalt:
Lernergebnisse:
Medienform:
Literatur:
,
Modulhandbuch
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Weiterführende Bioinformatik (Genomorientiert): Vorlesung mit Projekt-Übung (Vorlesung, 5 SWS)
Mewes H
Modulhandbuch
Seite 63 von 209
Modulbeschreibung
WZ2130: Molekular-Physiologisches Praktikum
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
3
75
30
45
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
mündlich
30
Folgesemester
keine
Inhalt:
Das Praktikum gliedert sich in mehrere experimentelle als auch theoretische Teilbereiche:
Experimenteller Teil:
" Zellisolierung: Leukozytenisolierung aus Rinderblut
" Zellkultur: Kultivierung tierischer Zellen aus Blut
" Extraktion von Nukleinsäuren: RNA-Isolierung und Nanodrop
" Qualitätskontrolle der extrahierten RNA: Bioanalyzer 2100
" Expressionsanalyse: quantitative real-time RT-PCR
Theoretischer Teil:
" Bioinformatik:
Datenbankrecherche (NIH, EMBL, HUSAR, Medline, etc.)
Sequenzanalyse & Primer-Design (HUSAR, DNAsis)
Berechnung von Expressionsunterschieden & Biostatistik
" Literaturrecherche: Medline, Elektronische Zeitschriftenbibliothek, etc.
" Journal Club der Studierenden
Modulhandbuch
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Lernergebnisse:
Das molekular-physiologische Praktikum soll den Studierenden einen ersten Einblick in die experimentelle
zellbiologische und molekularbiologische Laborpraxis gewähren, als Grundlage der Erfassung von physiologischen
Regelvorgängen, beispielsweise im Bereich der Immunologie. Begleitend zum experimentellen Teil werden
Detailbereiche aktueller methodischer als auch relevanter physiologischer Forschung im Rahmen eines Journal
Clubs von den Teilnehmern in Kurzvorträgen behandelt.
Labor
Vor allem soll der Kurs eine praktische Fingerübung für Studierende der Biowissenschaften sein, an neue
molekularbiologische Arbeitstechniken heranführen und eine praktische Einführung in die Nutzung von
Datenbanken und Berechnungssoftware sein.
Medienform:
Literatur:
Skript
Michael Pfaffl, michael.pfaffl@mytum.de
Molekularphysiologisches Praktikum (Praktikum, 3 SWS)
Pfaffl M, Riedmaier-Sprenzel I
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ2132: Mikroskopisches Praktikum zur Funktionellen Histologie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
Vortrag:
Hausarbeit:
Inhalt:
Lernergebnisse:
Medienform:
Literatur:
,
Modulhandbuch
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Mikroskopisches Praktikum zur Funktionellen Histologie [WZ2132] (Praktikum, 3 SWS)
Ulbrich S, Pfaffl M
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ2138: Kompaktkurs Membranen und Membranproteine
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Sommersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
90
50
40
ausgewiesene Wert.
Die Studierenden legen nach Abschluss des Moduls ein Protokoll vor, welches bewertet wird. Ausserdem hält
jede(r) Studierende einen bewerteten Vortrag über 10 min.
Prüfungsart:
10 min mündlich +
Protokoll
Vortrag:
Hausarbeit:
Ja
Ja
Besuch der Vorlesung "Proteintechnologie: Membranen und Membranproteine [WZ0443]"
Inhalt:
Reinigung eines Membranproteins (Bacteriorhodopsin); Rekonstitution von Bacteriorhodopsin in Membranen;
Aktivitätstest von Bacteriorhodopsin
Lernergebnisse:
Nach diesem Praktikum sind die Studierenden in der Lage ein Membranprotein aus seiner natürlichen Umgebung
zu extrahieren und in synthetischen Membranen zu rekonstituieren. Darüberhinaus haben sie bei der Arbeit mit
Forschungsgeräten Kenntnisse zur Durchführung biophysikalischer Messverfahren zur Membranfusion erworben.
Lehrtechnik: Erarbeiten von konkreten Handlungsanweisungen aus wissenschaftlicher Primärliteratur;
Anleitungsgespräche, Experimente, Partnerarbeit, Ergebnisbesprechungen.
Lernaktivitäten: Üben von labortechnischen Fertigkeiten und Arbeitstechniken; Anfertigung eines Protokolls.
Medienform:
wissenschaftliche Fachartikel, Lehrbücher für Fortgeschrittene
Literatur:
wissenschaftliche Primärliteratur
Modulhandbuch
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Kompaktkurs Membranen und Membranproteine (Übung, 3 SWS)
Langosch D [L], Gütlich M
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ2172: Forschungspraktikum Funktionelle Proteomanalyse
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
10
300
60
240
ausgewiesene Wert.
Kontinuierliche, aktive Teilnahme am Forschungspraktikum ist verpflichtend. Primär wird die Aktivität, Produktivität,
Kreativität und Eigenständigkeit jedes Studierenden bewertet. Weiterhin zeigen die Studierenden anhand eines
zusammenfassenden Protokolls und 1-2 Präsentationen, dass Sie in der Lage sind, die wesentlichen Aspekte der
Versuche strukturiert und reflektiert darzustellen.
Prüfungsart:
immanenter
Prüfungscharakter
Praktikumsbericht
Vortrag:
Ja
BSc Abschluss ist erforderlich
Inhalt:
Forschungspraktikum mit wechselnden, aktuellen Themen aus dem Bereich des LS fuer Proteomik und
Bioanalytik.
Typische Bereiche umfassen:
a) Proteinkartierung von Zelllinien und Geweben
b) Protein-Wirkstoff-Interaktionen
c) Analyse post-translationaler Modifikationen
Methodisch:
Zellkulturtechnologie, proteinbiochemische Methoden, Massenspektrometrie, Bioinformatik
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an der Modulveranstaltung sind die Studierenden in der Lage, experimentelle Lösungen für
definierte, biologische und technische Fragestellungen zu schaffen. Die Studierenden erlangen hierbei ein
vertieftes Verständnis, wie Ergebnisse vor dem experimentellen Hintergrund zu werten sind. Neben methodischen
Fähigkeiten werden selbständiges agieren und eigenverantwortliche Entscheidung gefördert.
Modulhandbuch
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Lehrtechnik: Praktikum; Lernaktivitäten: Bearbeiten von proteomischen Fragestellungen und deren
Lösungsfindung; Üben von labortechnischen Fertigkeiten; Konstruktives diskutieren und kritisieren eigener
Experimente; Lehrmethode: Fragend-entwickelnde Methode
Medienform:
Experimentelle Protokolle
Literatur:
Einführende Literatur wird zum jeweiligen Praktikumsthema als Ausgangspunkt für eigene Recherchen der
aktuellsten Literatur zur Verfügung gestellt.
Bernhard Küster, kuster@mytum.de
Funktionelle Proteomanalyse (Praktikum, 10 SWS)
Küster B
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ2207: Seminar Aktuelle Probleme der Genetik
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Englisch
Einsemestrig
Sommersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
2
60
30
30
ausgewiesene Wert.
Die Studierenden bearbeiten einen aktuellen Forschungsaspekt der( Pflanzen)genetik. Zunächst werden
gemeinsame Grundlagen z. B. durch Bearbeitung eines Reviews über das Themengebiet erarbeitet. Danach
werden Teilaspekte durch Referate über aktuelle Manuskripte vorgestellt. Die Veranstaltung findet als
Blockseminar mit mehreren Terminen statt (nach Absprache).
Prüfungsart:
mündlich
45 Minuten
Hausarbeit:
Ja
Grundlagen der Genetik, Biochemie, Chemie, Pflanzenwissenschaften.
Inhalt:
Inhaltliche Auseinandersetzung mit aktuellen Fragestellungen und Techniken der molekularen Genetik anhand
aktueller Veröffentlichungen.
.
Lernergebnisse:
Die Studierenden werden vertraut mit eigenständiger wissenschaftlichen Literaturrecherche. Sie erlernen die
Präsentation von wissenschaftlichen Daten und werden geübt in sachbezogener Diskussion. Die Studierenden
lernen freien Vortrag in englischer Sprache.
Seminar.
Medienform:
Literaturrecherche, Internetrecherche, Powerpoint.
Modulhandbuch
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Literatur:
Es gibt keine spezielle Literatur.
Alfons Gierl, Gierl@wzw.tum.de
Seminar Aktuelle Probleme der Genetik (Seminar, 2 SWS)
Gierl A, Frey M, Torres Ruiz R, Glawischnig E, Römisch-Margl L, Kieser A, Graw J, Hrabé de Angelis M, Wurst W
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ2221: Methods in Biotechnology (Seminar)
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
2
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
Vortrag:
Hausarbeit:
Inhalt:
Lernergebnisse:
Medienform:
Literatur:
,
Modulhandbuch
Seite 74 von 209
Methods in Biotechnology (Seminar, 2 SWS)
Schnieke A
Modulhandbuch
Seite 75 von 209
Modulbeschreibung
WZ2226: Projektseminar Membranproteine
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Sommersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
90
75
15
ausgewiesene Wert.
Die studierenden arbeiten selbstständig als Hausabeit einen "Forschungsantrag" aus. Dieser wird den anderen
Seminarteilnehmern in Form einer Präsentation präsentiert. Sowohl die schriftliche Ausarbeitung, als auch die
Präsentation werden bewertet.
Prüfungsart:
bewertete Hausarbeit
Gespräch:
Hausarbeit:
Ja
Ja
Hauptfach Biochemieoder Proteinbiochemie im Masterstudium
Inhalt:
In diesem Modul wird von den Studierenden durch Weitgehend eigenständiges Ausarbeiten ein
"Forschungsantrag" für ein fiktives Foschungsprojekt erstellt. Hierzu führen die Studierenden eigenen
Literaturrecherchen zum Thema durch und entwickeln eine Forschungsstrategie. Dies geschieht in enger
Rückkopplung mit dem Dozenten. Das Ergebnis wird in Form einer Präsentationden anderen Seminarteilnehmern
präsentiert.
Lernergebnisse:
Nach diesem modul sind die Studierenden in der Lage ein eigenes kleines Forschungsprojekt schriftlich zu
umreißen und einer Forschungsförderungsorganisation zur Begutachtung vorzulegen.
Lehrtechnik: Seminare, Projekte
Erarbeiten von Zusammenfassungen aus wissenschaftlicher Primärliteratur; Anleitungsgespräche.
Lernaktivitäten: Relevante Materialrecherche, Studium von Literatur, Zusammenfassen von Dokumenten,
Produktion von Berichten / Hausarbeiten, Vorbereiten und Durchführen von Präsentationen, Konstruktives
Kritisieren eigener Arbeit, Konstruktives Kritisieren der Arbeit anderer, Kritik produktiv umsetzen, Einhalten von
Fristen
Lehrmethoden: Präsentation, Vortrag, Einzelarbeit, Referate
Modulhandbuch
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Medienform:
wissenschaftliche Fachartikel
Literatur:
Projektseminar Membranproteine (Seminar, 3 SWS)
Langosch D [L], Langosch D
Modulhandbuch
Seite 77 von 209
Modulbeschreibung
WZ22270: Computer-Aided Drug and Protein Design (optional incl. Seminar)
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
4
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
Vortrag:
Hausarbeit:
Inhalt:
Lernergebnisse:
Medienform:
Literatur:
,
Modulhandbuch
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Computer-aided Drug und Protein Design (Vorlesung, 2 SWS)
Antes I
Computer-aided Drug Design und Proteinmodellierung (Seminar, 4 SWS)
Antes I
Modulhandbuch
Seite 79 von 209
Modulbeschreibung
WZ2230: Forschungspraktikum Protein Engineering
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
10
260
110
150
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
Folgesemester
keine
Inhalt:
Praktische Einführung in das Protein-Engineering unter Anleitung durch Mitarbeit an einem aktuellen
Forschungsprojekt in einem Labor am Lehrstuhl für Biologische Chemie.
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an diesem Forschungspraktikum ist der Studierende in der Lage, Methoden und Konzepte
des Protein-Engineerings anhand eines aktuellen Forschungsprojekts zu verstehen und anzuwenden.
Labor
Medienform:
Literatur:
Arne Skerra, skerra@tum.de
Modulhandbuch
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Forschungspraktikum Protein-Engineering (Praktikum, 20 SWS)
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ2256: Forschungspraktikum Molekulare Physiologie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch/Englisch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
10
300
100
200
ausgewiesene Wert.
Die Gesamtnote des Moduls wird aus zwei Einzelbewertungen errechnet. Hierzu zählen: (1) Die Studienleistung
während des Praktikumszeitraums mit Fokus auf den praktischen Übungen im molekularbiologischen-, und physiologischen Labor, Verständniskontrolle durch individuelle Gespräche. (2) Eine schriftliche Zusammenfassung
am Ende des Praktikums über die dargelegten theoretischen Inhalte und Ergebnisse.
Prüfungsart:
Folgesemester
Hausaufgabe:
30 mündlicher Vortrag +
praktisch (SL),
Gewichtung 1/2
Gespräch:
Vortrag:
Ja
Ja
Ja
Grundkenntnisse klassische Physiologie und expressionelle Regulation
Inhalt:
Das Forschungspraktikum Molekulare Physiologie soll den Studierenden einen detaillierten Einblick in die
experimentelle zellbiologische und molekularbiologische Laborpraxis am Lehrstuhl für Physiologie gewähren, als
Grundlage der Erfassung von physiologischen Regelvorgängen, wie beispielsweise im Bereich der molekuaren
Physiologie auf den Gebieten der Epigenetik, Reproduktion, Immunologie oder Nutrigenomics.
Lernergebnisse:
Verständnis für die Allgegenwärtigkeit der physiologischen Regulation auf der molekularen Ebene. Kritisches
Hinterfragen von Primärliteratur. Transfer von selbsterarbeiteter Literatur auf angesprochene Themen.
Lehrtechnik: Praktikum. Lehrmethode: Vorträge, Gruppenarbeit, Referate. Lernaktivitäten: Relevante
Literaturrecherche; Studium von Literatur; Üben von labortechnischen Fertigkeiten; Vorbereiten und Durchführen
von Präsentationen
Medienform:
Flipchart, Tafelarbeit, PowerPoint, Folien
Modulhandbuch
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Literatur:
Freitext
Michael Pfaffl, michael.pfaffl@mytum.de
Forschungspraktikum Molekulare Physiologie, MolBiotechM (Praktikum, 2 SWS)
Ulbrich S, Pfaffl M, Kliem H, Viturro E, Riedmaier-Sprenzel I
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ2297: Praktikum Protein- und Wirkstoffmodellierung
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
3
87
42
45
ausgewiesene Wert.
Die praktischen Leistungen werden anhand von Protokollen überprüft.
Prüfungsart:
immanenter
Prüfungscharakter
keine
Inhalt:
Praktische Einführung in Modellierungs-Software aus den Bereichen:
Protein-Ligand-Docking
Molekülsimulation
Proteinengineering
Lernergebnisse:
Die Studenten sind mit der Handhabung und dem Anwendungsbereich verschiedener Programme aus den
Bereichen Protein-Ligand Docking, Molekülsimulation und Proteinengineering vertraut und können diese
eigenständig für entsprechende wissenschaftliche Fragestellungen anwenden.
Praktikum, Lernaktivitäten: Erlernen von computergestützten und theoretischen Methoden in der Biologie;
Eigenständiges Arbeiten am Computer; Erlernen forschungsrelevanter Fertigkeiten.
Medienform:
Powerpoint Presentation, schriftliche Praktikumsanleitungen
Literatur:
Aufgrund der hohen Publikations- und Forschungstätigkeit auf diesem Gebiet findet eine semesterweise
Aktualisierung der Literaturliste statt. Diese wird am Anfang des Semesters an die Studenten verteilt.
Modulhandbuch
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Iris Antes, antes@tum.de
Protein- und Wirkstoffmodellierung (Praktikum, 3 SWS)
Antes I
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ2327: Forschungspraktikum II Biochemische Genetik
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch/Englisch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
10
300
130
170
ausgewiesene Wert.
6-wöchiges Blockpraktikum nach Absprache. Regelmäßige Teilnahme im Umfang von rund 6 Stunden täglich.
Vorbereitung, Durchführung, Interpretation und Diskussion von Versuchen. Teilnahme am Kolloquium
Pflanzenwissenschaften. Die Studierenden planen und führen ihre Versuche selbstständig durch. Sie betreiben
eigenständig Literaturrecherche und machen eine wissenschaftliche Auswertung der Ergebnisse.
Voraussetzungen sind fundiertes Basiswissen in Genetik, Biochemie und molekularer Biologie und ausreichende
Sicherheit in Basistechniken des molekularen Labors. Die Themen der Arbeiten kommen aus den aktuellen
Forschungsgebieten der Dozenten (nach Absprache) Die Benotung erfolgt auf Grund der Qualität der Laborarbeit
und des Protokolls das in Form einer wissenschaftlichen Arbeit geschrieben wird.
Prüfungsart:
schriftlich
Protokoll
Hausarbeit:
Ja
Grundlagen der Genetik, Biochemie, Chemie, Pflanzenwissenschaften; sicheres Arbeiten im
molekularbiologischen Labor
Inhalt:
Bearbeitung eines Forschungsprojekts aus dem Themenbereich eines der Dozenten. Fokus auf Metabolismus,
Biochemie und Abwehrmechanismen. Techniken: Molekulare Klonierung, molekulare Analyse von Mutanten,
Reportergeneinsatz (G/Y/CFP, His-tag, Strep-tag, GUS, etc.) in vitro und in vivo. Proteinreinigung, HPLC, GCMS, Metabolomics, Transcriptomics, Fluoreszenzmikroskopie, Confocal-Laser- Scanning-Mikroskopie,
pflanzliche Gewebekultur. Auch zur Vorbereitung einer Masterarbeit
.
Lernergebnisse:
Die Studierenden üben eigenständiges wissenschaftliches Arbeiten, praktizieren aktuelle molekularbiologische und
biochemische Techniken, üben Literaturrecherche, die Einbindung relevanter Literatur in ein Forschungsprojekt
und wissenschaftliche Ausarbeitung.
Modulhandbuch
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Praktikum, Projektarbeit.
Medienform:
Laborarbeit, Literaturrecherche,Internetrecherche
Literatur:
Es gibt kein speziell auf das Praktikum ausgelegtes Lehrbuch.
Genetik Forschungspraktikum II Biochemische Genetik (Praktikum, 10 SWS)
Frey M, Gierl A, Römisch-Margl L, Glawischnig E, Kieser A
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ2349: Praktikum Epigenetik
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch/Englisch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
3
90
50
40
ausgewiesene Wert.
Die Gesamtnote des Moduls wird aus drei gleichgewichteten Einzelbewertungen errechnet. Hierzu zählen:
(1)
Die Studienleistung während des Praktikumszeitraums, Verständniskontrolle durch individuelle Gespräche. (2)
Eine schriftliche Prüfung über dargelegte theoretische Inhalte. (3) Die Bewertung eines Vortrags über ein durch die
Studierenden selbst erabeitetes Thema aus der Primärliteratur. Hierbei richtet sich ein besonderer Augenmerk auf
die Verknüpfung des Themas zu den im Praktikum dargelegten Inhalten (Transferleistung).
Prüfungsart:
immanenter
Prüfungscharakter
Folgesemester
Hausaufgabe:
30 mündlich + 60
schriftlich + praktisch
(SL), Gewichtung je 1/3
Gespräch:
Vortrag:
Ja
Ja
Ja
Grundkenntnisse klassische Genetik und expressionelle Regulation
Inhalt:
Grundkenntnisse epigenetischer Regulationsmöglichkeiten. Epigenetik als Grundlage physiologischer
Vorgänge/Phänomene. DNA Methylierungsanalyse von Grund auf: DNA Extraktion aus Gewebe, globale DNA
Methylierungsanalyse mit LUMA, Bisulfit-Konvertierung, High-Resolution-Melt Analyse, Nukleotidspezifische
Methylierungsanalyse mittels Pyrosequencing.
Lernergebnisse:
Verständnis für die Allgegenwärtigkeit epigenetischer Regulation. Aufmerksamkeit für mögliche Beeinflussungen
durch Umweltfaktoren welche im späteren Leben schwerwiegende Konsequenzen haben können. Unterscheidung
der Wichtigkeit von globalen und lokalen Methylierungsgraden. Kritisches Hinterfragen von ähnlichen Methoden
mit unterschiedlicher Aussagekraft. Kritisches Hinterfragen von Primärliteratur. Transfer von selbsterarbeiteter
Literatur auf angesprochene Themen.
Lehrtechnik: Praktikum. Lehrmethode: Vorträge, Gruppenarbeit, Referate. Lernaktivitäten: Relevante
Literaturrecherche; Studium von Literatur; Üben von labortechnischen Fertigkeiten; Vorbereiten und Durchführen
von Präsentationen
Modulhandbuch
Seite 88 von 209
Medienform:
Flipchart, Tafelarbeit, PowerPoint, Folien
Literatur:
Freitext
Rainer Fürst, rainer.fuerst@mytum.de
Praktikum Epigenetik (Praktikum, 3 SWS)
Fürst R, Ulbrich S, Pfaffl M
Modulhandbuch
Seite 89 von 209
Modulbeschreibung
WZ2371: Molekulare Pflanzenphysiologie 2
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
150
90
60
ausgewiesene Wert.
der Überprüfung der in den Vorlesungen erlernten theoretischen Kompetenzen. Die Studierenden zeigen in der
Sachverhalte übertragen können. Die Klausurnote bildet die Gesamtnote des Moduls.
Prüfungsart:
schriftlich
60 schriftlich
Folgesemester
Hausaufgabe:
Vortrag:
Hausarbeit:
Ja
Ja
Ja
Zum Verständnis der vermittelten Inhalte ist ein solides Wissen und praktische Erfahrung in der Molekularbiologie,
Biochemie und Pflanzenphysiologie zwingend erforderlich. Ein Besuch des Moduls Molekulare Pflanzenphysiologie
1 ist nicht notwendig.
Inhalt:
In diesem Modus stehen die molekularen Mechanismen der Wechselwirkungen zwischen Pflanze und abiotischen
Faktoren im Vordergrund. Abiotischer Stress ist der bedeutendste Faktor, der das Pflanzenwachstum und die
Nahrungsproduktion limitiert. Als abiotische Faktoren werden Trockenstress, Salzstress, Sauerstoffmangel,
Strahlung (UV-Strahlung, Starklicht), Schwermetalle und Xenobiotika behandelt. Vorgestellt werden induzierte
Veränderungen im Metabolismus und beteiligte Signaltransduktionswege sowie Vermeidungs- und
Anpassungsstrategien. Besonderes Augenmerk wird dabei auf einzelne stresstolerante Arten oder Ökotypen mit
einer Toleranz gegen z.B. Salz oder Schwermetalle und ihre besonders effektiven Anpassungsstrategien gerichtet.
Modulhandbuch
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Lernergebnisse:
Das Modul führt die Studierenden an die aktuelle Forschung in der Pflanzenphysiologie heran. Im Vordergrund
steht die Vertiefung der Kenntnisse der Pflanzenphysiologie und die Vermittllung der methodischen und
experimentellen Ansätze der aktuellen Forschung. Mit der Teilnahme am Modul erwerben die Studierenden
vertiefte Kenntnisse über:
" Analytik und experimentelle Ansätze
" die Bedeutung abiotischer Stressfaktoren für das Pflanzenwachstum
" molekulare Mechanismen der Transduktion des Stresssignals
" Anpassungsstrategien
" Darstellung und Interpretation wissenschaftlicher Daten
" Sichtung und Präsentation wissenschaftlicher Literatur
Das vermittelte Wissen kann in verschiedenen Bereichen sowohl der grundlagen- als auch
anwendungsorientierten Pflanzenwissenschaften eingesetzt werden Die Teilnehmer erwerben die Kompetenz, die
Belastbarkeit experimenteller Ansätze zu beurteilen und selbst Ansätze der Beforschung zu entwickeln. Sie sind in
der Lage, die Ansprüche zu definieren, die Pflanzen für eine erhöhte Toleranz gegenüber abiotischem Streß
erfüllen müßten und können daraus erfolgversprechende Strategien zur Generierung bzw. Evaluierung
stresstoleranter Pflanzen entwickeln.
Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Vorlesung und Seminar
Lernaktivitäten: Studium von Vorlesungsskript, -mitschrift, Interaktion Lehrender - Studierende, Präsentation
durch die Studierenden
Medienform:
Präsentationen mittels Powerpoint, Tafelanschrieb,
Literatur:
Ernst-Detlef Schulze, Erwin Beck, Klaus Müller-Hohenstein: Pflanzenökologie. Spektrum Akademischer Verlag
Peter Schopfer und Axel Brennicke: Pflanzenphysiologie. Spektrum Akademischer Verlag.
Lincoln Taiz and Eduardo Zeiger: Plant Physiology. Spektrum Akademischer Verlag
Park S. Nobel: Physicochemical and Environmental Plant Physiology. Academic Press
Bob Buchanan, Wilhelm Gruissem and Russell L. Jones: Biochemistry & Molecular Biology of Plants. John Wiley &
Sons
Fachartikel aus wissenschaftlichen Zeitschriften. Vertiefende Literatur zu einzelnen Arbeitsthemen werden von den
Studierenden referiert.
Erwin Grill, Erwin.Grill@wzw.tum.de
Seminar: Molekulare Pflanzenphysiologie II (Seminar, 2 SWS)
Grill E, Christmann A
Molekulare Pflanzenphysiologie II (Vorlesung, 2 SWS)
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ2372: Mikroorganismen als Krankheitserreger
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
150
105
45
ausgewiesene Wert.
