Laborleistungen - DRK

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Laborleistungen Institut für Klinische Transfusionsmedizin und Immungenetik Ulm
Institut Ulm, DRK-Blutspendedienst Baden-Württemberg - Hessen
DRK-Blutspendedienst Baden-Württemberg – Hessen
gemeinnützige GmbH
Institut Ulm
Institut für Klinische Transfusionsmedizin
und Immungenetik Ulm gemeinnützige GmbH
Laborleistungen
Institut für Klinische Transfusionsmedizin
und Immungenetik Ulm
Tel: (0731) 150-0
Helmholtzstraße 10
Fax: (0731) 150-575
89081 Ulm
http://www.uni-ulm.de/klinik/medklinik/tfm/
Dokument: 14452/ 4 - : Laborleistungen Ulm
Hinweise:
Geltungsbereich:Ulm-Alle Bereiche;;
Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig.
Gültig ab05.01.2012
Status: Gültig
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DAC-ML-0156-02-10
Zertifiziert nach DIN EN ISO 9001
und DIN EN ISO 13485,
akkreditiert nach DIN EN ISO 15189
und akkreditiert durch die
European Federation for Immunogenetics
sowie Joint Accreditation CommitteeISCT & EBMT
Allgemeine Hinweise:
Lagerung und Transport der Proben ist zu beachten. Eingesandtes Material
kann bei unbeschrifteten Proben und falschem Abnahmematerial nicht
bearbeitet werden.
Hinweise:
Status: Gültig
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Inhaltsverzeichnis
Allgemeine Hinweise …………………………………………………………..………........ 2
Ansprechpartner und Telefonnummern ...................................................................... 7 Klinische Chemie ......................................................................................................... 13 Alanin-Aminotransferase (ALT)/Syn. Glutamat-Pyruvat-Transaminase (GPT) .......... 13 Alkalische Phosphatase (AP) ..................................................................................... 13 Aspartat-Aminotransferase (AST) bzw. Glutamat-Oxalacetat-Transaminase (GOT) . 13 Cholesterin ................................................................................................................. 13 Cholinesterase (CHE) ................................................................................................ 14 C-reaktives Protein (CRP).......................................................................................... 14 Eiweiß (Protein) ......................................................................................................... 14 Elektrolyte (Na, K, Ca) ............................................................................................... 14 Elektrophorese-Serumprotein .................................................................................... 15 Ferritin ........................................................................................................................ 15 Freies Hämoglobin ..................................................................................................... 15 Gamma-Glutamyl-Transferase (GGT) ....................................................................... 16 Gesamtbilirubin .......................................................................................................... 16 Glukose ...................................................................................................................... 16 Harnanalyse ............................................................................................................... 16 Harnsäure .................................................................................................................. 17 Immunglobulin A (IgA)................................................................................................ 17 Immunglobulin G (IgG) ............................................................................................... 17 Immunglobulin M (IgM) .............................................................................................. 17 Kreatinin ..................................................................................................................... 17 Lactat-Dehydrogenase (LDH) .................................................................................... 18 Magnesium ................................................................................................................ 18 Transferrin.................................................................................................................. 18 Löslicher Transferrin-Rezeptor (sTfR) ........................................................................ 18 Triglyzeride ................................................................................................................ 18 Gerinnung .................................................................................................................... 19 Thromboplastinzeit (TPZ, Quick-Wert) ....................................................................... 19 Thrombinzeit (TZ) ...................................................................................................... 19 Dokument: 14452/ 4 - : Laborleistungen Ulm
Hinweise:
Status: Gültig
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Aktivierte partielle Thromboplastinzeit (PTT) ............................................................. 19 Fibrinogen .................................................................................................................. 19 Infektionsserologie ...................................................................................................... 20 CMV-IgG-Antikörper (Anti-CMV-IgG) ......................................................................... 20 CMV-IgM-Antikörper (Anti-CMV-IgM) ........................................................................ 20 Hepatitis-B-Virus-Core-Antikörper (Anti-HBc) ............................................................ 20 Hepatitis-B-Surface-Antigen (HBs-Ag) ....................................................................... 20 Hepatitis-B-Surface-Antikörper (Anti-HBs) ................................................................. 20 Hepatitis-C-Virus- (HCV) Antikörper (Anti-HCV) ........................................................ 21 Human-Immunodeficiency-Virus-Typ-1/2-Antikörper (Anti-HIV-1/2) und p24-Ag ....... 21 Lues-Antikörper (Syphilis TP) .................