Die regelmäßige, aktive Teilnahme an den Lehrveranstaltungen wird erwartet. Eine Klausur (90 min, benotet) dient
Prüfungsart:
schriftlich
90
Folgesemester
Modul Mikrobiologie sowie Molekulare Genetik.
Inhalt:
Biologie humanpathogener Mikroorganismen: Übersicht über Menschen und Mikroben; Verhältnis zwischen
Kommensalen und Pathogenen; Koch'sche Postulate; Übersicht über bakterielle Pathogenität und Virulenz;
Abwehrsysteme des Wirtes (v.a. verschiedene Ebenen des innaten Immunsystems); Abwehrsysteme des
Pathogens (Immunevasion, Adhesion an die Wirtszelle, Invasion und intrazelluläres Wachstum, bakterielle Toxine);
Übersicht über pathogene Hefen und Pilze.
Erreger von Pflanzenkrankheiten: Übersicht über Pflanzen und Krankheiterreger, Übersicht über Pathogenität und
Virulenz bei Pflanzenpathogenen; Abwehrsysteme des Wirtes (v.a. verschiedene Ausprägungen der Resistenz,
Gen-für-Gen Hypothese, systemische Resistenz); Abwehrsysteme von Pflanzenpathogenen; Rezeptorsysteme
und innate Immunität der Pflanze; Vergleich Pflanze-Säugetier; Gentechnik und Pflanzenschutz
Diagnostik und Epidemiologie: Taxonomie von pathogenen Bakterien; Artbegriffe; Identifizierung (physiologische,
biochemische, biophysikalische und genetische Verfahren); Diagnostische Verfahren (Anreicherungen,
Schnellverfahren, automatisierte Verfahren); Infektionsepidemiologie (Bedeutung von Infektionen in Deutschland,
Erhebung von epidemiologischer Daten, Methoden zur Verfolgung von Kontaminationsrouten).
Modulhandbuch
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Lernergebnisse:
Den Studierenden sollen sich in der Einführungsvorlesung sichere Grundkenntnisse auf hinsichtlich
Formenkenntnis und Taxonomie von pathogenen Bakterien, Interaktion von bakteriellen Krankheitserregern mit
humanen und pflanzlichen Wirten, diagnostischer Verfahren in mikrobiologischen Labors und epidemiologischer
Anwendungen aneignen.
Insgesamt wird erstens die Kompetenz vermittelt, die Bedeutung von Krankheitserregern im
lebensmittelbiotechnologischen, medizinischen und phytopathologischen Bereich einzuschätzen und kritisch zu
beurteilen. Die Studierenden erwerben zweitens das biologisch-theoretische Wissen für die Absolvierung eines
Forschungspraktikums im Pathogenlabor.
Lehrtechniken: Vorlesung
Lernaktivitäten: Auswendiglernen; Lösen von Übungsaufgaben, Studium von Literatur
Medienform:
Tafelarbeit, Powerpoint Präsentationen, Filme, Vorlesungsfolien, Übungsfragensammlung
Literatur:
Salyers AA, Whitt DD (2011) Bacterial pathogenesis: A molecular approach. ASM Press, Washington, 3. Auflage.
Hof H, Dörries R (2009) Medizinische Mikrobiologie. 4. Auflage.
Buchanan et al (2002) Responses to Plant pathogens. Kapitel 11 in: Biochemistry & Molecular Biology of Plants,
Buchanan B, Gruissem W, Jones R, Verlag ASPP
Siegfried Scherer, Siegfried.Scherer@wzw.tum.de
Einführung in Biologie pflanzenpathogener Mikroorganismen (Vorlesung, 1 SWS)
Durner J
Einführung in die Biologie humanpathogener Bakterien (Vorlesung, 2 SWS)
Scherer S
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ2373: Biologie humanpathogener Bakterien
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
150
105
45
ausgewiesene Wert.
Sachverhalte übertragen können. Die Klausurnote bildet 80% der Gesamtnote des Moduls. Im Seminar erhält
jede/r Studierende ein Thema sowie Einstiegsliteratur. Durch eigene Literaturrecherche sollen weitere relevante
Veröffentlichungen gesucht und verarbeitet werden. Das Thema wird in einem 15 min ppt Vortrag im Plenum
vorgestellt und von der Gruppe diskutiert. Vortrag (Theoriewissen und didaktische Aspekte) sowie Kompetenz in
der Diskussion werden mit einer Note bewertet. Diese Note bildet 20% der Gesamtnote des Moduls.
Prüfungsart:
60 schriftlich, 20
mündlich
Folgesemester
Vortrag:
Ja
Modul Mikrobiologie sowie Modul Molekulare Genetik.
Inhalt:
Struktur, Sekretion und biologische Funktion bakterieller Toxine; Vertiefte Besprechung von Virulenzfaktoren und
Biologie wichtiger pathogener Bakterien an konkreten Erregern: Salmonella, Escherichia coli, Yersinia,
Helicobacter pylori, Campylobacter jejuni, Bacillus cereus, Streptococcus pyogenes, Staphylococcus aureus,
Clostridium; Moderne mikrobiologische und molekularbiologischer Methoden, mit denen pathogene Bakterien
untersucht werden.
Modulhandbuch
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Lernergebnisse:
Die Studierenden gewinnen in der Vorlesung einen vertieften Einblick in die Pathogenitätsmechanismen von
ausgewählten Krankheitserregern. In dieser Lehrveranstaltung sollen sich die Studierenden ausserdem die
theoretischen Grundmethoden aneignen, mit welchen pathogene Bakterien experimentell charakterisisert werden.
Begleitend werden die Studierenden die Kompetenz zur Lektüre und dem Verständnis wissenschaftlicher
Originalarbeiten erwerben sowie die Präsentation infektionsbiologischer Daten einüben.
Insgesamt wird die Kompetenz vermittelt, die Bedeutung von Krankheitserregern im
lebensmittelbiotechnologischen und biomedizinischen Bereich einzuschätzen und kritisch zu beurteilen. Die
Studierenden erwerben zudem das biologisch-theoretische Wissen für die Absolvierung eines
Forschungspraktikums im Pathogenlabor.
Lehrtechniken: Vorlesung mit begleitendem Seminar
Lehrmethode: Vortrag, Besprechung von Fallstudien, interaktiver Diskurs mit den Studenten während der
Vorlesung.
Lernaktivitäten: Auswendiglernen; Studium und Zusammenfassung von anspruchsvoller Originalliteratur;
Literaturrecherche; Vorbereiten und Durchführen von Präsentationen; gemeinsame kritische Analyse der
Problemlösungsstrategien in der Übungsgruppe.
Medienform:
Literatur:
Salyers AA, Whitt DD (2011) Bacterial pathogenesis: A molecular approach. ASM Press, Washington, 3. Auflage.
Hof H, Dörries R (2009) Medizinische Mikrobiologie. 4. Auflage.
Fuchs Thilo, Thilo.Fuchs@wzw.tum.de
Bakterielle Krankheitserreger (Seminar, 1 SWS)
Fuchs T
Biologie pathogener Bakterien für Fortgeschrittene (Vorlesung, 2 SWS)
Scherer S, Fuchs T, Neuhaus K, Müller-Herbst S
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ2374: Mikroorganismen in Lebensmitteln
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Zweisemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
5
150
90
60
ausgewiesene Wert.
Die regelmäßige, aktive Teilnahme an der Vorlesung wird erwartet. Präsenzpflicht bei den Übungen. Eine Klausur
(60 min, benotet, Ende WS) dient der Überprüfung der in Vorlesung und Übungen erworbenen Kompetenzen. Die
Studierenden zeigen in der Klausur, ob sie in der Lage sind, das erlernte Wissen zu strukturieren und die
wesentlichen Aspekte darzustellen. Sie sollen die erarbeiteten Informationen beschreiben, interpretieren, sinnvoll
kombinieren und auf ähnliche Sachverhalte übertragen können. Am Ende der Übung werden die vermittelten
Inhalte in einem praktischen Test (ca. 30 min) geprüft. Gesamtnote des Moduls: 80% Note der Klausur, 20% Note
praktischer Test.
Prüfungsart:
schriftlich
90
Folgesemester
Modul Mikrobiologie, Modul Genetik
Inhalt:
Vorlesung: Begleitflora und mikrobieller Lebensmittelverderb; Krankheitserreger in Lebensmitteln; Infektion und
Intoxikation; Infektionsketten; Bedeutung von lebensmittelbedingten Erkrankungen; Beispiele für die Herstellung
fermentierter Lebensmittel; Starterkulturen und Reifungskulturen; Gentechnisch veränderte Mikroorganismen in der
Lebensmittelproduktion (Anwendungsbeispiele, Risiken, Gen-Ethik); Biologische Konservierungsverfahren
(Enzyme, Schutzkulturen); Physikalische Konservierungsverfahren (Trocknung, Temperatur, Bestrahlung, Druck);
Chemische Konservierungsmittel (Wirkungsweisen, Einsatz, Risiken); Mikrobiologische Qualitätssicherung
(Risikoanalyse, HACCP-Konzept, Eigenkontrollen).
Übungen: Diagnostik von Lebensmittelverderbern
(Bakterien, Hefen, Schimmel): klassische und molekularbiologische Detektionssysteme; Identifizierung über
morphologische, physiologische und genetische Merkmale; Vor- und Nachteile unterschiedlicher Techniken,
Leistungsbewertung unterschiedlicher Techniken
Modulhandbuch
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Lernergebnisse:
Beherrschung der allgemeinen Grundlagen der Lebensmittelmikrobiologie. Realistische Einschätzung der
Bedeutung Lebensmittel verderbender Mikroorganismen. Erwerb von Grundwissen über die Bedeutung
lebensmittelbedingter Intoxikationen und Infektionen, Konservierungsverfahren und Qualitätssicherungskonzepte.
Erwerb praktischer Fähigkeiten und theoretischer Erkenntnnisse zur mikrobiologischen Diagnostik im
Lebensmittellabor von Betrieben. Fähigkeit zur Interpretation mikrobiologischer Daten in der interdisziplinären
Zusammenschau mit lebensmitteltechnologischen Prozessen.
Lehrtechniken: Vorlesung, Übungen, Laborlehre
Lehrmethode: Interaktiver Diskurs mit Studenten während Vorlesung und Übung. Experiment.
Lernaktivitäten: Auswendiglernen, durchdenken von Problemstellungen anhand der Vorlesungsfolien und der
Übungsfragesammlung. Üben von labortechnischen Fertigkeiten. Führung eines aussagekräftigen Laborjournals.
Medienform:
Literatur:
Hof H, Dörries R (2009) Medizinische Mikrobiologie. 4. Auflage. Krämer J (2007) Lebensmittel-Mikrobiologie, 5.
Auflage, UTB. Keweloh H (2008) Mikroorganismen in Lebensmitteln: Theorie und Praxis der Lebensmittelhygiene. 2. Auflage, 32,30 EUR. Europa-Lehrmittel
Lebensmittelmikrobiologie und -hygiene (Vorlesung, 2 SWS)
Scherer S, Bauer J
Lebensmittelmikrobiologische Diagnostik, Wenning / Scherer (Übung, 2 SWS)
Scherer S, Wenning M
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ2375: Evolution von Krankheitserregern
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Sommersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
150
105
45
ausgewiesene Wert.
der Überprüfung der in der Vorlesung und in den Übungen erlernten theoretischen Kompetenzen. Die
Studierenden zeigen in der Klausur, ob sie in der Lage sind, das erlernte Wissen zu strukturieren und die
kombinieren und auf ähnliche Sachverhalte übertragen können. Die Klausurnote bildet die Gesamtnote des
Moduls. Für die Übungen erhält jede Studentin/jeder Student als Hausaufgabe die Lektüre einer anspruchsvollen
wissenschaftlichen Originalveröffentlichung zur Evolution von pathogenen Bakterien aus einem anfangs
ausgegebenen Reader, erstellt eine stichpunktartige Kurzfassung mit den wesentlichen Methoden und den
erzielten Hauptergebnissen für die ganze Gruppe und stellt die Arbeit informell in den Übungsstunden vor. Jede
Originalarbeit wird anschließend im gemeinsamen Lehrdiskurs kritisch analysiert. Die Übungen werden nicht
benotet.
Prüfungsart:
schriftlich
60 min
Folgesemester
Hausaufgabe:
Gespräch:
Ja
Ja
Kenntnisse in Allgemeiner Mikrobiologie, Molekularer Bakteriengenetik und Biologie pathogener Bakterien.
Inhalt:
Teil 1, Einführung in die Evolutionsbiologie: Methoden der Evolutionsforschung, Entstehung von Variabilität in
Individuen, Fixierung von Allelen in Populationen.
Teil 2, Bakterielle Genome und Populationsstrukturen: Bakterielle Genome als Ergebnis fixierter Mutationen,
Typisierung bakterieller Populationen, Infraspezifische phylogenetische Populationsanalyse.
Teil 3, Evolution von Antibiotikaresistenzen: Wirkungen von Antibiotika, Ökologie des mikrobiellen Resistoms,
Mechanismen der Antibiotikaresistenz, Evolution von Antibiotikaresistenzen.
Teil 4, Ökologie als angewandte Evolutionsbiologie: Ökologische Rahmenbedingungen, Invertebraten und
Vertebraten als Wirte, Wirtswechsel, Populationsökologie, Virulenzgentransfer und Pathogenitätsinseln, Ökologie
intrazellulärer Pathogene, Reduktive Evolution bei Pathogenen und Symbionten.
Modulhandbuch
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Lernergebnisse:
Die StudentInnen sollen die grundlegenden Methoden der Evolutionsforschung sowie experimentell belegte
Evolutionsprozesse bei Prokaryonten kennenlernen und die Fähigkeit erwerben, ihr Wissen auf
molekularbiologische und epidemiologische Daten (z.B. Antibiotikaresistenzevolution, Populationen von
Pathogenen) anzuwenden. Darüber hinaus soll die Fähigkeit erworben werden, experimentell nicht
reproduzierbare Konzepte aus der vergleichenden Biologie (z.B. Sequenzvarianzen, Existenz von
Pathogenitätsinseln, reduzierte Genome) vor dem Hintergrund der in der Vorlesung erlernten, experimentell
verifizierten Evolutionsprozesse zu interpretieren und Evolutionshypothesen zu formulieren. Diese Fähigkeit wird
durch kritische Lektüre von Fallstudien aus der Literatur und deren Diskussion in der Gruppe eingeübt.
Lehrtechniken: Vorlesung mit begleitender Übung.
Lernaktivitäten: Auswendig lernen; Lösen von Übungsaufgaben; Studium von anspruchsvoller Originalliteratur als
Hausaufgabe; Präsentation in Kurzform in den Übungen; gemeinsame kritische Analyse der in den
Originalarbeiten angewendeten Problemlösungsstrategien in der Gruppe.
Medienform:
Tafelanschrieb, Powerpoint Präsentationen, Vorlesungsfolien, Reader, Übungsfragenkatalog
Literatur:
Leider existiert kein Lehrbuch, die Qellen des unterrichteten Stoffs sind daher auf den Vorlesungsfolien zum
Selbststudium angegeben. Als Unterstützung wird folgendes allgemeines Lehrbuch zur Evolutionsbiologie
empfohlen: Barton et al (2007) Evolution. Cold Spring Haror, New York.
Übungen zur Ökologie und Evolution pathogener Bakterien (Übung, 1 SWS)
Scherer S, Fuchs T
Ökologie und Evolution von pathogenen Bakterien (Vorlesung, 2 SWS)
Scherer S, Fuchs T
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ2376: Forschungspraktikum Pathogene Bakterien
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
10
310
160
150
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
Folgesemester
Bachelorabschluss in Molekularer Biotechnologie oder Biologie.
Inhalt:
Mitarbeit an mikrobiologischen Forschungsprojekten über molekulare Genetik und Ökologie von
Krankheitserregern am Lehrstuhl für Mikrobielle Ökologie
(vgl . http://www.wzw.tum.de/micbio/forschung.php).
Lernergebnisse:
Praktische Einführung in das wissenschaftliche Arbeiten im mikrobiologischen Forschungslabor.
Medienform:
Literatur:
Siegfried Scherer, siegfried.scherer@mytum.de
Modulhandbuch
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Forschungspraktikum pathogene Bakterien (Praktikum, 20 SWS)
Scherer S, Fuchs T, Neuhaus K
Modulhandbuch
Seite 101 von 209
Modulbeschreibung
WZ2381: Pflanzensystembiologie (Vorlesung und Seminar) [PlaSysBiol
(VL+SE)]
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch/Englisch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
5
150
105
45
ausgewiesene Wert.
Regelmäßige aktive Teilnahme an der Lehrveranstaltung wird erwartet. Das Modul setzt sich aus einer Vorlesung
(2 SWS) und einem Seminar (2 SWS) zusammen. Beide Veranstaltungen finden am selben Tag hintereinander
statt. Am Ende der Vorlesung beantworten die Studierenden selbstständig einen Fragenkatalog im Rahmen einer
Hausarbeit für deren Erstellung mehrere Wochen zur Verfügung stehen (siehe Prüfungsart). Die Benotung dieser
Hausarbeit fließt mit 70% in die Gesamtnote ein. Für das Seminar stellt jeder Studierende eine aktuelle
Veröffentlichung aus dem Bereich der Pflanzensystembiologie vor. Im Seminar wird die Qualität der Vortrags
(Votragsstil, Qualität der Abbildungen, Konzeption des Vortrags und Verständnis und Vermittlung des Inhalts)
benotet (30%)
Prüfungsart:
Folgesemester
Hausaufgabe:
Gespräch:
Vortrag:
Hausarbeit:
Ja
Ja
Ja
Ja
Eine grundlegende Kenntnis der Pflanzenbiologie, -morphologie und der Zellbiologie wird empfohlen.
Inhalt:
Im Rahmen der Vorlesung werden vertiefte Kenntnisse zur systembiologischen Auswertung von Genom-,
Proteom- und Metabolomdaten (Überbegriff -omics) vermittelt. Im Vordergrund stehen hierbei Transkriptions- und
Proteinineraktionsnetzwerke sowie die Modellierung von zellbiologischen und entwicklungsbiologischen
Vorgängen.Thematisch orientiert sich die Vorlesung weitestgehend an der Biologie des Pflanzenhormons Auxin,
welches im Hinblick auf systembiologische Studien und Modellierungen momentan am besten verstanden ist und
für das Pflanzenwachstum eine nicht zu vernachässigende Wichtigkeit besitzt. Im begleitenden Seminar
präsentieren Studierende in Vorträgen aktuelle Publikationen aus der pflanzlichen Systembiologie. Das Modul ist
thematisch auf das im gleichen Zeitraum angebotene Modul PlaSysBiol (Übung) abgestimmt und eine gleichzeitige
Teilnahme am Übungs-Modul wird empfohlen, die Module können jedoch auch einzeln belegt werden. Die
Veranstaltung richtet sich an Studierende mit einem biologischen, biochemischen oder biotechnologischen
Hintergrund, und Vorkenntnisse in Mathematik oder Informatik werden nicht vorausgesetzt.
Modulhandbuch
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Lernergebnisse:
Im Anschluss an die Teilnahme an Vorlesung und Seminar besitzen die Studenten detailliertes Wissen zur
Beantwortung von systembiologischen Fragestellungen in der Biologie, speziell aber nicht ausschließlich in der
Pflanzenbiologie. Kenntnisse über die Verwendung spezieller Datenbanken zur Beantwortung systembiologischer
Fragestellungen werden gewonnen worden sein.
Lernaktivitäten: Studium des Vorlesungsskripts, -mitschrift und Literatur. Gegebenenfalls Transfer des Erlernten in
das in der gleichen Periode stattfindende Modul PlaSysBiol (Übung). Erarbeitung eines neuen Themas
(Seminarthema). Vorbereitung und Durchführung von Präsentationen. Konstruktives Kritisieren der eigenen Arbeit
und der Arbeit anderer. Arbeiten unter Zeitdruck. Einhalten von Fristen.
Medienform:
Präsentation mittels Powerpoint. Ein Ausdruck der Folien wird zu Beginn der Vorlesung verteilt.
Literatur:
Plant Physiology (Taiz/Zeiger) 5th edition. Molecular Biology of the Cell (Alberts). Auxin Signaling: From Synthesis
to Systems Biology (Estelle/Weijers/Ljung)
Claus Schwechheimer, claus.schwechheimer@wzw.tum.de
Pflanzensystembiologie VL (Vorlesung, 2 SWS)
Schwechheimer C
Pflanzensystembiologie SE (Seminar, 2 SWS)
Schwechheimer C
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ2382: Übung in Pflanzensystembiologie [PlaSysBiol (UE)]
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch/Englisch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
9
270
150
120
ausgewiesene Wert.
Regelmäßige aktive Teilnahme an der Lehrveranstaltung ist notwendig. Im Anschluss an die dreiwöchige
angeleitete Übung in Techniken der Genexpressionsanalyse (Microarrays, quantitative Real-Time PCR und
Reporteranalyse im intakten Organismus), der Zellbiologie (Konfokale Mikroskopie, Analyse unterschiedlicher
Zellkompartimente mittels GFP-Fusionsproteinen etc.) und der Biochemie (Expression und Aufreinigung
rekombinanter Proteine aus Bakterien, Funktionstest) erstellen die Studierenden selbstständig einen Bericht zu
den Ergebnissen des praktischen Teils. Die drei Praktikumsteile sind inhaltlich aufeinander abgestimmt. Die
übergeordnete Thematik ist die Auxinsignaltransduction und der Auxintransport in der pflanzlichen Entwicklung, so
dass der Transfer des in den unterschiedlichen Teilen gewonnenen Wissens notwendig ist. Ähnliches gilt für den
Wissenstransfer aus dem im gleichen Zeitraum stattfindenden Modul PlaSysBiol (VL+SE) mit Vorlesung und
Seminar und den darin besprochenen Themen. Neben wissenschaftlichen Aspekten wird auch die graphische
Aufarbeitung der Abbildungen nach Publikationsmaßstäben mit Adobe Photoshop und Adobe Illustrator bei der
Erstellung des Protokolls im Vordergrund stehen. Die Studierenden können selbst einen Termin für die Abgabe
des Protokolls bestimmen, so dass ausreichend Zeit für die Erstellung des Berichts verfügbar ist.
Prüfungsart:
schriftlich
Der Bericht kann
mehrere Wochen nach
Beendigung des
Praktikums abgegeben
werden.
Gespräch:
Folgesemester
Ja
Hausarbeit:
Ja
Eine grundlegende Kenntnis der Pflanzenbiologie, -morphologie und der -zellbiologie wird empfohlen.
Grundlegende Techniken beim Arbeiten im molekularbiologischen Labor sollten bekannt sein, wie z.B. sauberes
Pipettieren.
Inhalt:
Die Übung vermittelt eingehende Kenntnisse in Techniken der Genexpressionsanalyse (Auswertung von
Microarraydaten, quantitative Real-Time PCR und Reporteranalyse im intakten Organismus), der Zellbiologie
(Konfokale Mikroskopie, Analyse unterschiedlicher Zellkompartimente mittels GFP-Fusionsproteinen etc.) und der
Biochemie (Expression und Aufreinigung rekombinanter Proteine aus Bakterien, Funktionstest). Die drei
Praktikumsteile sind inhaltlich aufeinander abgestimmt und vermitteln zusammengenommen Kenntnisse zur
Auxinsignaltransduction und Auxintransport in der pflanzlichen Entwicklung.
Modulhandbuch
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Lernergebnisse:
Im Anschluss an die Übung besitzen die Studenten detailliertes praktisches Wissen zur Beantwortung von
systembiologischen Fragestellungen in der Biologie, speziell aber nicht ausschließlich in der Pflanzenbiologie.
Lernaktivitäten: Studium des Praktikumsskripts, -mitschrift und Literatur. Gegebenenfalls Transfer des Erlernten in
das in der gleichen Periode stattfindende Modul PlaSysBiol (VL+SE). Erstellung eines Praktikumsberichts mit
Abbildungen in Publikationsqualität. Arbeiten unter Zeitdruck. Einhalten von Fristen.
Medienform:
Arbeiten mit dem Praktikumsskript. Grundlegende Arbeiten mit einer der beiden Softwares, Adobe Photoshop,
Adobe Illustrator. Unabhängiges Arbeiten am Fluoreszenzmikroskop.
Literatur:
Plant Physiology (Taiz/Zeiger) 5th edition. Molecular Biology of the Cell (Alberts). Auxin Signaling: From Synthesis
to Systems Biology (Estelle/Weijers/Ljung)
Claus Schwechheimer, claus.schwechheimer@wzw.tum.de
Pflanzensystembiologie UE I, II und III (Übung, 10 SWS)
Schwechheimer C, Isono E, Behringer C, Falter-Braun P, Ranftl Q, Weller B
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ2384: Forschungspraktikum 2 - Molekularbiologie der Pflanzen
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
10
300
150
150
ausgewiesene Wert.
Zur Kontrolle des Verständnisses sowie der Fähigkeit zur Beschreibung, Auswertung und Interpretation der im
Praktikum durchgeführten Experimente ist ein Protokoll zu führen, welches überprüft und benotet wird. Die
Studierenden zeigen in einem Kolloquium, ob sie in der Lage sind, das erlernte Wissen zu strukturieren und die
kombinieren und auf ähnliche Sachverhalte übertragen können. Die Gesamtnote des Moduls setzt sich aus der
Protokollnote und der Kolloquiumsnote zusammen.
Prüfungsart:
30 mündlich +
benotetes Protokoll
Folgesemester
Hausarbeit:
Ja
Zum besseren Verständnis der im Praktikum vermittelten Inhalte ist eine vertiefte Kenntnis der biologischen und
molekularen Grundlagen erforderlich; Voraussetzung ist zudem eine eingehende experimentelle Erfahrung in den
Pflanzenwissenschaften und eine abgeschlossene Bachelorarbeit
Modulhandbuch
Seite 106 von 209
Inhalt:
Das Praktikum führt die Teilnehmer vertieft an aktuelle Themen und Methoden der molekularen Pflanzenbiologie
heran. Die Teilnehmer arbeiten dabei zusammen mit Wissenschaftlern Hand in Hand an aktuellen
Forschungsprojekten des Lehrstuhls. Das Praktikum wird für verschiedene Themenbereiche angeboten.
Themenbereiche sind die Streßphysiologie der Pflanzen, der pflanzliche Xenobiotika-Metabolismus, pflanzliche
Peroxisomen und Zellteilung. Die Festlegung des Themas erfolgt nach Absprache.
Streßphysiologie: Gegenwärtig werden am Lehrstuhl die pflanzliche Reaktion auf Trockenstreß, Salzstreß und
Starklichtstreß untersucht. Aktuell spielen in diesem Zusammenhang die Wurzel-Sproß-Kommunikation unter
Streßbedingungen und Abscisinsäure-vermittelte Signaltransduktion bzw. Anpassungsreaktionen in Wildtyp und
speziellen Mutanten eine wichtige Rolle. Techniken: In vivo-Imaging Verfahren (Detektion von Luciferaseaktivität
mit zellulärer Auflösung, Thermokamera, Calcium-Imaging), transiente Expression im Protoplastensystem,
Konfokalmikroskopie, SDS-PAGE, Western Blot, Klonierung.
Programmierter Zelltod: Gegenwärtig wird in der Arbeitsgruppe Gietl die Funktion der KDEL-Cystein
Endopeptidasen in Entwicklung und Pathogen-Abwehr, sowie ihr Transport innerhalb der Zelle untersucht.
Techniken: Pflanzenanzucht; Inokulierung mit biotrophen, semi-biotrophen und nekrotrophen Pilzen, Beurteilung
des Befallsstadiums; Untersuchung von Reporterlinien bzw. ko-Mutanten; Mikroskopie, Konfokalmikroskopie;
Proteinuntersuchungen (Hochregulierung der KDEL-Cystein Endopeptidasen, Immunpräzipitation,
Aktivitätsmessung.
Xenobiotika-Metabolismus: Fremdstoffe (Xenobiotika) werden in der Pflanze modifiziert und vielfach an hydrophile
Substanzen wie Zuckermoleküle und Glutathion konjugiert. Im Rahmen des Praktikums werden grundlegende
analytische Methoden wie HPLC, Hefetransformation, Klonierungen und Enzymassays verwendet. An der
Glutathionkonjugation beteiligte Pflanzenenzyme werden in Hefe als Modellsystem exprimiert und ihre Funktion bei
der Pestiziddetoxifikation untersucht.
Zellteilung: Die Arbeitsgruppe Assaad untersucht Zellteilung, Zellwandbildung, Membranverkehr und
Allokationsentscheidungen in Arabidopsis thaliana. Mit Methoden der Molekulargenetik, Zellbiologie und Biochemie
wird die Regulierung des Wachstums in Antwort auf unterschiedliche Stressbedingungen untersucht. Zum Einsatz
kommen Techniken wie Mutantenanalyse, Kartierung, positionelle Klonierung, Live Imaging und
Immunolokalisierung anhand von Konfokalmikroskopie und Immunopräzipitation.
Lernergebnisse:
Mit der Teilnahme am Forschungspraktikum erwerben die Studierenden vertiefte theoretische Kenntnisse und ein
gezieltes Verständnis über:
" Fragestellungen der Molekularen Pflanzenbiologie
" Moderne Arbeitstechniken der Pflanzenphysiologie
Sie sind dann in der Lage, das erworbene Wissen auf vertiefte Fragestellungen anzuwenden, moderne
Arbeitstechniken der Pflanzenphysiologie kompetent einzusetzen und mit Pflanzen, insbesondere mit Arabidopsis
zu experimentieren
Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Praktikum; Lehrmethode (Einführung): Vortrag, Powerpointpräsentation und
Tafelanschrieb; im Praktikum Anleitungsgespräche, Demonstrationen, Experimente, Partnerarbeit,
Ergebnisbesprechungen.
Lernaktivitäten: Studium von Fachliteratur; Üben von labortechnischen Fertigkeiten und pflanzenphysiologischen
Arbeitstechniken; Zusammenarbeit mit Institutsmitarbeitern; Anfertigung von Protokollen.
Modulhandbuch
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Medienform:
Praktikumsskript (Powerpointpräsentationen können heruntergeladen werden)
Literatur:
Weiler und Nover: Allgemeine und molekulare Botanik. Thieme Verlag.
Sons
Fachartikel aus wissenschaftlichen Zeitschriften (abgestimmt auf das gewählte Arbeitsthema).
Forschungspraktikum II: Molekulare Pflanzenbiologie WZ2384 (Übung, 10 SWS)
Assaad-Gerbert F
Forschungspraktikum II: Programmierter Zelltod WZ2384 (Übung, 10 SWS)
Gietl C
Forschungspraktikum II: Xenobiotika-Metabolismus WZ2384 (Übung, 10 SWS)
Grill E
Forschungspraktikum II: Stressphysiologie WZ2384 (Übung, 10 SWS)
Modulhandbuch
Seite 108 von 209
Modulbeschreibung
WZ2385: Molekulare Pflanzenphysiologie 1
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Sommersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
150
90
60
ausgewiesene Wert.
Sachverhalte übertragen können. Die Klausurnote bildet die Gesamtnote des Moduls.
Prüfungsart:
schriftlich
60 schriftlich
Folgesemester
Hausaufgabe:
Vortrag:
Hausarbeit:
Ja
Ja
Ja
Zum Verständnis der vermittelten Inhalte ist ein solides Wissen und praktische Erfahrung in der Molekularbiologie,
Biochemie und Pflanzenphysiologie zwingend erforderlich.
Inhalt:
In diesem Modul werden die zentralen Themenkreise Pflanzlicher Wasserhaushalt, Lipidmetabolismus und
Schwefelhaushalt behandelt.
Schwerpunkte sind dabei: chemische und physikalische Eigenschaften von Wasser; das WasserpotentialKonzept; Transportwiderstände und Regulationsprozesse auf dem Weg des Wassers aus der Bodenlösung in die
Pflanze und von dort aus in die Atmosphäre; Aquaporine; Meßmethoden; Biochemie der Cuticula und der
epicuticulären Wachse; biogeochemischer Schwefelzyklus, Schwefelaufnahme und assimilation; Biosynthese
zentraler Schwefelverbindungen; Phytochelatine; Schwefelverbindungen und biotische Interaktionen; Entgiftung
von Xenobiotika.
Modulhandbuch
Seite 109 von 209
Lernergebnisse:
Das Modul führt die Studierenden an die aktuelle Forschung in der Pflanzenphysiologie heran. Im Vordergrund
steht die Vertiefung der Kenntnisse der Pflanzenphysiologie und die Vermittllung der methodischen und
experimentellen Ansätze der aktuellen Forschung. Mit der Teilnahme am Modul erwerben die Studierenden
vertiefte Kenntnisse über:
" Analytik und experimentelle Ansätze
" den pflanzlichen Wasserhaushalt
" Struktur und Biochemie pflanzlicher Oberflächen
" den pflanzlichen Schwefelhaushalt
" den pflanzlichen Lipidstoffwechsel
" die kritische Sichtung wissenschaftlicher Publikationen
" Präsentationstechniken
Das vermittelte Wissen kann in verschiedenen Bereichen sowohl der grundlagen- als auch
anwendungsorientierten Pflanzenwissenschaften eingesetzt werden Die Teilnehmer erwerben die Kompetenz, die
Belastbarkeit experimenteller Ansätze zu beurteilen und selbst Ansätze der Beforschung zu entwickeln.
Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Vorlesung.
Lernaktivitäten: Studium von Vorlesungsskript, -mitschrift, Interaktion Lehrender - Studierende
Medienform:
Literatur:
Ernst-Detlef Schulze, Erwin Beck, Klaus Müller-Hohenstein: Pflanzenökologie. Spektrum Akademischer Verlag
Park S. Nobel: Physicochemical and Environmental Plant Physiology. Academic Press
Sons
Seminar: Molekulare Pflanzenphysiologie I (Seminar, 2 SWS)
Grill E [L], Grill E, Christmann A
Molekulare Pflanzenphysiologie I (Vorlesung, 2 SWS)
Christmann A, Grill E
Modulhandbuch
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Modulbeschreibung
WZ2402: Mikrobielle Toxine in der Nahrung
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
150
90
60
ausgewiesene Wert.
der Überprüfung der in Vorlesung und Übung erlernten theoretischen Kompetenzen. Die Studierenden zeigen in
der Klausur, ob sie in der Lage sind, das erlernte Wissen zu strukturieren und die wesentlichen Aspekte
ähnliche praxisnahe Sachverhalte übertragen können. Die Klausurnote bildet die Gesamtnote des Moduls.
Prüfungsart:
schriftlich
60 Minuten
Folgesemester
Grundkenntnisse in Anatomie, Physiologie und Biochemie.
Inhalt:
Vermittlung toxikologischer und analytischer Grundlagen. Darstellung relevanter Bakterien-, Pilz- und Algentoxine:
Ökologie der Toxinbildner; biochemische und pathophysiologsiche Wirkungen der Toxine; Vorkommen in der
Nahrungskette ("carry over"); Prophylaxemaßnahmen, gesetzliche Reglementierungen.
Lernergebnisse:
Verständnis und Fachwissen über mikrobielle Toxinbildner, deren Habitaten und deren Toxine. Weiterhin haben
sie grundlegende toxikologische Arbeitstechniken (z.B. Zellkulturversuche, LC-MS/MS) erlernt und geübt. Sie
sollen gelernt haben, toxikologische Probleme mikrobieller Herkunft analysieren und bewerten zu können.
Das Modul soll weiterhin Fähigkeiten zum Lösen von Problemen entwickeln helfen, sowie das
Interesse an mikrobiellen Toxinen und deren Bedeutung für die Lebensmittelsicherheit fördern.
Vorlesung und Übungen im Labor
Modulhandbuch
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Medienform:
PowerPoint
Literatur:
Freitext
Johann Bauer, johann.bauer@mytum.de
Mikrobielle Toxine in der Nahrung (Medizinische Mikrobiologie und Hygiene, Teil Mikrobielle Toxine) (Vorlesung, 2
SWS)
Bauer J
Modulhandbuch
Seite 112 von 209
Modulbeschreibung
WZ2404: Einführung in die Kultivierung von Säugetierzellen
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
5
150
75
75
ausgewiesene Wert.
Aktive Teilnahme am Praktikum und den Lehrveranstaltungen wird erwartet. Das Manuskript zum Praktikum dient
zur Vorbereitung für das Praktikum. Zusätzlich zu Praktikum und Lehrveranstaltung werden mit den Studenten
Seminare durchgeführt, in denen sie mittels Literatur praktische Themen der Kultivierung von Säugetierzellen
erarbeiten und präsentieren müssen. 5 Testate (benotet, 5 x 30 Minuten) sowie zwei 20 minütige Präsentationen
(benotet) dienen der Überprüfung der in Vorlesung, Seminar und Praktikum erlernten theoretischen Kompetenzen.
Hier zeigen die Studierenden, ob sie in der Lage sind, das erlernte Wissen zu strukturieren und die wesentlichen
Aspekte darzustellen. Sie sollen die erarbeiteten Informationen beschreiben, interpretieren, sinnvoll kombinieren
und auf ähnliche Sachverhalte übertragen können. Die Gesamtnote des Moduls ergibt sich aus den Ergebnissen
für die einzelnen Testate und Präsentationen, sowie der praktischen Arbeiten.
Prüfungsart:
Folgesemester
Hausaufgabe:
40 mündlich und 150
schriftlich
Gespräch:
Vortrag:
Hausarbeit:
Ja
Ja
Ja
Ja
BSc in Biologie, Molekulare Biotechnologie
Inhalt:
Im Rahmen der Vorlesungen werden Grundkenntnisse über die Isolierung, Charakterisierung und genetische
Manipulierung von Säugetierzellen vermittelt. Inhalte sind u.a.: Steriles Arbeiten, Mikroskopie, Kulturbedingungen,
Etablierung und Konservierung von Zelllinien und Primärkulturen, Bestimmung von Zellzahlen,
Transfektionsmethoden, Isolierung und Expansion von Zellklonen, Anwendung und Detektierung von
Markergenen. In der Vorlesung zum Praktikum werden insbesondere die Hintergründe und theoretischen
Kenntnisse zu den durchgeführten Experimenten vermittelt. Im Rahmen des Praktikums werden grundlegende
Methoden zu praktischen Arbeiten mit Säugetierzellen vermittelt. Im zugehörigen Seminar stellen die Studenten
relevante Literatur bezüglich Zellkultur vor.
Modulhandbuch
Seite 113 von 209
Lernergebnisse:
Verständnis und Fachwissen für die Kultivierung und genetische Manipulierung von Säugetierzellen. Weiterhin
haben sie grundlegende zellbiologische Arbeitstechniken erlernt und geübt. Sie sollen gelernt haben,
zellbiologische Fragestellungen und Arbeitstechniken zu verstehen und sollten das erworbene Wissen auf vertiefte
Fragestellungen anwenden können.
Das Modul soll weiterhin Fähigkeiten zum Lösen von Problemen entwickeln helfen, sowie das Interesse an
Zellbiologie und zellbiologischen Problemen fördern.
Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Vorlesung, Praktikum, Seminar
Lehrmethode: Vortrag; im Praktikum Anleitungsgespräche, Demonstrationen, Experimente, Partnerarbeit,
Ergebnisbesprechungen.
Lernaktivitäten: Studium von Vorlesungsskript, -mitschrift, Praktikumsskript und Literatur; Üben von
labortechnischen Fertigkeiten und zellbiologischen Arbeitstechniken; Zusammenarbeit mit Praktikumspartner;
Anfertigung von Protokollen und Präsentationen.
Medienform:
Präsentationen mittels Powerpoint,
Praktikumsskript (Downloadmöglichkeit für Vorlesungsmaterial)
Publikationen zu zellkulturspezifischen Themen
Literatur:
Es ist kein Lehrbuch verfügbar, das alle Inhalte dieses Moduls abdeckt. Als Grundlage oder zur Ergänzung wird
empfohlen: Sabine Schmitz; Der Experimentator: Zellkultur; R. Ian Freshney: Culture of Animal Cells: A Manual of
Basic Technique
Angelika Schnieke, schnieke@wzw.tum.de
Zellbiologische Fragestellungen (Zellkultur - Seminar) (Seminar, 2 SWS)
Schnieke A [L], Saalfrank A
Einführung in die Kultivierung von Säugetierzellen (Zellkultur - Praktikum) (Praktikum, 3 SWS)
Schnieke A, Saalfrank A
Modulhandbuch
Seite 114 von 209
Modulbeschreibung
WZ2413: Pharmakologie und Toxikologie für Studierende der
Biowissenschaften (Vertiefung)
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
Vortrag:
Hausarbeit:
Inhalt:
Lernergebnisse:
Medienform:
Literatur:
,
Modulhandbuch
Seite 115 von 209
Vertiefungsvorlesung Pharmakologie (Vorlesung, 2 SWS)
Engelhardt S, Welling A, Laggerbauer B, Sarikas A, Thiermann H, Ahles A, Domes K, Werfel S
Seminar für Studierende der Biowissenschaften (Master) (Seminar, 2 SWS)
Welling A, Sarikas A, Laggerbauer B, Thiermann H, Domes K, Göbel P, Jaffre F, Rammes G
Modulhandbuch
Seite 116 von 209
Modulbeschreibung
WZ2414: Forschungspraktikum Pharmakologie und Toxikologie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
10
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
Vortrag:
Hausarbeit:
Inhalt:
Lernergebnisse:
Medienform:
Literatur:
,
Modulhandbuch
Seite 117 von 209
Forschungspaktikum Pharmakologie und Toxikologie (Praktikum, 10 SWS)
Welling A, Engelhardt S, Sarikas A
Modulhandbuch
Seite 118 von 209
Modulbeschreibung
WZ2417: Forschungspraktikum Genetik 2 Entwicklungsgenetik
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch/Englisch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
10
300
130
170
ausgewiesene Wert.
6-wöchiges Blockpraktikum nach Absprache. Regelmäßige Teilnahme im Umfang von rund 6 Stunden täglich.
Vorbereitung, Durchführung, Interpretation und Diskussion von Versuchen. Teilnahme am Kolloquium
Pflanzenwissenschaften. Die Studierenden planen und führen ihre Versuche selbstständig durch. Sie betreiben
eigenständig Literaturrecherche und machen eine wissenschaftliche Auswertung der experimentellen Ergebnisse.
Voraussetzungen sind fundiertes Basiswissen in Genetik, Biochemie und molekularer Biologie und ausreichende
Sicherheit und Erfahrung in Basistechniken des molekularen Labors. Die Themen der Arbeiten kommen aus den
aktuellen Forschungsgebieten des Dozenten und werden vereinbart. Die Benotung erfolgt auf Grund der Qualität
der Laborarbeit und des Protokolls das in Form einer wissenschaftlichen Arbeit geschrieben wird.
Prüfungsart:
schriftlich
Protokoll
Hausarbeit:
Ja
Grundlagen der Genetik, Biochemie, Chemie, Pflanzenwissenschaften; Erfahrung und sicheres Arbeiten im
molekularbiologischen Labor
Inhalt:
Bearbeitung eines Forschungsprojekts aus dem Forschungsbereich des Dozenten. Laborarbeit mit molekularen
und genetischen Techniken; wissenschaftliche Analyse (ggf. statistische Analyse) und Interpretation der
experimentellen Ergebnisse. Fokus auf MOLEKULARE MECHANISMEN DER ENTWICKLUNG, insbesondere des
pflanzlichen Embryos, und EPIGENETIK. Techniken: Molekulare Klonierung, epigenetische Modifizierungen,
molekulare Analyse von Pflanzen-Mutanten, Reportergeneinsatz (G/Y/CFP, GUS, His-/Strep-tag etc.) in vitro und
in vivo (Transgene), Transcriptomics, (q)RT-PCR, in situ Hybridisierung, FISH, Histologie,
Chromosomenanalysen, flow cytometry, Antikörper-Färbungen, Fluoreszenzmikroskopie, Confocal-LaserScanning-Mikroskopie, Proteinreinigung, pflanzliche Gewebekultur. Auch zur Vorbereitung einer Masterarbeit.
Modulhandbuch
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Lernergebnisse:
Die Studierenden üben eigenständiges wissenschaftliches Arbeiten, praktizieren aktuelle molekularbiologische und
biochemische Techniken, üben Literaturrecherche, die Einbindung relevanter Literatur in ein Forschungsprojekt
und wissenschaftliche Ausarbeitung.
Praktikum, Projektarbeit.
Medienform:
Laborarbeit, Literaturrecherche,Internetrecherche
Literatur:
Es gibt kein speziell auf das Praktikum ausgelegtes Lehrbuch.
Genetik Forschungspraktikum II Entwicklungsgenetik (Praktikum, 10 SWS)
Gierl A, Torres Ruiz R, Kieser A
Modulhandbuch
Seite 120 von 209
Modulbeschreibung
WZ2420: Molekulare Genetik
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Sommersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
90
60
30
ausgewiesene Wert.
In der Vorlesung werden aktuelle Themen der molekularen Genetik anhand von ausgewählten Beispielen aus
Originalarbeiten behandelt. Es werden neueste Artikel vorgestellt und damit der Bereich der Genetik über
Lehrbuchwissen hinaus dargestellt. Die Studierenden erwerben einen Einblick in aktuelle Fragestellungen,
Methoden und Modelle der Genetik. Sie erfahren, wie basierend auf Grundwissen weitergehende Forschungslinien
aufbauen und welche neuen Kenntnisse so gewonnen werden. In der Klausur dokumentieren die Studierenden,
dass Sie im Bereich Molekulare Genetik Kenntnisse besitzen, die über das Grundwissen hinaus gehen. Sie zeigen,
dass Sie relevante Forschungsansätze verstanden haben und sinnvoll nachvollziehen können.
Prüfungsart:
schriftlich
60 Minuten
Vorlesung Genetik, Genomik, Entwicklungsgentik der Pflanzen, Entwicklungsgentik der Tiere
Inhalt:
Allelformen: amorph, hypo-, hyper-, anti-, neomorph, haploinsuffizienz
Temperatursensitive Allele
Multiple Allelie
Penetranz
Expressivität
Wechselwirkung von Genen/Formen der Epistasie
Transkriptionsfaktoren, -suppressoren
Genredundanz/-duplikation
Polyploidie
Epigenetik
Neue DNA-Sequenziermethoden
Transposons
microRNA
Nicht-Mendelische Vererbungsfaktore
.
Modulhandbuch
Seite 121 von 209
Lernergebnisse:
Die Studenten sind in das selbstständige Arbeiten im molekulargenetischen Labor eingeführt. Sie führen die
Grundtechniken der molekularen und genetischen Analyse sicher aus. Sie kennen die Modellsysteme Arabidopsis
thaliana und Zea mays. Sie kennen die Grundprinzipien der genetischen Analyse. Sie haben das Erstellen einer
wissenschaftlichen Arbeit geübt. Sie haben Einblick in einen grossen Bereich der aktuellen Forschung und die
Arbeit internationaler Gruppen gewonnen da sie am Kolloquium teinehmen.
Vorlesung, Präsentation, Vortrag
Medienform:
Folien der Vorlesung stehen zur Verfügung
Literatur:
Bruce Alberts et al., Molecular Biology of THE CELL, 2002, 4th ed. (oder neuere),
Garland Science New York,
Wilhelm Seyffert (Hrsg.), Lehrbuch der Genetik, 2003, 2te Auflage (oder neuere),
Spektrum Akademischer Verlag Heidelberg-Berlin
Ramon Torres-Ruiz, ramon.torres@wzw.tum.de
Molekulare Genetik [WZ2420] (Vorlesung, 2 SWS)
Torres Ruiz R, Gierl A
Modulhandbuch
Seite 122 von 209
Modulbeschreibung
WZ2427: Molekulare Zellbiologie der Tumorentstehung [MolZellbioTum]
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Zweisemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
6
180
90
90
ausgewiesene Wert.
der Überprüfung der in der Vorlesung erlernten theoretischen Kompetenzen. Die Studierenden zeigen in der
Sachverhalte übertragen können. Die Klausurnote bildet zusammen mit der Note für den Vortrag die Gesamtnote
des Moduls (gleiche Gewichtung beider Teilnoten). Ein Vortrag über ein ausgewähltes wissenschaftliches Paper
aus dem Bereich der Tumorbiologie wird von den Studierenden in Gruppenarbeit vorbereitet. Dies soll den Erwerb
der Kompetenz zur selbständigen und kritischen Interpretation aktueller Forschungsarbeiten aus der
englischsprachigen Fachliteratur unter Beweis stellen. Benotet wird hier ein schriftliches Handout sowie ein
mündlicher Vortrag, der von allen Studierenden abzuleisten ist. Im Rahmen der Übung werden Hausaufgaben
gestellt, die dem vertieften Verständnis der Inhalte der Vorlesung dienen (unbenotet).
Prüfungsart:
schriftlich
60 schriftlich
Folgesemester
Hausaufgabe:
Vortrag:
Ja
Ja
Keine
Modulhandbuch
Seite 123 von 209
Inhalt:
Die Entstehung und Progression von Tumoren wird auf molekulargenetischer und zellbiologischer Basis vermittelt.
Dabei werden auch allgemeine Grundlagen der molekularen Zellbiologie vermittelt.
Lehrinhalte (Teil 1, WS):
" Tumorviren
" Onkogene, Tumorsuppressorgene und Tumor-Modulatoren
" Signaltransduktion und Wachstumsfaktoren
" Zytoskelett, Zelladhäsion und Zellmigration
" Zellzyklus und Zellteilung
" Telomerstruktur und chromosomale Instabilität
" Apoptose und Nekrose
" Angiogenese
" Adulte Stammzellen und "Tumorstammzellen"
Lehrinhalte (Teil 2, SS):
" Embryonalentwicklung der Maus, embryonale Stammzellen, Knock-out und Knock-In Technik
" Mausmodelle in der biomedizinischen Forschung: Xenotransplantat-Modelle, Transgenese bei Mäusen
" Gewebespezifische und induzierbare Modelle: Cre/LoxP
" Bildgebende Verfahren in der Tumorforschung (Multiphotonen-Mikroskopie, MRI, PET/CT)
" Tumor-Stroma Interaktionen
" Grundlagen der Tumorimmunologie
" Grundlagen der "rationalen Therapie"
Lernergebnisse:
Durch die Teilnahme an dem Modul sollen die Studierenden über grundlegende zellbiologische und
molekularbiologische Kenntnisse der Tumorbiologie verfügen. Ziel ist es, sich im Spannungsfeld der
biomedizinischen Krebsforschung zwischen klinischer Anwendung und naturwissenschaftlicher
Grundlagenkenntnis sicher bewegen zu können, und selbständig aktuelle englischsprachige Literatur aus diesem
Bereich auswerten zu können.
Veranstaltungsform: Vorlesung Teil 1 und 2
Lehrmethode: Vortrag; Lernaktivität: Literaturstudium
Veranstaltungsform: Übung; Lehrmethode: moderierte Diskussion
Lernaktivität: Referat, schriftliches Handout zum Referat, Hausaufgaben im Rahmen der Übung. Fakultativ kann
zusätzlich ein Forschungspraktikum (mind. 4 Wochen je 40h) aus dem Bereich der Tumorbiologie abgeleistet
werden
Medienform:
Skript (Downloadmöglichkeit für Vorlesungsmaterial auf TUMonline)
Literatur:
empfohlen: 1) Biology of Cancer, Robert Weinberg, Garland Science 2006; ISBN: 0815340761
2) Lehrbuch der Molekularen Zellbiologie, Alberts et al., Wiley VCH, 2007. ISBN: 3527311602
3) The Mouse in biomedical research. James G. Fox (Ed.). Academic Press, 2007. ISBN: 9780123694546
4) Mouse Models of Human Cancer. Eric C. Holland (Editor), Wiley-VCH, 2004. ISBN: 978-0-471-44460-2
Klaus-Peter Janssen, klaus-peter.janssen@lrz.tum.de
Modulhandbuch
Seite 124 von 209
Molekulare Zellbiologie der Tumorentstehung (Teil 1) (Übung, 1 SWS)
Janßen K [L], Janßen K
Molekulare Zellbiologie der Tumorentstehung (Teil 1) (Vorlesung, 2 SWS)
Janßen K [L], Janßen K
Molekulare Zellbiologie der Tumorentstehung (Teil 2) (Vorlesung, 2 SWS)
Janßen K [L], Laschinger M
Modulhandbuch
Seite 125 von 209
Modulbeschreibung
WZ2436: Forschungspraktikum Molekulare Onkologie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch/Englisch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
10
300
60
240
ausgewiesene Wert.
Die Fähigkeit zur Darstellung und Interpretation der im Praktikum durchgeführten Experimente wird in Form eines
Vortrags in der Arbeitsgruppe des betreuenden Dozenten überprüft (30 min, benotet, 25%). Die Experimente
müssen auch in Form eines Protokolls dokumentiert und diskutiert werden. Das Protokoll dient der Überprüfung
des Fähigkeit zur Beschreibung, Auswertung und Interpretation der im Praktikum durchgeführten Experimente
(Umfang 15-25 Seiten, benotet 75%) nach der IMRAD-Struktur einer wissenschaftlichen Publikation (Einleitung,
Mat&Meth, Ergebnisse, Diskussion). Regelmässige Teilnahme am Seminar Molekulare Mechanismen der
Metastasierung.
Prüfungsart:
Protokoll als
Studienleistung + 30
mündlich
Vortrag:
Ja
Der Besuch des Moduls "Molekulare Onkologie" wird empfohlen, kann aber durch entsprechende Vorkenntnisse
aus anderen Quellen in Ausnahmefällen erlassen werden.
Inhalt:
Das Praktikum wird in der Arbeitsgruppe von Prof. Dr. rer. nat. Achim Krüger am Klinikum rechts der Isar der TUM,
Institut für Experimentelle Onkologie und Therapieforschung durchgeführt. Die Aufgabenstellung für das Praktikum
orientiert sich an den aktuellen Forschungsschwerpunkten und greift Teilaspekte der Vorlesungen Molekulare
Onkologie 1 (siehe Modul Molekulare Onkologie) auf. In den Experimenten werden grundlegende Techniken der
Molekular- und Tumorbiologie eingesetzt.
Lernergebnisse:
Im Praktikum werden grundlegende experimentelle Kenntnisse und moderne Arbeitstechniken der Biochemie,
Molekularbiologie, Histologie, Zellkultur, Transcriptomics und Proteomics vermittelt. Durch die Arbeit im Labor auf
einem aktuellen Gebiet der Molekularen Onkologie sollen aktuelle Forschungsthemen verstanden und selbständig
Problemlösungen entwickelt werden. Die erlernten Fähigkeiten und Techniken können leicht auf andere
Fachgebiete übertragen werden.
Modulhandbuch
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Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Praktikum; Lehrmethoden im Praktikum: Anleitungsgespräche und -anweisungen,
Demonstrationen, Experimente, Ergebnisbesprechungen, Gruppenbesprechungen, Fachliteratur, Vortrag,
Anfertigung eines Protokolls.
Medienform:
Vortrag: Präsentationen mittels Powerpoint
Protokoll: Text als Wordfile, Grafiken als Excel- oder Powerpointfiles
Literatur:
Aktuelle Fachliteratur die vom Betreuer des Praktikums zur Verfügung gestellt wird.
Achim Krüger, achim.krueger@lrz.tu-muenchen.de
Modulhandbuch
Seite 127 von 209
Modulbeschreibung
WZ2439: Proteomics: Analytische Grundlagen und Biomedizinische
Anwendungen
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
6
180
105
75
ausgewiesene Wert.
Regelmäßige, aktive Teilnahme an der Vorlesung und den Übungen ist verpflichtend. Die Teilnahme an den
Übungen wird durch Unterschrift nachgewiesen. Die Prüfungsleistung für die Vorlesung wird duch eine Klausur
nachgewiesen. Bei den Übungen zeigen die Studierenden anhand eines Berichts dass Sie in der Lage sind, die
wesentlichen Aspekte der Versuche strukturiert und reflektiert darzustellen. Neben dem Bericht wird auch die
Aktivität, Produktivität, Kreativität und Eigenständigkeit in den Übungen bewertet.
Prüfungsart:
schriftlich
Vorlesung: 90 min
Hausarbeit:
Ja
Erfolgter BSc Abschluss
Inhalt:
In der Vorlesung werden die theoretischen Grundlagen der Proteomanalytik gelegt. Diese umfassen beispielsweise
die Theorie der Chromatographie und der Massenspektrometrie sowie die wichtigsten Arten chromatographischer
Trennungen und massenspektrometrischen Peptidsequenzierung und Quantifizierung.
In den Übungen (Intensivkurs) werden die in der Vorlesung erarbeiteten Inhalte in die Praxis umgesetzt. Die Übung
soll praxisorientierte Einblicke zur Lösung proteomanalytischer Fragestellungen geben. Ein wesentlicher Aspekt
der Lehrveranstaltung besteht darin, dass die Studierenden u.a. ausgehend von vorgegebenen Fragen
Experimente in Eigenregie konzipieren, durchführen und bewerten. Die Übung findet in Zweiergruppen statt.
Beispiele für Übungsthemen: Sequenzierung von Peptiden mittels LC-M/MS, Spektreninterpretation,
Datenbanksuchen und Internetrecherchen.
Modulhandbuch
Seite 128 von 209
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an der Modulveranstaltung sind die Studierenden in der Lage, überwiegend selbständig
experimentelle Antworten auf zellbiologische Fragestellungen zu entwickeln. Aufbauend auf Vorkenntnissen
verstehen die Studierenden wie Experimente konzipiert und die Ergebnisse vor dem experimentellen Hintergrund
zu werten sind. Neben methodischen Fähigkeiten, primär in Zellkulturtechnologie und zellbiologischen Methoden,
wird selbständiges agieren und eigenverantwortliche Entscheidung gefördert. Zudem gewinnen Sie einen Eindruck
für die Komplexität auch einfach erscheinender Versuchsprotokolle.
Lehrtechnik: Vorlesung, Übung und Praktikum; Lernaktivitäten: Bearbeiten von proteomanalytischen
Fragestellungen und deren Lösungsfindung; Üben von labortechnischen Fertigkeiten; Zusammenarbeit in
Zweiergruppen; Konstruktives diskutieren und kritisieren eigener Experimente; Lehrmethode: Fragendentwickelnde Methode
Medienform:
Übungsblätter, Tafelarbeit, Power Point
Literatur:
aktuelle Literatur zu den spezifischen Themen; überwiegend von Studierenden zu recherchieren
Bernhard Küster, kuster@tum.de
Intensivkurs Proteomics (Übung, 3 SWS)
Küster B [L], Lemeer S
Proteomics - Analytische Grundlagen und biomedizinische Anwendungen (Vorlesung, 2 SWS)
Lemeer S, Küster B
Modulhandbuch
Seite 129 von 209
Modulbeschreibung
WZ2441: Foschungspraktikum Chemie der Biopolymere
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
10
300
60
240
ausgewiesene Wert.
Die Studierenden legen zum Abschluss des Praktikums ein Protokoll vor, welches bewertet wird. Darüberhinaus
halten Sie einen Vortrag (30 min) vor der Arbeitsgruppe, der ebenfalls bewertet wird. Die Gesamtnote setzt sich
aus der Beurteilung der Arbeitsleistung im Labor, der Note des Vortrags und der Bewertung des Protokolls
zusammen.
Prüfungsart:
schriftlich
2 x 60 min mündlich
Vortrag:
Hausarbeit:
Ja
Ja
Absolvierung des Studienfachs Biochemie oder Proteinbiochemie im Masterstudiengang. Grundpraktika in
Biochemie.
Inhalt:
In diesem Modul arbeiten die Studierenden zusammen mit einem Mitarbeiter unserer Arbeitsgruppe an dessen
wissenschaftlicher Arbeit. Hierbei werden den Studierenden abgeschlossene Themen gestellt, die sie im Rahemne
eines Praktikums im Labor unter der direkten Anleitung unserer Mitarbeiter bearbeiten.
Lernergebnisse:
Nach diesem Modul sind die Studierenden in der Lage ein einfaches, abgeschlossenes Teilprojekt eines
Forschungsvorhabens zu bearbeiten und ihre Ergebnisse schriftlich und mündlich zu präsentieren.
Lehrtechnik: Ergebnisbesprechungen.
Lernaktivitäten: Üben von technischen und labortechnischen Fertigkeiten, Anfertigen eines wissenschaftlichen
Fachvortrags zum Thema des Praktikums, Vorbereiten und Durchführen von Präsentationen.
Medienform:
wissenschaftliche Fachartikel
Modulhandbuch
Seite 130 von 209
Literatur:
Forschungspraktikum: Chemie der Biopolymere (Praktikum, 10 SWS)
Langosch D [L], Langosch D
Modulhandbuch
Seite 131 von 209
Modulbeschreibung
WZ2449: Mikrobielle Vielfalt und Entwicklung
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Sommersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
150
90
60
ausgewiesene Wert.
der Überprüfung der in Vorlesung und Seminar erlernten theoretischen Kompetenzen. Die Studierenden zeigen in
der Klausur, ob sie in der Lage sind, das erlernte Wissen zu strukturieren und die wesentlichen Aspekte
ähnliche Sachverhalte übertragen können.
Prüfungsart:
schriftlich
60 written
Folgesemester
Voraussetzung sind Kenntnisse der Grundlagen der Mikrobiologie (Vorlesung Allgemeine Mikrobiologie). Zum
besseren Verständnis sind gute Kenntnisse in organischer Chemie und Biochemie vorteilhaft.
Inhalt:
Im Rahmen der Lehrveranstaltungen werden Grundkenntnise über die phylogenetische und metabolische Vielfalt
von Mikroorganismen und deren Rolle für Umwelt, Mensch und Biotechnologie wiederholt und mit
Fortgeschrittenenkenntnisen erweitert. Beispielhafte Inhalte sind Vorgänge der Zell-Zell-Kommunikation und
Zelldifferenzierung v.a. bei prokaryontischen Mikroorganismen, Systematik und Phylogenie, Anpassung von
Mikroorganismen an ihre Habitate, Rolle von Mikroorganismen in ausgewählten Habitaten und in globalen
Stoffkreisläufen, sowie ausgewählten technischen Verfahren (z.B. Abwasserklärung). Im Seminar werden
wechselnde Gruppen von Mikroorganismen und deren Eigenschaften und Bedeutung in Vorträgen vorgestellt und
diskutiert.
Modulhandbuch
Seite 132 von 209
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an dem Modul besitzen die Studierenden vertiefte theoretische Kenntnisse und Verständnis
über Verwandtschaftsbeziehungen unter Mikroorganismen, ihre Anpassung an verschiedene Lebensumstände, die
Rolle ihrer Stoffwechselfähigkeiten für Mensch und Umwelt, und Vorgänge der Zell-Zell-Kommunikation und
Zelldifferenzierung. Sie sollen in der Lage sein,
" Methoden der Identifizierung, Differenzierung und systematischen Einordnung zu verstehen und kritisch zu
hinterfragen.
" die Vielfalt verschiedener Mikroorganismen und Mikrobengemeinschaften in natürlichen Habitaten zu verstehen.
" Anhand ausgewählter Beispiele Zusammenhänge zwischen Stoffwechselwegen, Stoffumsetzungen und
Umwelteinflüsse durch Mikroorganismen zu verstehen.
" das erworbene Wissen auf vertiefte Fragestellungen anzuwenden.
Mikrobiologie, mikrobiologischen Problemen und die Bedeutung von Mikroorganismen für Mensch und Umwelt
fördern.
Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Vorlesung Lehrmethode: Vortrag.
Lernaktivitäten: Studium von Vorlesungsskript und -mitschrift, ggf. Literaturstudium; Vorbereitung, Präsentation
und Diskussion von Kurzvorträgen durch Studierende
Medienform:
Skript (Downloadmöglichkeit für Vorlesungsmaterial).
Literatur:
Es ist kein Lehrbuch verfügbar, das alle Inhalte dieses Moduls abdeckt.
Wolfgang Liebl, wliebl@wzw.tum.de
Proseminar - mikrobielle Diversität (Seminar, 2 SWS)
Liebl W
Mikrobielle Diversität und Entwicklung (Vorlesung, 2 SWS)
Liebl W, Ehrenreich A, Lee N, Ludwig W
Modulhandbuch
Seite 133 von 209
Modulbeschreibung
WZ2453: Molekulare Pathologie und organspezifische Karzinogenese
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch/Englisch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
6
180
120
60
ausgewiesene Wert.
Die regelmäßige Teilnahme an den Vorlesungen "Molekulare Pathologie" und "Organspezifische Molekulare
Karzinogenese" wird kontrolliert und ist Voraussetzung für die Zulassung zu den Klausuren. Zwei Klausuren
(jeweils 60 min, Multiple choice, benotet) dienen der Überprüfung der in den Vorlesungen erworbenen
theoretischen Kompetenzen. Bei den Prüfungen dürfen keine Hilfsmittel eingesetzt werden. Die Prüfungsfragen
umfassen den gesamten Vorlesungsstoff. Die Studierenden haben die Aufgabe, bei 20 Fragen pro Klausur aus
vier vorgegebenen Anworten pro Frage die richtige(n) Antworten anzukreuzen. Dabei wird Fachwissen abgefragt
und überprüft, ob die Studierenden in der Lage sind, das erworbene Wissen zu kombinieren und zu interpretieren.
Die beiden Vorlesungen können im gleichen oder in verschiedenen Semestern besucht werden. Die Gesamtnote
des Moduls setzt sich aus beiden Klausurnoten zusammen.
Prüfungsart:
schriftlich
120
Folgesemester
Die während des Bachelorstudiums erworbenen Grundkenntnisse der Molekularbiologie und Genetik sollten
ausreichen für das Verständnis der Vorlesungen. Der Besuch anderer Module wird nicht vorausgesetzt.
Inhalt:
Im Rahmen der Vorlesung "Molekulare Pathologie" werden methodische Grundlagen der Gewebeanalyse auf
höchstem wissenschaftlichen Niveau vermittelt und fachübergreifende Aspekte pathologischer Prozesse
behandelt. Besondere Schwerpunkte liegen auf den Themen Onkogene und Tumorsuppressorgene, Zelladhäsion
und Metastasierung, Signaltransduktion, Zellzyklus und Apoptose, Angiogenese, Umweltkarzinogenese und
Krebsstammzellen. Dadurch soll ein Verständnis der molekularen Mechanismen der Onkogenese geschaffen
werden. In der Vorlesung "Organspezfische molekulare Karzinogenese" werden grundlegende
Tumorklassifikationen erklärt und die organspezifische Karzinogenese ausführlich und verständlich erklärt für
Karzinome des Ösophagus, des Magens, des Colons, der Leber, des Pankreas, der Mamma, der Lunge und des
Urogenitaltraktes. Daneben werden Leukämien und Lymphome, Hirntumoren und endokrine Tumoren behandelt.
Modulhandbuch
Seite 134 von 209
Lernergebnisse:
Nach dem Besuch der beiden Vorlesungen besitzen die Studierenden grundlegende Kenntnisse der
Molekularpathologie, der molekularpathologischen Arbeitstechniken und der organspezifischen molekularen
Karzinogenese. Sie sollen gelernt haben, molekularpathologische Fragestellungen und Arbeitstechniken zu
verstehen und selbständig Problemlösungen zu entwickeln, molekulare Mechanismen der Onkogenese zu
verstehen und Zusammenhänge sowie Besonderheiten der Karzinogenese verschiedener Organe zu erkennen.
Das Modul soll einen Einblick in die Humanpathologie geben und das Interesse an der Diagnostik und Therapie
von Krebserkrankungen wecken.
Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Vorlesung, Lehrmethode: Vortrag;
Lernaktivitäten: Studium von Vorlesungsmaterial, -mitschrift und Literatur
Medienform:
Literatur:
empfohlen:
C. Wagener, O.Müller (Hsg.) Molekulare Onkologie, Georg Thieme Verlag, Stuttgart, 2010.
Birgit Luber, luber@lrz.tum.de
Molekulare Pathologie (Vorlesung, 2 SWS)
Luber B, Becker K, Atkinson M, Aubele M, Keller G, Malinowsky K, Neff F, Pellegata N, Rosemann M
Organspezifische Molekulare Karzinogenese (Vorlesung, 2 SWS)
Luber B [L], Atkinson M, Aubele M, Avril S, Becker K, Keller G, Luber B, Pellegata N, Schlegel J, Schlitter A, Walch
A
Modulhandbuch
Seite 135 von 209
Modulbeschreibung
WZ2457: Neurobiologie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
90
60
30
ausgewiesene Wert.
Die Studierenden erwerben grundlegende und weiterführende Kompetenzen im Umgang mit neurobiologischen
Fragestellungen Auf der Grundlage theoretischer Überlegungen wird ein Überblick verschiedener
neurobiologischer Themen behandelt. Darüber hinaus werden methodische Aspekte der verwendeten
Untersuchungsmethoden und die Aussagekraft kritisch evaluiert. Im Anschluß an die Übung wird der
Kompetenzzuwachs schriftlich abgeprüft.
Prüfungsart:
schriftlich
100 min
Folgesemester
Grundlegende Kenntnisse der Neurobiologie, mindestens auf dem Niveau der Vorlesung "Human- und
Tierphysiologie", sollten vorhanden sein.
Inhalt:
Grundlegende Neurobiologie: Entwicklung des Nervensystems,Neurophysiologie, Biophysik, synaptische
Übertragung, Lernen, Modulation, Emotion, Sprache, Degenerative Erkrankungen, Mentale Erkrankungen,
Bewußtsein
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an dieser Vorlesung sind die Studierenden in der Lage, neurobiologische Prozesse aus ihren
physikalischen und chemischen Randbedingungen abzuleiten und ihren Verlauf und ihre Steuerung über den
Organismus zu verstehen. Studierende erwerben Orientierungswissen in der gesamten Neurobiologie, können
Befunde in dieses Grundgerüst einordnen, erhalten Überblick verschiedenster Themen.
Lehrmethode: Präsentation, Vortrag, Fragend-entwickelnde Methode
Lernaktivitäten: Studium der ausgeteilten Grundlageninformationen, Nacharbeitung der vermittelten Informationen,
Materialrecherche, Zusammenfassen von Dokumenten,
Modulhandbuch
Seite 136 von 209
Medienform:
Ein Skript zu diesem Praktikum wird ausgeteilt bzw. als Download auf Moodle zur Verfügung gestellt. Zusätzlichen
Informationen werden auf Moodle kommuniziert (URLs, weitere Texte)
Literatur:
Als grundlegendes Lehrbuch wird "Neuroscience. Exploring the brain." von Bear, Connors, Paradiso aus dem
Lippincott, Williams and Wilkins Verlag empfohlen, und zwar in der englischen Variante. Weitere Lehrbücher der
Neurobiologie sind für die grundlegenden Inhalte ebenfalls geeignet.
Harald Luksch, Harald.Luksch@wzw.tum.de
Neurobiologie (Vorlesung, 2 SWS)
Luksch H, Weigel S
Modulhandbuch
Seite 137 von 209
Modulbeschreibung
WZ2460: Aktuelle Themen der Neurobiologie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Englisch
Zweisemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
5
150
90
60
ausgewiesene Wert.
Regelmäßige, aktive Teilnahme an beiden Seminaren ist erforderlich. Die Studierenden werden sich anhand von
einführenden Texten in jeder Woche auf das generelle Thema der jeweiligen Stunde vorbereiten müssen; dieser
allgemeine Teil wird zu Beginn des Seminars zusammen durchgesprochen. Anschließend wird jeweils ein
Studierender einen vertiefenden Text bzw. eine aktuelle Publikation aus einem hochklassigen referierten Journal
vortragen; anschließend wird über diese zusätzlichen Informationen diskutiert. Die gesamte Veranstaltung wird auf
Englisch abgehalten. Die Gesamtnote des Moduls ermittelt sich aus der Beurteilung der Beteiligung und des
Vorwissens an den allgemeinen Vorinformationen und diskussionen (30 %) sowie aus der eigenen
Vortragsleistung (Kategorien Textverständnis, Vollständigkeit, Strukturierung, Vortragsstil, Handout, zusammen 40
%) und der Beteiligung an der Spezialdiskussion (20 %).
Prüfungsart:
immanenter
Prüfungscharakter
immanenter
Prüfungscharakter
Gespräch:
Folgesemester
Ja
Ja
Vortrag:
Grundlegende Kenntnisse der Neurobiologie, mindestens auf dem Niveau der Vorlesung "Human- und
Tierphysiologie", sollten vorhanden sein. Idealerweise sollte der Besuch dieses Seminars mit dem gleichzeitigen
Besuch der Vorlesung "Neurobiologie" verbunden sein.
Inhalt:
Grundlegende und fortgeschrittene Aspekte der Neurobiologie inclusive Methoden, formalen und theoretischen
Grundlagen, Modellsystemen für Grundlagenforschung und für die angewandte Forschung, pharmazeutischer
Forschung, molekularen und molekularbiologischen Aspekten von komplexen Funktionen und Funktionsstörungen.
Diese Inhalte werden anhand von grundlegenden Artikeln (meist Lehrbuchausschnitten, seltener einfachere
Reviews) basal eingeführt und anschließend anhand von neueren, hochklassig publizierten Artikeln auf den
aktuellen Kenntnisstand gebracht. Die Abschätzung von weiteren Entwicklungen in den jeweiligen
Forschungsgebieten wird explizit vorgenommen.
Modulhandbuch
Seite 138 von 209
Lernergebnisse:
Die Studierenden erwerben wissenschaftlich fundierte, grundlagen-orientierte Kenntnisse zur Neurobiologie sowie
die Übersicht der aktuellen Entwicklungen in den wichtigsten Forschungsgebieten. Die Studierenden werden nach
Absolvierung dieses Seminars in der Lage sein, aktuelle Forschungsresultate aus Publikationen herauszuziehen,
diese in einen Kontext zu stellen und in ihr Wissenssystem einzubauen. Darüber hinaus sollen Sie die
besprochenen Themen als einen nicht abgeschlossenen historischen Prozess zu begreifen. Insbesondere sollen
die Studierenden Vorstellungen entwickeln, wie sich Forschungslinien und -prozesse hinsichtlich ihrer weiteren
Entwicklung verhalten, um die Mechanismen des Wissenschaftsbetriebes nachvollziehen zu können und damit die
eigene Zukunftsplanung betreiben zu können.
Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Seminar
Lehrmethode: Seminar, Fragend-entwickelnde Methode, Präsentation, Gruppenarbeit
Lernaktivitäten: Studium der ausgeteilten Grundlageninformationen, Materialrecherche, Zusammenfassen von
Dokumenten, Vorbereiten und Durchführen von Präsentationen, Erfassen von Informationen im Spezialvortrag,
Einbauen von neuen Informationen unterstützt durch fragend- entwickelndes Hinführen.
Medienform:
Literatur wird ausgeteilt bzw. als Download auf Moodle zur Verfügung gestellt. Eigene Präsentationen sollen mittels
Powerpoint oder ähnlichen Vortragstechniken erstellt werden. Zusätzlichen Informationen werden auf Moodle
kommuniziert (URLs, weitere Texte)
Literatur:
Als grundlegendes Lehrbuch wird "Neuroscience. Exploring the brain." von Bear, Connors, Paradiso aus dem
Lippincott, Williams and Wilkins Verlag empfohlen, und zwar in der englischen Variante. Die deutsche Ausgabe
("Neurowissenschaften" aus dem Spektrum Verlag) ist teurer und nicht in der im Seminar verwendeten Sprache.
Weitere Lehrbücher der Neurobiologie sind für die grundlegenden Inhalte ebenfalls geeignet.
Aktuelle Themen der Neurobiologie: Neurobionik (Seminar, 2 SWS)
Kohl T [L], Luksch H ( Kohl T )
Aktuelle Themen der Neurobiologie: Sinnesphysiologie (auf englisch) (Seminar, 2 SWS)
Luksch H ( Krabichler Q ), Kohl T, Vega-Zuniga T, Verhaal J
Aktuelle Themen der Neurobiologie: Zelluläre und molekulare Neurophysiologie (auf Englisch) (Seminar, 2 SWS)
Luksch H, Schemann M, Weigel S, Michel K, Verhaal J
Neurophysiologie und -pharmakologie (Seminar, 2 SWS)
Schemann M, Michel K, Bühner S, Luksch H, Weigel S
Modulhandbuch
Seite 139 von 209
Modulbeschreibung
WZ2461: Forschungspraktikum Neurobiologie am isolierten Gewebe
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
10
300
60
240
ausgewiesene Wert.
Regelmäßige, aktive Teilnahme ist erforderlich. Die Studierenden werden sich anhand von Eigenrecherche mit
geeigneter Literatur auf die jeweils untersuchten Aspekte der visuellen und multimodalen Verarbeitung vorbereiten;
die Studierenden werden in die Lage versetzt, in Übereinstimmung mit heute gültigen wissenschaftlichen
Standards Versuche zu planen, durchzuführen und auszuwerten. Im Anschluß an das Praktikum wird der
Kompetenzzuwachs in Form eines Protokolls schriftlich abgeprüft.
Prüfungsart:
immanenter
Prüfungscharakter
Folgesemester
Grundlegende Kenntnisse der Physiologie und Neurobiologie auf dem Niveau der Vorlesung "Neurobiologie" sind
nötig. Der vorherige Besuch dieser Vorlesung wird empfohlen.
Inhalt:
4 Wochen intrazelluläre Anfärbungen an Neuronen in Slices vom Hühnergehirn,
1 Woche Patch-Physiologie, 1 Woche optical imaging von brain slices. Die Studenten werden nach einer
Einarbeitungszeit die Versuche selbständig durchführen, auswerten und die Ergebnisse intern präsentieren.
Lernergebnisse:
Die Studierenden werden verschiedene Methoden auf ihre Anwendbarkeit in isolierten Geweben einschätzen
können, die theoretischen Hintergründe verstehen und praktisch anwenden können. Ziel ist das Erlernen von
Techniken zur Durchführung elektrophysiologischer Versuche an in vitro Präparaten. Dies beinhaltet die
Herstellung von in vitro Präparaten, Techniken zur Analyse neuronaler Netzwerke (z.B. Einzelzellableitung, Optical
Imaging, Tracing) sowie histologische Aufbereitungen. Darüber hinaus werden Auswertmethoden, statistische
Methoden und die grafische Darstellung von Ergebnissen erlernt.
Modulhandbuch
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Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Laborlehre
Lehrmethode: Fragend-entwickelnde Methode,Einzelarbeit, praktische Demonstrationen, eigenständige
Labortätigkeit, Experiment. Lernaktivitäten: Studium der ausgeteilten Grundlageninformationen, Bearbeiten von
Problemen und deren Lösungsfindung, Üben von labortechnischen Fertigkeiten, Produktion von
wissenschaftlichen Berichten..
Medienform:
Informationen werden auf Moodle kommuniziert (URLs, weitere Texte).
Literatur:
Als grundlegendes Lehrbuch wird "Neuroscience: Exploring the brain" von Baer empfohlen. Spezialliteratur steht
dem Studenten im Labor zur Verfügung.
Forschungspraktikum 'Neurobiologie am isolierten Gewebe' (Übung, 10 SWS)
Luksch H, Weigel S
Modulhandbuch
Seite 141 von 209
Modulbeschreibung
WZ2462: Forschungspraktikum Neurobiologie am intakten Organismus
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
10
300
60
240
ausgewiesene Wert.
Regelmäßige, aktive Teilnahme ist erforderlich. Die Studierenden werden sich anhand von Eigenrecherche mit
geeigneter Literatur auf die jeweils untersuchten Aspekte der visuellen, auditorischen und multimodalen
Verarbeitung vorbereiten; die Studierenden werden in die Lage versetzt, in Übereinstimmung mit heute gültigen
wissenschaftlichen Standards Versuche zu planen, durchzuführen und auszuwerten. Im Anschluß an das
Praktikum wird der Kompetenzzuwachs in Form eines Protokolls schriftlich abgeprüft.
Prüfungsart:
immanenter
Prüfungscharakter
Folgesemester
Erfolgreiche Teilnahme an den Vorlesungen "Tierphysiologie" sowie an entweder der Vorlesung "Neurobiologie"
oder "Sinnesphysiologie" sind nötig. Der vorherige Besuch dieser Vorlesungen wird empfohlen.
Inhalt:
2 Wochen extrazelluläre Ableitungen am IC der Maus, 2 Wochen extrazelluläre Ableitungen am OT des Huhns, 2
Wochen Verhaltenstraining bei Hühnern. Die Studenten werden nach einer Einarbeitungszeit die Versuche
selbständig durchführen, auswerten und die Ergebnisse intern präsentieren.
Lernergebnisse:
Studenten werden verschiedene Methoden zur Untersuchung von neuronalen Antworten kennen, Operationen an
verschiedenen Modellorganismen kennen und unter Anleitung durchführen können, Auswerteverfahren kennen
und durchführen können, Verhaltensexperimente konzipieren, durchführen und auswerten können.
Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Laborlehre
Lehrmethode: Fragend-entwickelnde Methode,Einzelarbeit, praktische Demonstrationen, eigenständige
Labortätigkeit, Experiment. Lernaktivitäten: Studium der ausgeteilten Grundlageninformationen, Bearbeiten von
Problemen und deren Lösungsfindung, Üben von labortechnischen Fertigkeiten, Produktion von
wissenschaftlichen Berichten..
Modulhandbuch
Seite 142 von 209
Medienform:
Informationen werden auf Moodle kommuniziert (URLs, weitere Texte).
Literatur:
Als grundlegendes Lehrbuch wird "Neuroscience: Exploring the brain" von Baer empfohlen. Spezialliteratur steht
dem Studenten im Labor zur Verfügung.
Zoologisches Modulpraktikum 2 für Fortgeschrittene: Forschungsmodul 'Neurobiologie am intakten Organismus'
(Übung, 10 SWS)
Firzlaff U, Luksch H, Verhaal J
Modulhandbuch
Seite 143 von 209
Modulbeschreibung
WZ2474: Forschungspraktikum Molekulare Physiologie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
10
300
60
240
ausgewiesene Wert.
Regelmäßige Teilnahme während des Praktikums ist Pflicht. Eine schriftliche Zusammenfassung der praktischen
Arbeit mit theoretischem Hintergrund dient der Überprüfung der im Praktikum erlernten Kompetenzen. Die
Studierenden sollen das Erarbeitete in angemessener wissenschaftlicher Weise dokumentieren und das dabei
erlernte Wissen zu strukturieren und in wesentlichen Aspekten darzustellen. Innerhalb der Arbeitsgruppe oder im
institutsinternen Seminar wird über die Arbeit ein Vortrag gehalten.
Prüfungsart:
30
Folgesemester
Vortrag:
Ja
Inhalt:
Zellisolierung, Zellkultur, Gewebekultur, Extraktion von NS und Proteinen, Transcriptomics, Expressionsanalytik
(real-time RT-PCR), Proteinanalytik mittels EIA, Blot-Techniken, Nutzung von Datenbanken, Sequenzanalyse,
Bioinformatik, Biostatistik, etc.
Lernergebnisse:
Die Studierenden erlangen nach Teilnahme am Modul Fähigkeiten und Fertigkeiten für das molekularbiologische
Arbeiten im Labor. Darüber hinaus erhalten Sie die Fähigkeit, die eigenen experimentellen Ergebnisse kritisch
nach Varianzursachen zu hinterfragen. Sie erlangen Kenntnisse über die korrekte Dokumentation der Ergebnisse.
Im Vortrag sowie im Praktikumsbericht legen sie einen schriftlichen Bericht hierüber ab, der besonders klar
aufzeigt, dass eine Strukturierung nach wissenschaftlichen Themen von der chronologischen Herangehensweise
unterschieden werden muss.
Lehrtechnik: Laborarbeit
Lehrmethode: Einzelarbeit, Experimente
Lernaktivitäten: Literaturrecherche, Durchführung von Experimenten, Kritische Beurteilung der Ergebnisse, Suche
nach Varianzursachen, Zusammenfassung im schriftlichen und mündlichen Vortrag
Modulhandbuch
Seite 144 von 209
Medienform:
Eigene Laborarbeit, Datenerfassung, Auswertung, Präsentationen mittels Powerpoint
Literatur:
Heinrich HD Meyer, physio@wzw.tum.de
Forschungspraktikum Molekulare Physiologie, BiologieM (Praktikum, 10 SWS)
Pfaffl M, Ulbrich S, Kliem H, Viturro E, Riedmaier-Sprenzel I
Modulhandbuch
Seite 145 von 209
Modulbeschreibung
WZ2479: Advanced Methods and Findings in Neurophysiology
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Englisch
Zweisemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
6
180
120
60
ausgewiesene Wert.
The students will prepare and discuss talks on advanced methods and current papers (supplied by us) in the field
of neurophysiology. Knowledge gained in the first seminar on methods (winter term) will help the students to
evaluate research papers critically that are presented in the second seminar. The final grade for the module is
calculated from grades that were achieved for the prepared talks (50%) and the active participation during
duscussions in the seminars (50%).
Prüfungsart:
immanenter
Prüfungscharakter
Semesterende
Gespräch:
Vortrag:
Ja
Ja
Basic knowledge in neurophysiology (e.g. lecture Neurobiology of Prof. Luksch).
Inhalt:
The Seminar consists of two parts: In the first part (winter term) the students will learn about advanced methods in
neurophysiology (e.g. live cell imaging with calcium- and membrane potential sensitive dyes, fluorescence
microscopy, tracing techniques, electrophysiology with patch clamp and sharp electrodes). Technical and
theoretical aspects as well as advantages and limitations of the techniques will be discussed. In the second part
(summer term) each student will present a current neurophysiological paper (supplied by the teachers). The paper
will be discussed critically in view of the techniques that were learnt in the first part.
Lernergebnisse:
The students will understand advantages and limitations of various neurophysiological methods. This will give them
the ability to evaluate research papers critically.
Seminar, Preparation of a (Powerpoint)-Presentation, independent research for relevant information, discussion.
Medienform:
Modulhandbuch
Seite 146 von 209
Literatur:
Michael Schemann, schemann@wzw.tum.de
Advanced methods in neurophysiology (Seminar, 2 SWS)
Bühner S, Luksch H, Mazzuoli-Weber G, Michel K, Schemann M, Weigel S
Aktuelle Themen der Neurobiologie: Zelluläre und molekulare Neurophysiologie (auf Englisch) (Seminar, 2 SWS)
Luksch H, Schemann M, Weigel S, Michel K, Verhaal J
Modulhandbuch
Seite 147 von 209
Modulbeschreibung
WZ2480: Entwicklungsgenetik der Pflanzen 2
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Sommersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
4
120
75
45
ausgewiesene Wert.
Klausur sowie einer Präsentation erbracht. Die Klausur (30 min) dient der Überprüfung der in der Vorlesung
erlernten theoretischen Kompetenzen. Die Studierenden zeigen in der Klausur, ob sie in der Lage sind, das
erlernte Wissen zu strukturieren und die wesentlichen Aspekte darzustellen. Sie sollen die erarbeiteten
Informationen beschreiben, interpretieren, sinnvoll kombinieren und auf ähnliche Sachverhalte übertragen können.
Im Seminar (20 min) werden die erlernten Fähigkeiten praktisch erprobt und am Präsentationsstil gearbeitet. Der
Durchschnitt aus Klausurnote und Seminarnote bildet die Gesamtnote des Moduls.
Prüfungsart:
mündlich
30 mündlich (VO) + 20
mündlich (SE)
Folgesemester
Vortrag:
Ja
Zum besseren Verständnis der Vorlesung sind gute Kenntnisse in Genetik, Molekularbiologie sowie Zellbiologie
erforderlich.
Inhalt:
Im Rahmen der Vorlesung werden vertiefte Kenntnisse der pflanzlichen Entwicklungsgenetik vermittelt. Die Inhalte
sind: Photomorphogenese, Blühinduktion, Meristemidentität, Blütenorganidentität, Blütenorganogenese,
Gametophyt, Fertilisationsprozess, parentale Kontrolle der Embryogenese. Im Seminar diskutieren und
präsentieren Studierende zentrale sowie neuere Aspekte der pflanzlichen Entwicklungsgenetik anhand relevanter
Originalliteratur.
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an dem Modul besitzen die Studierenden ein grundlegendes Verständnis von ausgewählten
pflanzlichen Entwicklungsvorgängen. Durch die Vorlesung sowie das Studium von Originalliteratur und dem
nachfolgenden Vortrag werden die Studierenden in die Lage versetzt, entwicklungsgenetische Ansätze und
Befunde zu verstehen, zu analysieren, im Kontext zu bewerten, und diese Aspekte vor einer Gruppe von
Wissenschaftlern eingängig darzustellen. Diese Fähigkeiten können sie auch auf andere biologische
Fragestellungen und/oder Organismen übertragen. Desweiteren soll dieses Modul das Interesse an
Entwicklungsgenetik und entwicklungsbiologischen Problemen und Fragestellungen fördern.
Modulhandbuch
Seite 148 von 209
Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Vorlesung, Präsentation.
Lernaktivitäten: Studium von Vorlesungsskript, -mitschrift, und Literatur. Verabeiten der Podcasts. Präsentieren
und kritisches Einordnen von Originalliteratur.
Medienform:
Skript, Audio- und Videopodcasts (Downloadmöglichkeit für Vorlesungsmaterial).
Literatur:
empfohlen:
Smith, A.M., Coupland, G., Dolan, L., Harberd, N., Jones, J., Martin, C., Sablowski, R., Amey, A. (2010) "Plant
Biology", Garland Science, UK.
Leyser, O., Day, S. (2003) "Mechanisms in Plant Development", Blackwell Publishing, Oxford, UK.
Kay Schneitz, schneitz@wzw.tum.de
Entwicklungsgenetik der Pflanzen 2 (Vorlesung, 2 SWS)
Schneitz K
Journal Club Entwicklungsgenetik der Pflanzen (Seminar, 2 SWS)
Schneitz K, Torres Ruiz R
Modulhandbuch
Seite 149 von 209
Modulbeschreibung
WZ2487: Entwicklung von Starterkulturen
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch/Englisch
Zweisemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
6
180
90
90
ausgewiesene Wert.
Regelmäßige, aktive Teilnahme an den Lehrveranstaltungen wird erwartet. Eine schriftliche/mündliche Prüfung
(120/20 min, benotet) dient der Überprüfung der in Vorlesung und Praktikum erlernten theoretischen Kompetenzen.
Die Studierenden zeigen in der Prüfung, ob sie in der Lage sind, das erlernte Wissen zu strukturieren und die
kombinieren und auf ähnliche Sachverhalte übertragen können. Die Prüfungsnote bildet die Gesamtnote des
Moduls. Zur Kontrolle des Verständnisses sowie der Fähigkeit zur Beschreibung, Auswertung und Interpretation
der im Praktikum durchgeführten Experimente ist ein Protokoll zu führen, welches durch Testat überprüft wird (eine
Benotung dient hier nur zur Feststellung von bestanden/nicht bestanden und zur potenziellen Dokumentation beim
Wechsel in Studiengänge, die ein Benotung erfordern).
Prüfungsart:
schriftlich oder mündlich
120 min schriftlich oder
20 min mündlich
Hausaufgabe:
Vortrag:
Ja
Ja
Bestandene Prüfung im Modul Einführung in die Mikrobiologie (zwingend), Modul Lebensmittelmikrobiologie
(empfohlen).
Inhalt:
Im Rahmen der Vorlesung werden folgende Fachgebiete behandelt: Allgemeine Sicherheit und Anforderungen an
Starterkulturen, Nachweis, Identifizierung, Florenanalyse, Lebensmittelfermentationen, Biochemie der
Milchsäurebakterien, Stoffwechsel von Kohlenhydraten, Citrat, Malat, Aminosäuren, Bildung von
Exopolysacchariden, Bakteriophagen, Bakteriozine, weitere besondere Eigenschaften von Milchsäurebakterien
und deren Bedeutung für die Anwendung in Lebensmitteln, Milchsäurebakterien als Probiotika und Therapeutika.
Im Praktikum werden diese Fachgebiete jeweils durch beispielhafte Versuche vertieft. Hierbei werden fermentierte
Lebensmittel im Labormaßstab hergestellt und analytisch begleitet, molekularbiologische Analysen der
Fermentationsflora selbt mitgebrachter Lebensmittel durchgeführt und die Auswirkungen und der Nachweis
besonderer Eigenschaften wie Bakteriophagenresistenz oder Bakteriozinbildung erprobt. Im Seminar wird ein
Teilbereich dieser Fachgebiete selbständig vertiefend recherchiert und zu einem Vortrag strukturiert. Seminar und
Praktikum werden in diesem Block je nach Verfügbarkeit der Praktikumsplätze wahlweise angeboten.
Modulhandbuch
Seite 150 von 209
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an den Modulveranstaltungen sind die Studierenden in der Lage zur Bewertung der Eignung
von Milchsäurebakterien für bestimmte Anwendungen in fermentierten Lebensmitteln, Kriterien für die Auswahl von
Starterstämmen, den Einfluss des Stoffwechsels von Milchsäurebakterien auf deren Wettbewerbskrraft, die
Aromabildung und Textureffekte in Lebensmitteln, die Rolle des Redoxhaushalts auf die Metabolitbildung in
Milchsäurebakterien zu erklären. Zudem erlangen Sie die Fähigkeit makroskopische Effekte in Lebensmitteln auf
biochemische Grundlagen zurückzuführen.
Vorlesung, Übung (alternativ Seminar)
Medienform:
Für diese Veranstaltung steht eine digital abrufbares Foliensammlung zur Verfügung, welche maßgeblich
prüfungsrelevant ist. Für das Praktikum steht ein Script zur Verfügung, das gleichzeitig als Protokollvorlage dient.
Literatur:
Lebensmittelmikrobiologie von J. Krämer, Ulmer
Food Microbiology - Fundamentals and Frontiers von Doyle, Beuchat, Montville, ASM Press Washington DC
Bacterial Pathogenesis von A. Salgers, Whitt, ASM Press
Microbiology of Foods von Ayres, Mundt, Sandine, Freemann
Mikrobiologische Untersuchungen von Lebensmitteln, praxisorientiert von J. Baumgart, Behr's Verlag
Allgemeine Mikrobiologie von H.-G. Schlegel, Thieme-Verlag
Biology of Microorganisms von T.D. Brock, M.T. Madigan, Prentice Hall
Rudi Vogel, rudi.vogel@wzw.tum.de
Entwicklung von Starterkulturen (Übung) (Übung, 2 SWS)
Ehrmann M
Entwicklung von Starterkulturen (Vorlesung) (Vorlesung, 2 SWS)
Vogel R
Seminar Starterkulturen (Seminar, 2 SWS)
Vogel R
Modulhandbuch
Seite 151 von 209
Modulbeschreibung
WZ2489: Humangenetik für Biologen
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
150
105
45
ausgewiesene Wert.
Methoden der Humangenetik, Populationsgenetik und genet. Epidemiologie, Chromosomenanomalien, Genetik
autosomaler, geschlechtsgebundener und mitochondrialer Erkrankungen, Genetik hämatologischer, metabolischer,
neurologischer Erkrankungen, Genetik von Augenerkrankungen, Gene und Krebs, Verhaltensgenetik, Genetische
Aspekte zur Evolution des Menschen.
Prüfungsart:
schriftlich
60 min.
Grundkenntnisse der allgemeinen und
molekularen Genetik; abgeschlossenes
Bachelor-Studium eines
biowissenschaftlichen Fachs.
Inhalt:
Methoden der Humangenetik, Populationsgenetik
und genet. Epidemiologie, Chromosomenanomalien,
Genetik autosomaler, geschlechtsgebundener und
mitochondrialer Erkrankungen, Genetik hämatologischer,
metabolischer, neurologischer Erkrankungen, Genetik
von Augenerkrankungen, Gene und Krebs, Verhaltensgenetik,
Genetische Aspekte zur Evolution des Menschen.
Modulhandbuch
Seite 152 von 209
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme besitzen die Studierenden vertiefte
theoretische Kenntnisse der Humangenetik und ihrer
besonderen Arbeitsweisen innerhalb der Genetik.
Sie sollten in der Lage sein, ihr erworbenes Wissen
auf humangenetische Fragestellungen anzuwenden.
Präsentation und Vortrag
Medienform:
Vortrag (Powerpoint-Präsentation); schriftliche Kurzzusammenfassung
Literatur:
W. Buselmaier, G. Tariverdian: Humangenetik für Biologen, Springer-Verlag, 2006
J. Graw: Genetik, 5. Aufl., Springer-Verlag, 2010
E. Passarge: Taschenatlas Humangenetik, Thieme-Verlag, 3. Auflage 2008
C. Schaaf, J. Zschocke: Basiswissen Humangenetik; Springer-Verlag 2008
M. Speicher, A. Stylianos, A. Motulsky: Vogel & Motulskys Human Genetics, Springer-Verlag 2010
Jochen Graw, graw@helmholtz-muenchen.de
Vorlesung Humangenetik für Biologen (Vorlesung, 3 SWS)
Graw J
Modulhandbuch
Seite 153 von 209
Modulbeschreibung
WZ2490: Neurogenetische Grundlagen von neurologischen und
psychiatrischen Erkrankungen
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch/Englisch
Zweisemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
6
180
120
60
ausgewiesene Wert.
Aktive Teilnahme und Präsenz in den Vorlesungen ist Voraussetzung zur Zulassung an der schriftlichen Prüfung.
Eine schriftliche Prüfung in Form einer Klausur am Ende des Sommersemesters (benotet) dient der Überprüfung
der erlernten Inhalte und der Fähigkeit in begrenzter Zeit Probleme zu erkennen und zu lösen. Die Prüfungsfragen
gehen über den gesamten zwei-semestrigen Vorlesungsstoff. Die Antworten erfordern eigene Formulierungen.
Prüfungsart:
schriftlich
60 min
Folgesemester
Theoretische Kenntnisse in der Genetik (Entwicklungsgenetik der Tiere) sind wünschenswert
Inhalt:
1. Molekulare und zellbiologische Prinzipien der Entwicklung des zentralen Nervensystems: Neurogenese Neuronale Migration - Netzwerkbildung - Synaptogenese - elektrische Maturation; 2. Morphologie und Funktion
des Großhirns, Kleinhirns, Hippcampus, Basalganglien, Amygdala, Rückenmarks; 3. Erkrankungen des ZNS und
deren molekularen Grundlagen: Alzheimer, Parkinson, Schizophrenie, Depression, Infektionen,
Rückenmarkserkrankungen, Schlaganfall, Epilepsie, Prionerkrankungen, Erkrankungen des Hypothalamus
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an der Modulveranstaltung besitzen die Studierenden das grundlegende theoretische
Verständnis über die Entstehung des Nervensystems. Sie sollen die Prinzipien der molekularen Regulation dieser
Prozesse verstehen und diese erklären können, Kenntnisse über die Funktion und Morphologie zentraler
Strukturen des ZNS besitzen und die Pathogenese (molekulare) von Erkrankungen des ZNS verstehen. Des
weiteren soll das Modul Interesse an der Neurogenetik fördern.
Lehrmethode: Vorlesung mit fragend-entwicklender Methode
Lernaktivitäten: Studium von Literatur, Lernen von grundlegenden Prozessen, Problemlösung
Modulhandbuch
Seite 154 von 209
Medienform:
Powerpoint, Skriptum auf der neuen Moodle-Plattform, Filme
Literatur:
empfohlen:
Larry R. Squire
Fundamental Neuroscience
Ed. by Larry R. Squire, Darwin Berg, Floyd E. Bloom et al.
Wurst Wolfgang, wurst@helmholtz-muenchen.de
Vorlesung Neurogenetik: Grundlagen von neurologischen und psychiatrischen Erkrankungen (Vorlesung, 2 SWS)
Wurst W, Deussing J, Floss T, Huber Broesamle A, Kühn R, Lie C, Prakash N, Schick J, Vogt Weisenhorn D
Vorlesung Neurogenetik II: Grundlagen von neurologischen und psychiatrischen Erkrankungen (Vorlesung, 2
SWS)
Wurst W, Vogt Weisenhorn D, Chapouton P, Deussing J, Floss T, Huber Broesamle A, Kühn R, Prakash N, Schick
J, Westmeyer G
Modulhandbuch
Seite 155 von 209
Modulbeschreibung
WZ2539: Proseminar Mikrobielle Wirkstoffe
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
2
60
30
30
ausgewiesene Wert.
Regelmäßige, aktive Teilnahme an der Lehrveranstaltung wird erwartet. Beurteilung der Vortragsleistung
(persönliche Präsentation, Folien, Handouts) und anschließenden Diskussion der von den Teilnehmern
präsentierten Seminarvorträge.
Prüfungsart:
mündlich
30 mündlich
Voraussetzung sind Kenntnisse der Grundlagen der Mikrobiologie (Vorlesung Allgemeine Mikrobiologie),
Humanbiologie und Biochemie. .
Inhalt:
Vermittlung von aktuellen Kenntnissen zur Produktion und Wirkungsweise von mikrobiellen Wirkstoffen (z.B.
Toxine, Bacteriocine, Antibiotika, Pathogenitätsfaktoren und Pathogenitätsmechanismen von bakteriellen
Krankheitserregern).
Lernergebnisse:
Nach der Absolvierung dieses Moduls sollen folgende Lernziele erreicht worden sein:
" Neue aktuelle Kenntnisse über grundlegende Themen der Mikrobiologie anhand von verschiedenen pathogenen
Mikroorganismen gewinnen.
" Die Fähigkeit zur Präsentation wissenschaftlicher Inhalte der Mikrobiologie in verständlicher Form zu erwerben.
" Kritisches und kreatives Denken fördern sowie Fähigkeiten zum fachlichen Diskurs entwickeln.
" Interesse an Mikrobiologie, mikrobiologischen Problemen und die Bedeutung von Mikroorganismen für Mensch
und Umwelt fördern.
Die erworbenen Kenntnisse bereiten die Studierenden auf die eigenständige Vorbereitung von wissenschaftlichen
Vorträgen und deren Präsentation vor.
Modulhandbuch
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Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Seminar; Lehrmethode: Seminarvorträge der TeilnehmerInnen; anschließende
Diskussion der Vorträge.
Lernaktivitäten: Literaturstudium, Präsentationsvorbereitung, kritische Auseinandersetzung mit Inhalten und
Präsentationsleistung durch Besprechung mit dem Dozenten. .
Medienform:
Handouts.
Literatur:
Unterschiedlich, je nach Themenstellung.
Proseminar - mikrobielle Wirkstoffe [MID WZ2539] (Seminar, 2 SWS)
Liebl W
Modulhandbuch
Seite 157 von 209
Modulbeschreibung
WZ2540: Forschungspraktikum Mikrobielle Physiologie und Genregulation
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
10
300
40
260
ausgewiesene Wert.
Regelmäßige, aktive Teilnahme am Praktikum wird erwartet. Im Rahmen der Veranstaltung erfolgt eine Beurteilung
praktischer Fertigkeit, der Fähigkeit zur Präsentation der erzielten Resultate in Arbeitsbesprechungen und in einer
Anschlusspräsentation, sowie eine Bewertung des abzugebenden ausführlichen Protokolls über die
durchgeführten Experimente. Die Studierenden zeigen in dem Protokoll, ob sie in der Lage sind, die von ihnen
durchgeführten Arbeiten zu strukturieren und die wesentlichen Aspekte darzustellen. Sie sollen die Ergebnisse
beschreiben, interpretieren und in einen sinnvollen Zusammenhang zu dem im Praktikum vermittelten
Kenntnisstand stellen können.
Prüfungsart:
immanenter
Prüfungscharakter
Voraussetzung sind gute Grundkenntnisse in Mikrobiologie und Biochemie, grundlegende mikrobiologische und
biochemische Arbeitstechniken, sowie Teilnahme am Modul Organismische und Molekulare Mikrobiologie oder
vergleichbare Vorkenntnisse.
Inhalt:
Im Rahmen des Forschungspraktikums arbeiten die Teilnehmer unter Anleitung an aktuellen Forschungsprojekten
der Arbeitsgruppen des Lehrstuhls für Mikrobiologie. Inhaltliche Schwerpunkte sind Molekularbiologie,
Genregulation und Mikrobielle Physiologie. Es werden spezielle Methoden des praktischen Arbeitens mit
Mikroorganismen, der molekularbiologischen Charakterisierung und Modifizierung, der wachstumsphysiologischen
und/oder enzymatischen Charakterisierung vermittelt. Durch Eigenstudium von fachwissenschaftlicher Literatur
werden vertiefte Kenntnisse zur jeweils bearbeiteten Thematik erworben.
Modulhandbuch
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Lernergebnisse:
Das forschungsnahe Praktikum ermöglicht unter Anleitung relativ eigenständiges
mikrobiologisches/molekularbiologisches Arbeiten und dient der Vorbereitung der Studierenden auf künftige
experimentelle mikrobiologische Abschlussarbeiten (Masterarbeit, Doktorarbeit). Nach der Absolvierung dieses
Moduls sollen folgende Lernziele erreicht worden sein:
" Durch die Mitarbeit an einem Forschungsprojekt Erfahrung unter Bedingungen des Laboralltags gewinnen.
" Ein breites experimentelles Know-how erwerben. Die angewandten mikrobiologischen, genetischen und/oder
biochemischen Spezialmethoden sollen inklusive Sicherheits- und Materialwissen verstehend nachvollzogen und
handlungsmäßig beherrscht werden.
" Ein hohes Maß an Selbständigkeit im Planen und Durchfüren von Experimenten erreichen.
" Die Fähigkeit zur Führung von Aussagekräftigen, nachvollziehbaren Laborprotokollen üben.
" Kritisches und kreatives Denken fördern sowie Fähigkeiten zum Lösen von Problemen entwickeln.
- Kompetenz zur sorgfältigen Durchführung und Protokollierung von Laborexperimenten, kritischen Hinterfragung
von Versuchsdaten und übersichtlichen schriftlichen Darstellung von Experimentalergebnissen.
Das Modul soll weiterhin das Interesse an Mikrobiologie, mikrobiologischen Problemen und die Bedeutung von
Mikroorganismen für Mensch und Umwelt fördern.
Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Laborpraktikum, Individuelle Anleitung im experimentellen Arbeiten durch
erfahrene Labormitglieder; Kritische Besprechung von Experimentalergebnissen mit den Betreuern und
Arbeitsgruppenleitern..
Lernaktivitäten: Literaturstudium, experimentelles Arbeiten; Anfertigen eines aussagekräftigen, nachvollziehbaren
Laborprotokolls; Vorbereitung von Kurzpräsentationen von Ergebnissen.
Medienform:
Literatur:
Wissenschaftliche Fachliteratur nach Bedarf.
Forschungspraktikum Mikrobielle Physiologie und Genregulation (Praktikum, 10 SWS)
Liebl W, Ehrenreich A
Modulhandbuch
Seite 159 von 209
Modulbeschreibung
WZ2542: Forschungspraktikum Mikrobielle Diversität und
Molekularphylogenie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
10
300
40
260
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
immanenter
Prüfungscharakter
Inhalt:
der Arbeitsgruppen des Lehrstuhls für Mikrobiologie. Es werden spezielle Methoden des praktischen Arbeitens mit
Mikroorganismen und der Anwendung von Methoden zur Identifizierung, molekularbiologischen Charakterisierung
und systematischen Einordnung von Mikroorganismen vermittelt. Inhaltliche Schwerpunkte sind Mikrobielle
Diversität, Molekularbiologie und Molekularphylogenie. Durch Eigenstudium von fachwissenschaftlicher Literatur
werden vertiefte Kenntnisse zur jeweils bearbeiteten Thematik erworben.
Modulhandbuch
Seite 160 von 209
Lernergebnisse:
Medienform:
Literatur:
Forschungspraktikum Mikrobielle Diversität und Molekularphylogenie (Praktikum, 10 SWS)
Liebl W, Ludwig W
Modulhandbuch
Seite 161 von 209
Modulbeschreibung
WZ2545: Forschungspraktikum Biotechnologie der Tiere
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
10
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
Vortrag:
Hausarbeit:
Inhalt:
Lernergebnisse:
Medienform:
Literatur:
,
Modulhandbuch
Seite 162 von 209
Biotechnologie der Tiere - Großpraktikum (Praktikum, 10 SWS)
Schnieke A
Modulhandbuch
Seite 163 von 209
Modulbeschreibung
WZ2549: Peptidchemie und Biochemie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
4
120
75
45
ausgewiesene Wert.
Gesamtnote: besteht aus der Note der schriflichen Prüfung zur Vorlesung "Chemische Prinzipien der Peptid- und
Proteinsynthese" und der Note der Leistung im Seminar "Proteinmissfaltung and -aggregation bei
zelldegenerativen Krankheiten".(50-50)
Prüfungsart:
60 schiftlich (Vorlesung)
und im Seminar: 60
mündlich und Handout
Gespräch:
Ja
Ja
Vortrag:
Organische Chemie; Biochemie
Inhalt:
Die Vorlesung des Moduls vermittelt grundlegende Kenntnisse über die chemischen Prinzipien und die Methoden
der chemischen Peptid- und Proteinsynthese. Im Seminar finden dann betreute Präsentationen (auf Englisch) von
wissenschaftlichen Artikeln mit den Ergebnissen aus aktuellen Forschungsarbeiten im Gebiet der Peptid- und
Proteinmissfaltung und -aggregation im Zusammenhang mit zellgenerativen Krankheiten statt und es wird ein
Handout über jede Präsentation vom Studenten angefertigt.
Lernergebnisse:
Ein breites Spektrum von Kenntnissen im Gebiet der chemischen Peptid- und Proteinsynthese, Protein-Protein
Wechselwirkungen und der Proteinfaltungs- und -missfaltungsprozesse sowie der entsprechenen
Zusammenhängen mit zellgegenerativen Krankheiten. Peptidchemische, biochemische, und biophysikalische
Kenntnisse über Methoden die in den obigen Gebieten Anwendung finden werden auch ermittelt.
Freitext
Medienform:
Folien / Powerpoint / Tafelarbeit
Modulhandbuch
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Literatur:
Norbert Sebald und Hans Dieter Jakubke: Peptides: Chemistry and Biology (Wiley-VCH) und ausgeteilte
Veröffentlichungen im Rahmen des Seminars.
Aphrodite Kapurniotu, akapurniotu@wzw.tum.de
Chemische Peptid- und Proteinsynthese (Vorlesung, 1 SWS)
Kapurniotu A
Proteinmissfaltung und -aggregation bei zelldegenerativen Krankheiten (Seminar, 2 SWS)
Kapurniotu A
Modulhandbuch
Seite 165 von 209
Modulbeschreibung
WZ2550: Forschungspraktikum Peptidchemie und Biochemie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch/Englisch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
10
300
60
240
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
Folgesemester
Organische Chemie-Kenntnisse erforferlich; Teilnahme an Vorlesung "Chemische Peptid und
Proteinsyntheseerforderlich: empfohlen.
Inhalt:
Peptidsynthese und Struktur-Aktivitätsbeziehungen von biologisch-aktiven Peptiden: 6-wochiges
Forschungspraktikum in einem aktuellen Forschungsprojekt der Arbeitsgruppe. Die Arbeiten beinhalten
Peptidsynthese, Peptidreinigung und biochemische/biophysikalische Charakterisierung der Peptide und ihrer
Strukturaktivitätsbeziehungen mittels moderner Methoden der Chemie/Biochemie ( z.B.
Festphasenpeptidsynthese; HPLC; MS; UV-/Circulardichroismus-/Fluoreszenzspektroskopie).
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an diesem Modul besitzen die Studierenden das grundlegende Verständnis über Methoden
der Peptidsynthese und Methoden zur Struktur-Aktivitätsbeziehungsuntersuchungen von biologisch aktiven
Peptiden. Darüberhinaus haben sie einige grundlegende Arbeitstechniken im Gebiet der Peptidsynthese,
Peptidreinigung und der biochemischen-biophysikalischen Charakterisierung der synthetischen Peptiden (zB. im
Bezug auf ihre Konformation und Wechselwirkungen) erlernt und geübt und sind in der Lage die Ergebnisse ihrer
Forschungsarbeit richtig zu protokollieren, auszuwerten, zu interpretieren, kritisch zu hinterfragen, zu diskutieren
und zu präsentieren.
Das Modul soll weiterhin zum selbständigen Arbeiten in der protein(peptid)chemischen bzw. -biochemischen
Forschungsthematik beitragen.
Anleitungsgespräche, Demonstrationen, Experimente, Partnerarbeit, Ergebnisbesprechungen.
Üben von labortechnischen Fertigkeiten und Arbeitstechniken; Anfertigung von Protokollen.
Modulhandbuch
Seite 166 von 209
Medienform:
Literatur:
Aphrodite Kapurniotu, akapurniotu@wzw.tum.de
Peptidchemie und Biochemie (Praktikum, 20 SWS)
Kapurniotu A, Yan L, Beißwenger M
Modulhandbuch
Seite 167 von 209
Modulbeschreibung
WZ2561: Forschungspraktikum Protein- und Wirkstoffmodellierung
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
10
300
100
200
ausgewiesene Wert.
Es wird erwartet, dass sich die Studierenden regelmässig und aktiv am Praktikum beteiligen. Zur
Leistungskontrolle ist ein Protokoll anzufertigen. Die Studierenden sollen Ihre Kenntnisse aus zuvor besuchten
Veranstaltungen an aktuellen Fragestellungen praktisch anwenden und zeigen, dass sie in der Lage sind, die
Resultate auszuwerten, zu interpretieren und prägnat darzustellen sowie Transferaufgaben zu bewältigen. Die
Gesamtnote des Moduls setzt sich aus Mitarbeit und Protokoll zusammen.
Prüfungsart:
immanenter
Prüfungscharakter
Vorlesung "Simulation und Modellierung biologischer Makromoleküle" oder Vorlesung "Computer-aided Drug und
Protein Design"
Inhalt:
Praktische Anwendung von Modellierungssoftware aus den Bereichen Protein-Ligand-Docking,
Molekülsimulation, Proteinengineering auf aktuelle Fragestellungen. Je nach Neigung des Studierenden koennen
zusätzlich auch programmiertechnische Fragestellungen bearbeitet werden.
Die Veranstaltung richtet sich an Studierende der Fachrichtungen Biologie, Molekulare Biotechnologie,
Bioinformatik, Biochemie, Chemie und Biophysik (Master/Bachelor 5./6. Semester).
Lernergebnisse:
Die Studierenden sind mit der Handhabung und dem Anwendungsbereich verschiedener Programme aus den
Bereichen Protein-Ligand Docking, Molekülsimulation und Proteinengineering vertraut und können diese
eigenständig für entsprechende wissenschaftliche Fragestellungen anwenden.
Lehrtechnik: Praktikum. Lehrmethode: praktische Aufgaben, praktikumsbegeleitende Betreuung,
Anleitungsgespräche. Lernaktivitäten: Studium von Vorlesungsmaterial und Literatur, praktisches Arbeiten am
Computer, Anfertigung von Protokollen.
Modulhandbuch
Seite 168 von 209
Medienform:
Praktikumsanleitungen, für theoretischen Hintergund Skript zu dne Vorlesungen, projektspezifische Literatur
Literatur:
Allgemeine Literaturempfehlungen werden in den Vorlesungen und projektspezifische Literatur wird während des
Praktikums gegeben.
Iris Antes, antes@wzw.tum.de
Forschungspraktikum Protein- und Wirkstoffmodellierung (Praktikum, 20 SWS)
Antes I
Modulhandbuch
Seite 169 von 209
Modulbeschreibung
WZ2579: Analysis of High-Throughput Datasets for Biologists
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Englisch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
8
240
160
80
ausgewiesene Wert.
Writing a paper-like research report and one exam at the end of the course.
Prüfungsart:
schriftlich
Vortrag:
Ja
Inhalt:
Lectures will give insight into how biological knowledge can be generated from modern omic technologies
(transcriptomic, proteomic, metabolomic) and illustrate different ways of analyzing such data.
Practicals will consist of 1) how to use many freely available computing tools to work more powerfully and
effectively 2) computer exercises that will enable the participants to apply statistical methods to the analysis of
large scale biological data 3) gain knowledge on how to utilize existing biological databases in their research.
Lernergebnisse:
Scientists find themselves facing exponentially larger data sets and analyses without suitable tools to deal with
them. Many biologists end up using spreadsheet programs for most of their data-processing tasks and spend
hours clicking around or copying and pasting, and then repeating the process for other data files.
Upon successful completion of the module students are familiar with advanced data analysis methodologies and
hands-on competence on the latest available tools for the analysis of high throughput data sets. They gain basic
knowledge on what information can be found and where, as well as how can the information be
accessed/retrieved.
Vorlesung und Übung
Medienform:
Skriptum
Modulhandbuch
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Literatur:
Amin Moghaddas Gholami, amin@tum.de
Analysis of High-Throughput Datasets for Biologists (Übung, 4 SWS)
Küster B [L], Moghaddas Gholami A
Analysis of High-Throughput Datasets for Biologists (Vorlesung, 4 SWS)
Moghaddas Gholami A, Küster B
Modulhandbuch
Seite 171 von 209
Modulbeschreibung
WZ2580: Protein-Engineering
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Sommersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
150
105
45
ausgewiesene Wert.
im Eigenstudium). Eine Klausur bildet den Abschluss des Moduls und dient der Übersprüfung der erlernten
Kompetenzen. Die Lernenden zeigen in einer Klausur, ob sie die erarbeiteten Informationen beschreiben,
interpretieren und auf ähnliche Sachverhalte übertragen sowie die unterschiedlichen Informationen zu einem
neuartigen Ganzen verknüpfen können. Der Lehrende gibt Termin der Prüfungsleistung (Klausur) zu Beginn der
Lehrveranstaltung bekannt.
Prüfungsart:
schriftlich
90
Folgesemester
Proteinbiochemie.
Inhalt:
In der Vorlesung "Methodische Grundlagen des Protein-Engineerings" werden die wissenschaftlichen Methoden
und Arbeitstechniken des Protein-Engineerings auf theoretischer Grundlage erläutert. Schwerpunkte sind die
gentechnische Produktion von Proteinen in Bakterien (cytoplasmatisch und periplasmatisch), Verfahren zur
ortsgerichteten Mutagenese, Herstellung von Genbibliotheken, Selektions- und Screeningmethoden sowie
Verfahren zur Bestimmung der Affinität zwischen Proteinen (z.B. Antikörpern, Rezeptoren) und ihren Liganden
oder Interaktionspartnern.
In der Vorlesung "Engineering Therapeutischer Proteine" wird das Potential gentechnisch hergestellter Proteine als
neue Generation von biologischen Arzneimitteln erläutert. Die pharmakologischen Eigenschaften (Affinität zu
medizinisch relevanten Zielstrukturen, Effektorfunktionen, Plasma-Halbwertszeit) können durch ProteinEngineering wie auch mit proteinchemischen Methoden gezielt manipuliert werden. Anhand aktueller Fallbeispiele
(Insulin, Wachstumsfaktor, humanisierte Antikörper u.a.) wird die Entwicklung und Optimierung innovativer
Biopharmazeutika dargestellt.
Modulhandbuch
Seite 172 von 209
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an dem Modul verfügen die Studierenden über den theroretischen Hintergrund zur
Entwicklung von Proteinen als biomedizinische Laborreagenzien sowie als therapeutische Wirkstoffe mittels
Protein-Engineering. Lernergebnisse umfassen Kenntnisse über die Entwicklung moderner Proteintherapeutika
auf molekularer Basis mittels gentechnischer Methoden sowie deren ökonomisches Potential. Weiterhin lernen die
Studierenden aus anwendungsbezogener Perspektive die Zusammenhänge zwischen Primärstruktur, Faltung und
biochemischer Funktion von Proteinen sowie die Bedeutung biophysikalischer Wechselwirkungen innerhalb der
Polypeptidkette und mit den entsprechenden Liganden/Substraten. Damit sind die Studierenden in der Lage,
Strategien zur Optimierung von Proteinen für praktische Anwendungen zu entwickeln.
Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Vorlesung/Präsentation; Lernaktivität: Literaturstudium; Lehrmethode: Vortrag
Medienform:
Die Vorlesungen erfolgt mit graphischen Präsentationen (Projektor und PowerPoint). Die Folien werden den
Studenten in elektronischer Form oder als Ausdruck rechtzeitig zugänglich gemacht.
Literatur:
Wink, "Molekulare Biotechnologie: Konzepte, Methoden und Anwendungen", Wiley-VCH 2011.
Lottspeich et al., "Bioanalytik", Spektrum 2012.
Williamson & Williamson, "How Proteins Work", Garland 2011.
Walsh, "Biopharmaceuticals: Biochemistry and Biotechnology", John Wiley & Sons 2003.
Arne, Prof. Dr. Skerra, skerra@tum.de
Methodische Grundlagen des Protein-Engineerings (Vorlesung, 1 SWS)
Schlapschy M
Engineering therapeutischer Proteine (Vorlesung, 1 SWS)
Skerra A
Modulhandbuch
Seite 173 von 209
Modulbeschreibung
WZ2581: Pflanzenbiotechnologie
Plant Biotechnology
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch/Englisch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
5
150
108
42
ausgewiesene Wert.
Klausur sowie einer Präsentation erbracht. Die Studierenden dokumentieren in der Klausur ein fundiertes Wissen
über Möglichkeiten in der modernen Pflanzentechnologie. Sie zeigen, dass sie Methoden und Ziele der
Pflanzentechnologie kennen und über ihre Anwendung Bescheid wissen. Sie zeigen, dass sie Wissen über
Planzenmolekularbiologie und Pflanzenbiochemie besitzen und daraus Fragestellungen für technologische
Ansätze ableiten können und zu einer kritische Bewertung von technologischen Ansätzen in der Lage sind. Die
Klausurnote und Seminarnote bilden mit der Gewichtung 3:2 Gesamtnote des Moduls.
Prüfungsart:
schriftlich
90 minutes
Grundlagen aus Genetik, Genomik, Entwicklungsgenetik der Pflanzen, Biochemie, Botanik.
Inhalt:
Diese Lehrveranstaltung besteht aus einer Vorlesung (2SWS) und einem Seminar (1SWS).
Im Vorlesungsteil (3 ECTS) werden gängige Methoden der Biotechnologie der Pflanzen und der
Pflanzengentechnik vor, ihre Vor- und Nachteile werden diskutiert. Aktuelle Fragestellungen werden an Hand von
ausgewählten Beispielen aus Originalarbeiten besprochen, dabei bildet die Pflanzenbiochemie einen Schwerpunkt.
Themen der Vorlesung sind:
Status gentechnisch veränderter Pflanzen: Gentechnikrecht, Anbau, Konzepte;
Transiente Expression;
Erzeugung gentechnisch veränderter Pflanzen, Methoden, Vektoren;
Konzepte zur Steigerung des Ertrags;
Konzepte zur Steigerung der Qualität;
Neue Potentiale in der Grundlagenforschung;
Modellsystem Arabidopsis: Entwicklung neuer Tecniken;
Metabolic Engineering.
Im Seminarteil (2ECTS) werden Themen der Pflanzenbiotechnologie und Pflanzengentechnik, die am WZW
bearbeitet werden aus der Praxis überwiegend von Doktoranden und Post-Docs vorgestellt. Zur Vertiefung des
Stoffes wird von den Vortragenden eine relevante Originalarbeit zum Eigenstudium ausgewählt.
Modulhandbuch
Seite 174 von 209
Lernergebnisse:
Vertiefes Wissen über Methoden und Ziele in Pflanzenbiotechnologie und Pflanzengentechnik.
Vorlesung, Präsentation, Vortrag
Medienform:
Folien der Vorlesung stehen zur Verfügung
Literatur:
Biochemistry and Molecular Biology of Plants. Buchanan, Gruissem and Jones, John Wiley & Sons, 2002; The
Condensed Protocols: From Molecular Cloning: A Laboratory Manual. Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2006;
Plant Biotechnology: The Genetic Manipulation of Plants. Adrian Slater, Nigel W. Scott und Mark R. Fowler, Oxford
University Press, 2008.
Pflanzenbiotechnologie (Seminar, 2 SWS)
Frey M, Glawischnig E, Schwab W
Pflanzenbiotechnologie (Vorlesung, 2 SWS)
Frey M [L], Frey M, Glawischnig E, Schwab W
Modulhandbuch
Seite 175 von 209
Modulbeschreibung
WZ2582: In vitro-Modelle der Zellbiologie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
150
105
45
ausgewiesene Wert.
Die regelmäßige, aktive Teilnahme an der Lehrveranstaltung wird erwartet. Eine Klausur (60 min, benotet) dient
der Überprüfung der in der Vorlesung angeeigneten theoretischen Kompetenzen. Die Studierenden zeigen in der
Sachverhalte übertragen können. Die Klausurnote bildet die Gesamtnote des Moduls. Die Vorlesung wird ergänzt
durch Arbeitskreise in angemessener Gruppenstärke, in denen einzelne Themen bzw Fragestellung der Vorlesung
intensiver bearbeitet, die Resultate in geeigneter Form widergegeben (Präsentation bzw. schriftliche
Zusammenfassung in Kurzform) und anschließend diskutiert werden. Die Qualität der Aufbereitung muß der
Fragestellung angemessen sein und bildet ein Kriterium für die Prüfungszulassung. Die Resultate der Arbeitskreise
gehen nicht in die Modulnote ein.
Prüfungsart:
schriftlich
60 schriftlich
Folgesemester
Hausaufgabe:
Vortrag:
Ja
Ja
Zur erfolgreichen Teilnahme am Modul wird das Basiswissen Zellbiologie aus dem BSc-Studium Molekulare
Biotechnologie vorausgesetzt. Für das Modul wesentliche Grundlagen werden im einführenden Abschnitt
"Signaltransduktion" nochmals aufgegriffen und vertieft.
Inhalt:
In der Vorlesung wird zunächst das methodische Spektrum zur Analyse und Aufklärung zellulärer Signalwege
vorgestellt. Daran schließt sich im Schwerpunkt die Erläuterung unterschiedlicher in vitro-Modelle für die
molekulare Zellbiologie an. Darauf aufbauend sollen die Studierenden in Arbeitskreisen experimentelle Konzepte
und Strategien zur Auflösung konkreter zellbiologischer Fragestellung entwickeln. Beispiele für Vorlesungsthemen
sind u.a. Methoden zur Aufklärung zellulärer Signalwege, Signaltransduktion in Zellkulturen, intra- und
interzelluläre Modelle, endogene und exogene Faktoren der in vitro-Differenzierung, Rezeptor-Tracking,
Krebsstammzellen, Zell-Chips für das Drug screening, Prinzipien des HTS/HCS, zellfreie Systeme, synthetische
Zellen. Die Themen sind nicht fixiert. Einzelne Vorlesungsthemen werden in Arbeitskreisen vertieft.
Modulhandbuch
Seite 176 von 209
Lernergebnisse:
Nach Teilnahme an den Modulveranstaltungen sind die Studierenden in der Lage, aus dem Methodenspektrum
zur Erforschung der zellulären Signaltransduktion geeignete Strategien auszuwählen, zu kombinieren und gezielt
einzusetzen. Zudem sollen Sie eine fundierte Befähigung darin erlangen, die Auswirkung technischer
Manipulationen/Applikationen auf zelluläre Reaktionen, insbesondere auf Signalwege einzuschätzen und diesen
Aspekt bei der Konzeption von Experimenten sowie der Interpretation der Resultate entsprechend zu
berücksichtigen.
Lehrtechnik: Vorlesung.
Lernaktivitäten: Studium von Vorlesungsskript, -mitschrift und Literatur; Arbeit in kleinen Gruppen zur Aufbereitung
von Themen bzw Fragestellungen der Vorlesung in Form von kurzen Präsentationen bzw. schriftlichen
Zusammenfassungen.
Medienform:
Präsentationen mittels Powerpoint (Downloadmöglichkeit für Vorlesungsmaterial); Tafelarbeit
Literatur:
Es ist kein Lehrbuch verfügbar, das alle Inhalte dieses Moduls abdeckt. Das Präsentationsmaterial wird durch
spezifische Literaturhinweise für die einzelnen Themen ergänzt. Als Grundlagen werden empfohlen:
Lodish, Berk, Matsudaira, Kaiser, Krieger, Scott, Zipurky, Darnell: " Molekulare Zellbiologie, 4. Auflage, Spektrum
Akademischer Verlag, Heidelberg, Berlin, 2001.
Becker, Kleinsmith, Hardin: The world of the cell, 6. Auflage, Pearson Education, Inc., San Francisco, 2006.
In vitro-Modelle der Zellbiologie (Vorlesung, 3 SWS)
Kramer K
Modulhandbuch
Seite 177 von 209
Modulbeschreibung
WZ2583: Bioinformatik / Genomik
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Zweisemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
5
180
105
75
ausgewiesene Wert.
Modellierung und Simulation biologischer Macromoleküle, Methoden der Genomanalyse: Die theoretischen Inhalte
der Vorlesung werden anhand einer schriftlichen Klausur überprüft. Klausur 100%
Prüfungsart:
schriftlich
90
Keine
Inhalt:
Modellierung und Simulation biologischer Macromoleküle: Anwendungsorientierte Einführung in computergestützte
Methoden zur strukturellen Modellierung biologischer Makromoleküle und deren Anwendung in den Bereichen
Wirkstoff- und Proteindesign: Molekulare Modelle: Molekulare Kraftfelder, Docking- und
Proteinfaltungsscoringfunktionen. Algorithmen: Optimierungsmethoden, systematische Suchverfahren,
stochastische Ansätze, Molekulardynamik. Methoden der Genomanalyse: Analyse von DNA Sequenzen,
Genomsequenzierung, Genvorhersage, Operonstrukturen, alternatives Splißen, RNA Strukturen, microRNA,
Repeats, Pseudogene, krankheitsrelevante Mutationen
Lernergebnisse:
Modellierung und Simulation biologischer Macromoleküle: Die Studenten sind mit den Grundzügen der Methoden
zur Modellierung und Simulation biologischer Makromoleküle vertraut. Sie kennen die anwendungsorientierten
Unterschiede zwischen verschiedenen molekularen Modellen und Algorithmen und haben gelernt, die passenden
Modelle/Algorithmen für eine gegebene Anwendung auszuwählen. Methoden der Genomanalyse: Fundierte
Kenntnisse wichtiger Konzepte und Methoden der Genomanalyse, Fähigkeit ein breites Spektrum relevanter
Methoden der Genomanalyse zu beurteilen und ausgewählte Methoden der Genomanalyse praktisch anzuwenden
Lehrtechniken: Vorlesung
Modulhandbuch
Seite 178 von 209
Medienform:
Powerpoint Presentation
Literatur:
Aufgrund der hohen Publikations- und Forschungstätigkeit auf diesem Gebiet findet eine semesterweise
Aktualisierung der Literaturliste statt. Diese wird am Anfang des Semesters an die Studenten verteilt.
Iris Antes, antes@tum.de
Methoden der Genomanalyse: Vorlesung (Vorlesung, 2 SWS)
Frischmann D
Modellierung und Simulation biologischer Makromoleküle (Vorlesung, 2 SWS)
Antes I
Modulhandbuch
Seite 179 von 209
Modulbeschreibung
WZ2584: Biopharmazeutische Technologie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Zweisemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
5
150
90
60
ausgewiesene Wert.
Die Prüfungsleistung wird pro Modulteil in Form einer Klausur erbracht. In dieser soll nachgewiesen werden,dass
in begrenzter Zeit und ohne Hilfsmittel ein Problem erkannt wird, und Wege zu einer Lösung gefunden werden
können. Die Prüfungsfragen gehen über den gesamten Vorlesungsstoff.Die Antworten erfordern eigene
Formulierungen. Darüberhinaus werden kurze Rechenaufgaben gestellt. Hilfsmittel außer Papier und Schreibzeug
dürfen nicht benutzt werden. Zusätzlich darf ein nicht programmierbarer Rechner eingesetzt werden. Die
schriftliche Prüfung umfasst den Inhalt des gesamten Moduls bestehend aus Molekulare Biotechnologie und
Einführung in die Bioprozesstechnik. Gewichtung in gleichen Teilen zu je 50%.
Prüfungsart:
schriftlich
WS (Modulteil I): 60
min, SS (Modulteil II):
60 min
Folgesemester
keine formalen Voraussetzungen
Inhalt:
Modulteil I (Bioprozesstechnik): Die Vorlesung gliedert sich in 3 fundamentale Bereiche: - Upstream
(Medienvorbereitung/-optimierung; Planen und Erstellen von biotechnologischen Produktionsanlage; Steriltechnik;
Vorbereitung des Inokulums), - Bioprozess (Stoffumsatz und Wachstum (Monod-Modell; Kenngrößen der
Fermentation); Reaktortechnik; Prozesssteuerung und kontrolle (In-line und Off-line Methoden); Batch- vs.
Kontinuierliche Fermentation; Zeit- und Orts-Konzentrationsprofile in Bioreaktoren und Konsequenzen;
Mathematische Modellierung von kontinuierlichen und diskontinuierlichen Fermentationen; Besonderheiten
mikrobieller und humaner/tierischer Zellkulturen; Enzymtechnik und enzymatische Stoffumsätze), - Downstream
(Immobilisierung und Verkapselung von Mikroorganismen; Mikroorganismen als Zielprodukt: Konservierung von
Starterkulturen; Prozessstabilität von bioaktiven bzw. therapeutischen Glyko-Proteinen; Endotoxinproblematik;
Großtechnische Umsetzung der Umstrukturierung und Glykosilierung von inclusion bodies)
Modulteil II (Trennverfahren für biogene Substanzen): Grundlagen kolloidaler Interaktionen in wässrigen Systemen,
Grenzflächenthermodynamik; Nutzung von Inkompatibilitätseffekten und enzymatischen Methoden zur selektiven
Vorbehandlung von Mehrkomponentensystemen, Verhalten von Partikeln im Schwerefeld während der
Zentrifugaltrennung; Membrantrennverfahren: Trenn- und Partikelablagerungsmechanismen während der Mikro-,
Ultra- und Nanofiltration sowie Elektrodialyse, Umkehr- und Forward-Osmose; Chromatografische
Trennverfahren zur hochselektiven Isolierung von Zielsubstanzen: Transport- und Interaktionsphänomene,
Trennmechanismen, Präparative Verfahrensweisen im Applikationskontext
Modulhandbuch
Seite 180 von 209
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an den Modulveranstaltungen sind die Studierenden in der Lage die Erstellung
mathematischer Modelle und verfahrentechnische sowie steriltechnische Methoden der Bioprozesstechnik zu
analysieren und zu bewerten. Weiterhin können die Studenten chemisch-physikalischen Mechanismen der
Stofftrennung in dispersen und kolloidalen Systemen analysieren und die dazu eingesetzten Verfahren und
Analysemethoden bewerten.
Vorlesung, Vortrag
Medienform:
Folien, Tafelarbeit, Flipchart, PowerPoint
Literatur:
H. Chmiel, Bioprozesstechnik; Elsevier 2006, H.G. Kessler,Lebensmittel- und Bioverfahrenstechnik Molkereitechnologie, A. Kessler, 1996; R.G. Harrison et al., Bioseparations Science and Engineering, Oxford
University Press, 2003
Ulrich Kulozik, ulrich.kulozik@tum.de
Bioprozesstechnik (Vorlesung, 2 SWS)
Kulozik U [L], Ambros S, Bauer S, Schaupp R
Trennverfahren für biogene Substanzen (Vorlesung, 2 SWS)
Kulozik U, Steinhauer T, Voswinkel L
Modulhandbuch
Seite 181 von 209
Modulbeschreibung
WZ2585: Kompaktkurs Molekulare Methoden der Bioanalytik
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
150
85
65
ausgewiesene Wert.
Die regelmäßige, aktive Teilnahme am Kompaktkurs ist verpflichtend. Die Studierenden zeigen anhand eines
Protokolls, dass Sie in der Lage sind, die wesentlichen Aspekte der Versuche strukturiert und reflektiert
darzustellen. Neben dem Protokoll findet eine Prüfung statt, in der die im Kompaktkurs angeeigneten Kenntnisse
und Techniken nicht nur widergegeben, sondern auch interpretiert, und zur Lösung analoger Fragestellungen von
den Studierenden entsprechend modifiziert werden sollen. Die Gesamtnote setzt sich zu gleichen Teilen aus dem
Protokoll und der Prüfung statt.
Prüfungsart:
mündlich
30 Minuten mündlich
Hausaufgabe:
Ja
keine
Inhalt:
Der Kompaktkurs soll praxisorientierte Einblicke in die Entwicklung und Anwendung bioanalytischer Methoden
vermitteln.
Beispiele für Übungsthemen: Aufbau, Optimierung und Anwendung eines Immunoassays; Produktion von
Antikörpern: Phage-Display mit Selektion und Screening einer Antikörperbibliothek , Bewertung immuntoxischer
Effekte im Phagozytose-Assay, Yeast-Screen zum Nachweis endokriner Disruptoren etc.
Generell ist der Inhalt nicht fixiert, wird bei Bedarf modifiziert bzw. ergänzt.
Lernergebnisse:
Nach Teilnahme an der Modulveranstaltung sind die Studierenden in der Lage, weitgehend selbständig einfache
Experimente zu konzipieren, um analytische Fragestellungen zu beantworten. Neben methodischen Fähigkeiten in
der Bioanalytik wird selbständiges agieren und eigenverantwortliche Entscheidung gefördert.
Modulhandbuch
Seite 182 von 209
Lehrtechnik: Übung und Praktikum; Lernaktivitäten: Bearbeitung analytischer Fragestellungen. Optimierung
bioanalytischer Methoden; Üben von labortechnischen Fertigkeiten; Zusammenarbeit in Dreiergruppen;
Konstruktives diskutieren und kritisieren eigener Experimente; Lehrmethode: Fragend-entwickelnde Methode
Medienform:
Tafelarbeit, Power Point
Literatur:
Folienskript; aktuelle Literatur zu den spezifischen Themen;
Kompaktkurs Molekulare Methoden der Bioanalytik 1+2 (Übung, 5 SWS)
Kramer K
Modulhandbuch
Seite 183 von 209
Modulbeschreibung
WZ2586: Grundlagen der Proteinkristallographie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
150
90
60
ausgewiesene Wert.
im Eigenstudium). Eine Klausur bildet den Abschluss des Moduls und dient der Übersprüfung der erlernten
Kompetenzen. Die Lernenden zeigen in einer Klausur, ob sie die erarbeiteten Informationen beschreiben,
interpretieren und auf ähnliche Sachverhalte übertragen sowie die unterschiedlichen Informationen zu einem
neuartigen Ganzen verknüpfen können. Der Lehrende gibt Termin der Prüfungsleistung (Klausur) zu Beginn der
Lehrveranstaltung bekannt. Mit dem in der Vorlesung erworbenen theoretischen Wissen werden in dem
darauffolgenden Praktikum unter Anleitung Experimente durchgeführt. Nach Abschluss des Praktikums fertigen die
Lernenden jeweils ein eigenes Protokoll an, in dem sie die erhaltenen experimentellen Ergebnisse beschreiben,
auswerten und diskutieren.
Prüfungsart:
schriftlich
Klausur zur Vorlesung
(60 Minuten) und
Protokoll zum Praktikum
Proteinbiochemie.
Inhalt:
Vorlesung: Kristallisation von Proteinen, Erzeugung von Röntgenstahlung, Röntgendetektoren, Beugung von
Röntgenstahlung, Symmetrie und Raumgruppen, reziprokes Gitter, Strukturfaktoren, Fourier-Transformation,
Patterson-Funktion, Phasenproblem und Lösungsmöglichkeiten, Konstruktion, Verfeinerung und Validierung von
Strukturmodellen.
Praktikum: Beurteilung der Proteinreinheit mittels SDS-PAGE, Kristallisation von Lysozym oder anderen
Proteinen, Kristallisationsansätze mit der Dampfdiffusionsmethode, Beurteilung und Anfärben der Proteinkristalle,
Montieren von Kristallen für den Röntgen-Generator, Aufnahme und Indizierung von Beugungsdaten,
Datenreduktion, Lösen des Phasenproblems durch molekularen Ersatz, Konstruktion und Verfeinerung eines
Strukturmodells, Berechnung und Analyse des Ramachandran-Plots, Generierung von graphischen Abbildungen
des Strukturmodells.
Modulhandbuch
Seite 184 von 209
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an den Modulveranstaltungen sind die Studierenden in der Lage, die Grundlagen der
Strukturaufklärung von Proteinen zu verstehen und eine Strukturbestimmung eines Proteins durchzuführen. Zu
dem erworbenen Wissen zählen die Kristallisation von Proteinen, die Beugung von Röntgenstahlung, die
Interpretation des Beugungsdatensatzes, Lösungsmöglichkeiten für das Phasenproblem sowie die Konstruktion,
Verfeinerung und Validierung von Strukturmodellen. Praktische Fähigkeiten beinhalten die Kristallisation von
Proteinen, die Aufnahme und Bearbeitung von Beugungsdaten bis zur Konstruktion und Verfeinerung eines
Strukturmodells.
Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Vorlesung und Praktikum; Lernaktivität: Studium der Literatur; Üben von
technischen und experimentellen Fertigkeiten; Lehrmethode: Präsentation und Experiment
Medienform:
Die Vorlesung erfolgt mit graphischen Präsentationen (Projektor und Powerpoint). Während des Praktikums wird
im Labor des Lehrstuhls experimentell gearbeitet.
Literatur:
Rhodes, "Crystallography Made Crystal Clear: A Guide for Users of Macromolecular Models", Academic Press
2006.
Drenth, "Principles of Protein X-Ray Crystallography", Springer 2006.
McPherson, "Introduction to Macromolecular Crystallography", John Wiley & Sons 2009.
Arne, Prof. Dr. Skerra, skerra@tum.de
Grundpraktikum Proteinkristallographie (Praktikum, 3 SWS)
Skerra A, Schiefner A
Grundlagen der Proteinkristallographie (Vorlesung, 2 SWS)
Skerra A [L], Eichinger A
Modulhandbuch
Seite 185 von 209
Modulbeschreibung
WZ2588: Pharmazeutische Technologie und Biopharmazie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
150
105
45
ausgewiesene Wert.
Kreditpunkte werden für das erfolgreiche Ablegen der Modulprüfung vergeben. Modulprüfung ist schriftlich. (siehe
FPSO Molekulare Biotechnologie)
Prüfungsart:
schriftlich
60
Folgesemester
Verfahrenstechnik disperser Systeme
Inhalt:
Alle Teilaspekte der pharmazeutischen Technologie, d.h. Arzneiformenlehre, Grundoperationen, Biopharmazie,
Stabilität / Haltbarkeit und Arzneibuchprüfungen werden vorgestellt. Die Vorlesung behandelt flüssige, sterile, feste
und halbfeste Arzneiformen, sowie Spezialgebiete wie Inhalanda und Augenarzneiformen.
Lernergebnisse:
Die Studenten verstehen die pharmazeutische Sprache (Fachausdrücke, etc.). Sie können Arzneiformen
unterscheiden und einordnen. Sie verstehen die Struktur der Arzneiformen und können Vorschläge zur
Optimierung machen. Sie lernen Prozesse kennen und können sie für best. Arzneiformen vorschlagen. Sie
verstehen Herstellungsbedingen.
Medienform:
Präsentation sowie digitales Skript (TUM online)
Literatur:
Bauer, Frömming, Führer: Lehrbuch der Pharmazeutischen Technologie
Voigt: Pharmazeutische Technologie
Modulhandbuch
Seite 186 von 209
Caren Sönnichsen, caren.soennichsen@mytum.de
Pharmazeutische Technologie und Biopharmazie (Vorlesung, 3 SWS)
Sönnichsen C
Modulhandbuch
Seite 187 von 209
Modulbeschreibung
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
10
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
Vortrag:
Hausarbeit:
Inhalt:
Lernergebnisse:
Medienform:
Literatur:
,
Modulhandbuch
Seite 188 von 209
Modulhandbuch
Seite 189 von 209
Modulbeschreibung
WZ2626: Angewandte Mikrobiologie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Sommersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
150
105
45
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
schriftlich
60 written
Folgesemester
Voraussetzung sind Kenntnisse der Grundlagen der Mikrobiologie (Vorlesung Allgemeine Mikrobiologie). Zum
besseren Verständnis sind gute Kenntnisse in organischer Chemie und Biochemie vorteilhaft.
Inhalt:
Im Rahmen der Vorlesungen werden Grundkenntnise über die Stoffwechselleistungen (Biosynthesen und
Abbauwege) von Mikroorganismen wiederholt und erweitert, sowie Fortgeschrittenenkenntnise über den
Stoffwechsel von Mikroorganismen, im Besonderen prokaryontische Mikroorganismen, und über die Nutzung von
Mikroorganismen für biotechnologische Prozesse vermittelt. Schwerpunkte liegen im Bereich des
Zentralstoffwechsels und sich daraus ableitende, biotechnologisch relevante Biosynthesewege für Primär- und
Sekundärmetabolite, und im Bereich der Produktion von Biopolymeren. Weitere Inhalte sind die Abbauwege für
Zucker, Polysaccharide, Lignin, Proteine, Lipide, Nukleinsäuren, Xenobiotika. Anhand von ausgewählten
Beispielen wird die Anwendung von Organismen bzw. ihrer Enzyme, sowie die Optimierung von Mikroorganismen
und deren Stoffwechsel für verbesserte Produktionsprozesse in der Biotechnologie behandelt.
Modulhandbuch
Seite 190 von 209
Lernergebnisse:
Nach der Teilnahme an dem Modul besitzen die Studierenden vertiefte theoretische Kenntnisse und Verständnis
über Stoffwechselleistungen von Mikroorganismen und Anwendungsmöglichkeiten in biotechnologischen
Verfahren. Sie sollen in der Lage sein,
" Zusammenhänge zwischen Stoffwechselwegen und Stoffumsetzungen durch Mikroorganismen zu verstehen.
" An ausgewählten Beispielen die Auswirkungen von Veränderungen/Eingriffen in den Stoffwechsel auf
Biosyntheseleistungen zu verstehen.
" An ausgewählten Beispielen die Auswirkungen von Abbauprozessen in Biotechnologie und Umwelt zu verstehen.
" das erworbene Wissen auf vertiefte Fragestellungen anzuwenden.
fördern.
Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Vorlesung Lehrmethode: Vortrag.
Lernaktivitäten: Studium von Vorlesungsskript und -mitschrift, ggf. Literaturstudium
Medienform:
Skript (Downloadmöglichkeit für Vorlesungsmaterial).
Literatur:
Es ist kein Lehrbuch verfügbar, das alle Inhalte dieses Moduls abdeckt. Teilaspekte werden abgedeckt in:
Fuchs G. (Hrsg.) Allgemeine Mikrobiologie. 8. Auflage, 2007. Georg Thieme-Verlag Stuttgart.
Antranikian G. (Hrsg.) Angewandte Mikrobiologie. 2006. Springer-Verlag Berlin Heidelberg.
Angewandte Mikrobiologie - Abbauleistungen (Vorlesung, 1 SWS)
Liebl W
Angewandte Mikrobiologie - Biosyntheseleistungen (Vorlesung, 2 SWS)
Liebl W, Ehrenreich A
Modulhandbuch
Seite 191 von 209
Modulbeschreibung
WZ2635: Molekulare Onkologie
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch/Englisch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
5
150
120
30
ausgewiesene Wert.
Dieses Modul setzt sich aus der regelmäßigen Teilnahme an der Vorlesung "Molekulare Onkologie 1" (3 ECTS)
und einer Hausarbeit (2 ECTS) zu einer spezifischen vertiefenden Fragestellung (Bearbeitung eines Abstracts aus
einer Originalpublikation zum Thema Molekulare Onkologie) zusammen. Die regelmäßige Teilnahme an der
Vorlesung "Molekulare Onkologie 1" wird kontrolliert und ist Voraussetzung für die Zulassung zur Klausur. Die
Klausur (90 min, freie Fragen, benotet) dient der Überprüfung der in den Vorlesungen erworbenen theoretischen
Kompetenzen. Bei den Prüfungen dürfen keine Hilfsmittel eingesetzt werden. Die Prüfungsfragen umfassen den
gesamten Vorlesungsstoff und beinhalten Reproduktion (zentrale Fragestellungen wiedererkennen und ein
Spektrum von Arbeitstechniken abrufen zu können), Assoziation (problemorientiert Lösungsansätze
nachvollziehen und selber zu entwickeln) und Transfer (erlernte Regulationsmechanismen bzw.
Forschungsansätze auf neue verwandte oder auch in anderen Forschungsbereichen (Physiologie, andere
Pathophysiologien) anzuwenden und das erworbene Wissen auf vertiefte Fragestellungen anzuwenden).So soll
eine besonders berufs(wissenschafts)orientierte Ausrichtung gefördert werden (Lesen und Verstehen eines
wissenschaftlichen Abstracts aus einer Originalpublikation). Die Vorlesung kann im WS oder SS besucht werden.
Die Klausur kann bei Nichtbestehen einmal im darauffolgenden Semester wiederholt werden. Zudem werden ca.
Mitte des Semesters Abstracts aus wiss. Publikationen verteilt, zu denen spezifische Fragen gestellt werden, die
schriftlich in einer Hausarbeit bearbeitet werden müssen. Die Hausarbeiten müssen zum Klausurtermin abgegeben
werden. Die Gesamtnote des Moduls setzt sich aus der Klausurnote (90%) und der Note für die Hausarbeit
(10%) zusammen. Beide Leistungen müssen mit mindestens 4,0 abgeschlossen werden, um die erfolgreiche
Modulteilnahme zu belegen.
Prüfungsart:
schriftlich
90
Folgesemester
Hausarbeit:
Ja
Die während des Bachelorstudiums erworbenen Grundkenntnisse der Biochemie, Molekularbiologie und Genetik
sind Grundlage für das Verständnis der Vorlesungen. Der Besuch anderer Module wird nicht vorausgesetzt.
Modulhandbuch
Seite 192 von 209
Inhalt:
Merkmale der Tumorprogression (Problematik d. modernen Tumorforschung, Begriffsbestimmungen, Bedeutung
des Tumor-Microenvironments, Hallmarks of Cancer, Eigenschaften transformierter Zellen im Experiment);
Ursachen der Tumorentstehung (Stammzellen und Tumorbildung, wnt/ hedgehog Self-renewal, Mutationen,
Reparatur, zelluläre Antwort auf Mutagene); Onkogene (Experimente von Rous, Rubin, Temin, Weinberg,
Definitionen, Funktionsklassen von Onkogenen and Beispielen); Tumorsuppressorgene (Definitionen, Knudson two
hit hypothesis, PTEN, Kontrollpunktze des Zellzyklus, pRB, p53, MDM2, Apoptose); Epigenetik (Definitionen,
Histonmodifikationen, DNA Methylierung, pRb, CpG Islands, Beispiele, Experimente von Mary Hendrix); Umwelt
der Zelle (Komponenten eines Tumors, Tumorstroma als therapeutisches target, Exrazelluläre Matrix:
Komponenten und bedeutung, Interaktionen Zelle/ECM, Zell-Zell Kontakte); Mechanismen der
Metastasierungskaskade (Schritte der Kaskade, Angiogenese, angiogenic switch, Invasion, Wundheilung und
Krebs, tumorassoziierte Macrophagen, epithelial-mesenchymal transition, seed and soil Hypothese, Rolle von
Proteasen, Metastatische Nische; Markergene; Metastasierungsmodelle in der Maus); Proteasen/Proteolytisches
Netzwerk (Physiologische und pathophysiologische Funktionen von Proteasen und Proteaseinhibitoren, Regulation
von Proteasen, Spaltungsmechanismen, das proteolytische Gleichgewicht, Proteasenfamilien, Proteasen als
prognostische Marker, Entwicklung von synthetischen Proteaseinhibitoren, klinische Prüfungen, Optimierung
synthetischer Proteaseinhibitoren, das Cancerdegradome); Spezifische Methodik der Molekularen Onkologie (in
vivo Modelle, biochemische/molekulare Nachweismethoden von Proteasen und Proteaseinhibitoren, Zymographie,
knock-out Systeme, siRNA, shRNAi, virale Vektorsysteme, in vitro Migrations- und Invasionsmodelle); Vertiefung
der genannten Gebiete (Diskussion von aktuellen Publikationen aus relevanten Fachzeitschriften, Erarbeitung
eines vertieften Verständnisses der gelernten Mechanismen)
Lernergebnisse:
Die Studierenden erwerben in der Vorlesung Molekulare Onkologie 1 einen Überblick über molekulare
Mechanismen der Tumorprogression, d.h. von der Tumorentstehung bis zur Metastasierung. Die komplexen
intrazellulären und extrazellulären Regelkreise sollen in ihrer Bedeutung für die Interaktionen zwischen Tumor und
gesundem Gewebe verstanden werden. Anhand von experimentellen Beispielen aus der Wissenschaftsgeschichte
sowie aktuellen Publikationen wird auch der Vorgang des Erkenntnisgewinns transparent gemacht, um den
Studierenden ein Gefühl dafür zu vermitteln, wie sie selbst in diesem Forschungsfeld tätig werden könnten. Mit
dem in diesem Modul vermittelten Wissen soll es den Studierenden möglich sein, relevante aktuelle Publikationen
auf dem Gebiet der molekularen Tumorforschung zu verstehen und zu bewerten.
Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Vorlesung, Lehrmethode: Vortrag mit Entwicklung von Tafelbildern, relativ
sparsamer Einsatz von Powerpointfolien;
Lernaktivitäten: Studium von Vorlesungsmaterial, -mitschrift und Literatur
Medienform:
Entwicklung der Themen an Hand von Tafelbildern unter Zuhilfenahme von Powerpointdarstellungen,
Skript der Powerpoint-Slides wird über tumonline zugeschickt)
Literatur:
Es ist kein Lehrbuch verfügbar, das alle Inhalte dieses Moduls abdeckt. Als Ergänzung wird empfohlen:
Cell and Molecular Biology. G. Karp. Wiley Verlag, 4. Auflage, ISBN: 0-471-65665-8.
The Biology of Cancer. R. A. Weinberg. Garland Science, 1. Auflage, ISBN: 0-8153-4076-1.
Achim Krüger, achim.krueger@lrz.tu-muenchen.de
Modulhandbuch
Seite 193 von 209
Molekulare Onkologie I (Vorlesung, 2 SWS)
Krüger A
Molekulare Onkologie I Hausarbeit (Seminar, 2 SWS)
Krüger A
Modulhandbuch
Seite 194 von 209
Modulbeschreibung
WZ2638: Forschungspraktikum zur Tiermedizinischen Mikrobiologie und
Hygiene
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
10
300
60
240
ausgewiesene Wert.
Es wird die vollzeitliche Anwesenheit und Mitarbeit während des Prakikumszeitraums (6 Wochen) erwartet. Bei
zeitlichen Überscheidungen mit anderen Lehrveranstaltungen können die Arbeitstage flexibel angepasst werden.
Zur Überprüfung des Verständnisses der erlernten Methoden wird vom Studierenden ein Bericht angefertigt,
dessen selbständige Anfertigung ggf. in einem Gespräch überprüft werden kann. Weiterhin können die
Studierenden ihre Methodenkompetenz während der praktischen Mitarbeit im Labor nachweisen. Hierbei werden
den Studierenden nach einer Einarbeitungszeit im zweiten Teil des Praktikums Aufgaben zur selbständigen
Bearbeitung übertragen. Die angestrebten Lernergebnisse werden anhand des zu erstellenden Berichts vor dem
Hintergrund der praktischen Mitarbeit im Labor überprüft.
Prüfungsart:
schriftlich
Protokoll
Gespräch:
Hausarbeit:
Ja
Ja
Zum besseren Verständnis der Methoden sind ausreichende Kenntnisse in Mikrobiologie, Chemie und Biochemie
notwendig.
Inhalt:
Im Rahmen des Praktikums werden umfangreiche Kenntnisse in mikrobiologischen Arbeitsmethoden vermittelt.
Aufbauend auf grundlegenden kulturellen Techniken erlernen die Kursteilnehmer insbesondere Funktionsweise
und Anwendung von modernen molekularbiologischen Nachweisverfahren. Hierzu zählen neben PCR (inkl.
quantitativer RT-PCR) und PCR-SSCP auch die DNA-Sequenzierung. Weiterhin werden Grundlagen der
Zellkultur sowie des Nachweises von Toxinen mikrobiellen Ursprungs und Antibiotika in biologischen Matrices
mittels chemisch/physikalischer Methoden (u.a. HPLC, Massenspektrometrie) vermittelt. Die zu bearbeitenden
Themen liegen im Bereich der Hauptarbeitsgebiete des Lehrstuhls (z.Zt. Antibiotikarückstände und
antibiotikaresistente Bakterien in der Umwelt, Analyse von Mikroorganismengemeinschaften, Nachweis und
Vorkommen von Mykotoxinen in der Nahrung sowie deren Bedeutung für die Gesundheit von Mensch und Tier).
Modulhandbuch
Seite 195 von 209
Lernergebnisse:
Nach der Durchführung des Praktikums besitzen die Studierenden grundlegende praktische Fertigkeiten sowie
theoretisches Hintergrundwissen über einen Großteil moderner mikrobiologischer Arbeitstechniken. Sie sollen
gelernt haben
" mikrobiologische Fragestellungen und Arbeitstechniken zu verstehen und fachliche Fragen selbst zu entwickeln
" Zusammenhänge zwischen Stoffwechselwegen und Stoffumsetzungen durch Mikroorganismen sowie deren
analytische Verwendbarkeit zu verstehen
" Grenzen der kulturellen Nachweisbarkeit von Mikroorganismen zu erkennen
" die Grundlagen molekularbiologischer Nachweismethoden von Mikroorganismen nachvollziehen und praktisch
beherrschen zu können
" Arbeitstechniken zur Bestimmung von mikrobiellen Stoffwechselprodukten anzuwenden
fördern.
Veranstaltungsform/Lehrtechnik: Praktikum. Lehrmethode: Anleitungsgespräche, Demonstrationen, Experimente,
Partnerarbeit, Ergebnisbesprechungen, ggf. Projekarbeit. Lernaktivitäten: Erstellung eines Protokolls.
Medienform:
Tafelarbeit, Arbeitsblätter und Standardarbeitsanweisungen, Versuchsbeschreibungen
Literatur:
Es ist kein Lehrbuch verfügbar, das alle Inhalte dieses Moduls abdeckt. Die Aneignung von Hintergrundwissen zu
den angewandten Methoden wird im Rahmen des Praktikums anhand von Arbeitsblättern sowie ggf. spezifischen
Literaturhinweisen gefördert.
Johann Bauer, Johann.Bauer@wzw.tum.de
Forschungspraktikum zur Tiermedizinischen Mikrobiologie und Hygiene (Praktikum, 20 SWS)
Modulhandbuch
Seite 196 von 209
Modulbeschreibung
WZ2927: Forschungspraktikum Molekulare Mikrobielle Enzymatik
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Credits:*
Gesamtstunden:
rsemester
Präsenzstunden:
10
300
40
260
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
immanenter
Prüfungscharakter
Inhalt:
der Arbeitsgruppen des Lehrstuhls für Mikrobiologie. Es werden spezielle Methoden des praktischen Arbeitens mit
Mikroorganismen, der molekularbiologischen Charakterisierung und Modifizierung und/oder der Proteinreinigung
und -charakterisierung vermittelt. Inhaltliche Schwerpunkte sind Molekularbiologie und Enzymatik. Durch
Eigenstudium von fachwissenschaftlicher Literatur werden vertiefte Kenntnisse zur jeweils bearbeiteten Thematik
erworben.
Modulhandbuch
Seite 197 von 209
Lernergebnisse:
Medienform:
Literatur:
Forschungspraktikum Molekulare Mikrobielle Enzymatik (Praktikum, 10 SWS)
Liebl W, Schwarz W
Modulhandbuch
Seite 198 von 209
Modulbeschreibung
WZ3036: Molekulare Sensorik
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
120
120
0
ausgewiesene Wert.
Prüfung
Prüfungsart:
schriftlich
90
keine
Inhalt:
Physiologie und Biochemie der Geruchswahrnehmung (Funktionalität des Geruchssinns, Aufbau und Funktion des
Riechsystems und seine zentralen Verschaltungen, olfaktorische Rezeptoren, Geruchskodierung,
Geruchsdiskriminierung und deren neurophysiologischen Grundlagen) Physiologie und Biochemie der
Geschmackswahrnehmung (Morphologie der Geschmacksorgane, und ihre Verschaltungen,
Geschmacksqualitäten und Signalverarbeitung, Molekulare Mechanismen der Geschmackserkennung,
Rezeptoren, Agonisten, Antagonisten, Polymorphismen, Geschmacks-kodierung, Adaption) Strukturen und
sensorische Aktivität ausgewählter Geruchs- und Geschmackstoffe in Lebensmitteln Moderne Methoden der
Aromenproduktion Aromarelease-Systeme und Techniken der Aromaverkapselung Rechtliche
Grundlagen des Einsatzes von Aromen 
Lernergebnisse:
Die Studierenden erwerben die Fähigkeit: Zentrale Fragestellungen der Physiologie von Geruch und
Geschmack sowie der Struktur/Wirkungs-Zusammenhänge von sensorisch aktiven Substanzen zu erkennen,
fachliche Fragen selbst zu entwickeln und rechtliche Fragestellungen selbstständig zu
beantworten. Problemorientiert Lösungsansätze zu erarbeiten. Kenntnisse über Struktur und sensorische
Aktivität von Geruchs- und Geschmacksstoffen fachübergreifend anzuwenden. Das erworbene Wissen auf
vertiefte Fragestellungen anzuwenden 
Modulhandbuch
Seite 199 von 209
Medienform:
Literatur:
Lehrbuch der Lebensmittelchemie. Belitz, Hans-Dieter; Grosch, Werner; Schieberle, Peter; ISBN:
978354041096-6 Physiologie des Menschen. Schmidt, Lang, Thews, Springer Verlag, 29. Auflage, ISBN:
978-3-540-21882-1 
Thomas Hofmann,
Molekulare Sensorik Übung (Übung, 1 SWS)
Dunkel A, Hofmann T
Molekulare Sensorik (Vorlesung, 2 SWS)
Schieberle P, Hofmann T, Krautwurst D
Modulhandbuch
Seite 200 von 209
Modulbeschreibung
WZ3207: Nutrition and Microbe-Host Interactions
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Englisch
Einsemestrig
Sommersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
150
90
60
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
schriftlich
60
Folgesemester
Vortrag:
Ja
basics in Microbiology and Biofunctionality, basics in Im-munology
Inhalt:
This lecture and seminar series is meant to give deep insight into the diversity and functions of the mammalian gut
microbial ecosystem (intestinal microbiota) in close interaction with the host and with dietary factors. Particular
attention will be drawn onto the development of the microbiota throughout life as well as underlying cross-talk
mechanisms with the mucosal immune system with a particular focus on chronic inflammatory disorders, enteric
infections and metabolic disorders. Lectures will be backed up by interactive work during the seminar based on the
use of up-to-date literature.
Lernergebnisse:
At the end of the module students have gained knowledge on the role of dietary and microbial triggers in regulation
host health. They are able to use this knowledge to critically assess recent findings.
lecture and seminar
Medienform:
Literatur:
Microbial Inhabitants of Humans: Their Ecology and Role in Health and Disease. Cambridge University Press,
2005, ISBN: 0 521 84158 5
Modulhandbuch
Seite 201 von 209
Dirk Haller, dirk.haller@tum.de
Microbe-host interaction and nutrition in health and disease (seminar) (Seminar, 2 SWS)
Clavel T, Haller D
Microbe-host interaction and nutrition in health and disease (lecture) (Vorlesung, 2 SWS)
Clavel T, Haller D
Modulhandbuch
Seite 202 von 209
Modulbeschreibung
WZ3214: Experimental Immunology and Pathology
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Englisch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
5
150
80
70
ausgewiesene Wert.
Prüfungsart:
schriftlich
Folgesemester
Basics of Immunology
Inhalt:
This practical exercise demonstrates the use of animal models (mouse) in biomedical research. On the basis of a
mouse model of chronic intestinal inflammation, a possible setup of how the impact of nutrition or food components
on inflammatory processes can be investigated is shown. Disease-associated alterations are analysed on
molecular-, cellular-, microbial- and pathological levels.
Lernergebnisse:
This lab course introduces scientific methods for working with animal (mouse) models and illustrated possibilities
and limits of these technics. Students deepen their knowledge on inflammatory processes and learn to link basic
immunological knowledge to physiological alterations. The practical furthermore improves laboratory working skills
in preparation for the master's thesis.
exercise (lab) course
Medienform:
Literatur:
Modulhandbuch
Seite 203 von 209
Dirk Haller, dirk.haller@tum.de
Experimental Immunology and Pathology (Übung, 5 SWS)
Clavel T, Haller D
Modulhandbuch
Seite 204 von 209
Modulbeschreibung
WZ8058: Immunoinformatik
Modulniveau:
Sprache:
Semesterdauer:
Häufigkeit:
Master
Deutsch
Einsemestrig
Wintersemester
Credits:*
Gesamtstunden:
Präsenzstunden:
3
90
50
40
ausgewiesene Wert.
Es wird erwartet, dass sich die Studierenden regelmässig und aktiv an den Lehrveranstaltungen beteiligen. Eine
Klausur (90 min) dient zur Überprüfung des erlernten Wissens. Im Praktikum werden die in der Vorlesung
vermittelten Inhalte vertieft, wobei zur Kontrolle ein Protokoll anzufertigen ist. Die Studierenden sollen Ihre
Kenntnisse aus der Vorlesung praktisch anwenden und zeigen, dass sie in der Lage sind, die Resultate aus den
praktischen Übungen auszuwerten, zu interpretieren und prägnant darzustellen. Die Studierenden sollen das
erworbene Wissen strukturiert und auf das Wesentliche konzentriert darstellen sowie Transferaufgaben bewältigen
können. Die Klausurnote bildet zusammen mit der Note für das Praktikum die Gesamtnote des Moduls.
Prüfungsart:
schriftlich
90
keine
Inhalt:
Sequenz- und Strukturbasierte Vorhersagemethoden in folgenden Bereichen: MHC Klasse I und II
Prozessierungspfad, Epitoperkennung, B-Cell Aktivierung, Allergenität und Immunogenität. Strukturbasierte
Methoden zur Modellierung von immunologisch wichtigen Proteinen (MHC, TCR, Antikörper, etc.) und deren
Bindungspartner. Anwendung der besprochenen Methoden auf medizinische Fragestellungen (z.B.
Immunotherapie, Impfstoffdesign). Die Veranstaltung richtet sich an Studierende der Fachrichtungen Biologie,
Molekulare Biotechnologie, Bioinformatik, Biochemie, Chemie und Biophysik (Master/Bachelor 5./6. Semester).
Lernergebnisse:
Die Studenten sind mit den bioinformatischen Methoden, welche im Bereich Immunoinformatik verwendet werden,
vertraut. Sie kennen die algorithmischen und anwendungsbezogenen Unterschiede zwischen verschiedenen
Methoden und haben gelernt, die passenden Algorithmen für eine gegebene Anwendung auszuwählen.
Lehrtechnik: Vorlesung; Praktikum. Lehrmethode: Vortrag; praktische Uebungen, Partnerarbeit,
praktikumsbegeleitende Betreuung, Anleitungsgespräche. Lernaktivitäten: Studium von Vorlesungsmaterial und
Literatur, praktisches Üben am Computer, Zusammenarbeit mit Praktikumspartner, Anfertigung von Protokollen.
Modulhandbuch
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Medienform:
Präsentation, Skript zur Vorlesung, Praktikumsanleitungen
Literatur:
Literaturempfehlungen werden in der Vorlesung gegeben.
Iris Antes, antes@wzw.tum.de
Immunoinformatik (Vorlesung, 2 SWS)
Antes I
Modulhandbuch
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Alphabetisches Verzeichnis der Modulbeschreibungen
WZ2479: Advanced Methods and Findings in Neurophysiology (Advanced Methods and Findings in
Neurophysiology)
WZ2460: Aktuelle Themen der Neurobiologie (Current Topics in Neurobiology)
WI000189: Allgemeine Volkswirtschaftslehre (Introduction to Economics) [VWL]
WZ2579: Analysis of High-Throughput Datasets for Biologists (Analysis of High-Throughput Datasets for
Biologists)
WZ2626: Angewandte Mikrobiologie (Applied Microbiology)
WZ0019: Biochemie (Biochemistry)
WZ2003: Biochemie 2: Stoffwechsel (Biochemistry 2: Metabolism)
WZ2583: Bioinformatik / Genomik (Bioinformatics / Genomics)
WZ2045: Bioinformatik für Biowissenschaften II (Introduction to Bioinformatics II)
WZ2373: Biologie humanpathogener Bakterien (Biology of Human Pathogens)
WZ2584: Biopharmazeutische Technologie (Bioprocessing and Bioseparations)
WZ22270: Computer-Aided Drug and Protein Design (optional incl. Seminar) (Computer-Aided Drug and
Protein Design)
CH0659: Einführung in die Biotechnologie (Introduction to Biotechnology)
WZ2002: Einführung in die Genetik (Introduction to Genetics)
WZ2404: Einführung in die Kultivierung von Säugetierzellen (Introduction to Mammalian Cell Culture )
WZ0325: Endo-, para- u. juxtakrine Regelmechanismen (Endo-, para- and juxtakrine Regulation)
WZ1045: Endokrinologie und Reproduktionsbiologie (Endocrinology and Biology of Reproduction)
WZ2487: Entwicklung von Starterkulturen (Development of Starter Cultures)
WZ0308(2): Entwicklungsgenetik (Developmental Genetics)
WZ2480: Entwicklungsgenetik der Pflanzen 2 (Plant Developmental Genetics 2)
WZ2375: Evolution von Krankheitserregern (Evolution of Pathogens)
WZ3214: Experimental Immunology and Pathology (Experimental Immunology and Pathology)
WZ2545: Forschungspraktikum Biotechnologie der Tiere (Research Project Animal Biotechnology )
WZ2172: Forschungspraktikum Funktionelle Proteomanalyse (Functional Proteomics)
WZ2417: Forschungspraktikum Genetik 2 Entwicklungsgenetik (Research Project Genetics 2 Developmental Genetics)
WZ2327: Forschungspraktikum II Biochemische Genetik (Practical Course in Biochemical Genetics)
WZ2542: Forschungspraktikum Mikrobielle Diversität und Molekularphylogenie (Research Project Microbial
Diversity and Molecular Phylogeny)
WZ2540: Forschungspraktikum Mikrobielle Physiologie und Genregulation (Research Project Microbial
Physiology and Gene Regulation)
WZ2927: Forschungspraktikum Molekulare Mikrobielle Enzymatik (Research Project Molecular Microbial
Enzymology)
WZ2436: Forschungspraktikum Molekulare Onkologie (Research Project Molecular Oncology)
WZ2256: Forschungspraktikum Molekulare Physiologie (Practical Course in Molecular Physiology)
WZ2474: Forschungspraktikum Molekulare Physiologie (Research Project in Molecular Physiology)
WZ2462: Forschungspraktikum Neurobiologie am intakten Organismus (Research Project Neurobiology of
Intact Animals)
WZ2461: Forschungspraktikum Neurobiologie am isolierten Gewebe (Research Project Neurobiology of
Isolated Tissue)
WZ2376: Forschungspraktikum Pathogene Bakterien (Research Project on Pathogenic Bacteria)
WZ2550: Forschungspraktikum Peptidchemie und Biochemie (Research Project Peptide Chemistry and
Biochemistry)
WZ2414: Forschungspraktikum Pharmakologie und Toxikologie (Research Project Pharmacology and
Toxicology)
WZ2230: Forschungspraktikum Protein Engineering (Advanced Laboratory Course "Protein Technology")
WZ2561: Forschungspraktikum Protein- und Wirkstoffmodellierung (Research Project Protein Modelling and
Drug Design)
WZ0513: Forschungspraktikum Zellbiologie (Research Project Cell Biology)
Modulhandbuch
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WZ2638: Forschungspraktikum zur Tiermedizinischen Mikrobiologie und Hygiene (Research Project in
Veterinary Microbiology and Hygiene)
WZ2384: Forschungspraktikum 2 - Molekularbiologie der Pflanzen (Research Project 2 Molecular Biology of
Plant)
WZ2441: Foschungspraktikum Chemie der Biopolymere (Research Project Biopolymer Chemistry)
WI000159: Geschäftsidee und Markt - Businessplan-Grundlagenseminar (Business Plan - Basic Course
(Business Idea and Market)) [Businessplan Basic Seminar]
WZ2586: Grundlagen der Proteinkristallographie (Principles of Protein Crystallography)
CH0136: Grundlagen des Patentrechts (Principles of Patent Law)
WZ1035: Host-Parasite-Interaction (Host-Parasite-Interaction)
WZ2489: Humangenetik für Biologen (Human Genetics for Biologists)
WZ8058: Immunoinformatik (Immunoinformatics)
WZ2582: In vitro-Modelle der Zellbiologie (In vitro Models in Cell Biology)
CH0213: Internationales Patentrecht (International Patent Law)
WZ2138: Kompaktkurs Membranen und Membranproteine (Practical Course in Membranes and Membrane
Proteins)
WZ2585: Kompaktkurs Molekulare Methoden der Bioanalytik (Molecular Methods in Bioanalytics)
WZ1085: Labortierwissenschaft (Science of Laboratory Animals)
WZ2019: Metabolic Engineering und Naturstoffproduktion (Metabolic Engineering and Production of Natural
Products)
WZ2221: Methods in Biotechnology (Seminar) (Methods in Biotechnology)
WZ2402: Mikrobielle Toxine in der Nahrung (Microbial Toxins in Food)
WZ2449: Mikrobielle Vielfalt und Entwicklung (Microbial Diversity and Development)
WZ2005: Mikrobiologie (Microbiology)
WZ2372: Mikroorganismen als Krankheitserreger (Pathogenic Microorganisms)
WZ2374: Mikroorganismen in Lebensmitteln (Microorganisms in Food)
WZ2132: Mikroskopisches Praktikum zur Funktionellen Histologie (Practical Course of Microscopy of
Functional Histology)
WZ0332: Molekularbiologie der Pflanzen (Molecular Biology of Plants)
WZ2013: Molekulare Bakteriengenetik (Molecular Genetics of Bacteria)
WZ2420: Molekulare Genetik (Molecular Genetics)
WZ2635: Molekulare Onkologie (Molecular Oncology)
WZ2453: Molekulare Pathologie und organspezifische Karzinogenese (Molecular Pathology and OrganSpecific Carcinogenesis)
WZ2014: Molekulare Pflanzenzüchtung (Molecular Plant Breeding)
WZ3036: Molekulare Sensorik (Molecular Sensory Properties )
WZ2427: Molekulare Zellbiologie der Tumorentstehung (Molecular Cell Biology of Tumorigenesis)
[MolZellbioTum]
WZ2015: Molekulargenetik und Regulationsphysiologie der Tiere (Molecular Genetics and Regulation
Physiology of Animals)
WZ2130: Molekular-Physiologisches Praktikum (Molecular Physiological Practical Training)
WZ2457: Neurobiologie (Neurobiology)
WZ2490: Neurogenetische Grundlagen von neurologischen und psychiatrischen Erkrankungen
(Neurogenetics: The Pathoetiology of the Neurological and Psychiatric Diseases)
WZ3207: Nutrition and Microbe-Host Interactions (Nutrition and Microbe-Host Interactions)
WZ2549: Peptidchemie und Biochemie (Peptide Chemistry and Biochemistry)
WZ2581: Pflanzenbiotechnologie (Plant Biotechnology)
WZ2381: Pflanzensystembiologie (Vorlesung und Seminar) (Plant Systems Biology (Lecture and Seminar))
[PlaSysBiol (VL+SE)]
WZ2413: Pharmakologie und Toxikologie für Studierende der Biowissenschaften (Vertiefung)
(Pharmacology and Toxicology for Students of Life Sciences)
WZ2588: Pharmazeutische Technologie und Biopharmazie (Pharmaceutical Technology and Biopharmacy)
ED0180: Philosophie und Sozialwissenschaft der Technik (Philosophy and Social Sciences of Technology)
Modulhandbuch
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WZ2349: Praktikum Epigenetik (Internship Epigenetics)
WZ2297: Praktikum Protein- und Wirkstoffmodellierung (Protein and Drug Design)
WZ2226: Projektseminar Membranproteine (Project Seminar Membrane Proteins)
WZ2539: Proseminar Mikrobielle Wirkstoffe (Seminar on Microbial Effectors)
WZ2016: Proteine: Struktur, Funktion und Engineering (Proteins: Structure, Function, and Engineering)
WZ2580: Protein-Engineering (Protein Engineering)
WZ0443: Proteintechnologie: Membranen und Membranproteine (Membranes and Membrane Proteins)
WZ2439: Proteomics: Analytische Grundlagen und Biomedizinische Anwendungen (Proteomics: Analytical
Basics and Biomedical Applications)
WZ2207: Seminar Aktuelle Probleme der Genetik (Current Problems of Genetics)
WZ0402: Strukturbioinformatik (Structural Bioinformatics)
WZ2382: Übung in Pflanzensystembiologie (Exercise in Plant Systems Biology) [PlaSysBiol (UE)]
WZ2066: Weiterführende Bioinformatik (Advanced Bioinformatics)
MA9611: Wissenschaftlich-technisches Rechnen (Introduction to Scientific Computing) [WTR]
WZ2017: Zellkulturtechnologie (Cell Culture Technology)
Modulhandbuch
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Modulhandbuch - Molekulare Biotechnologie

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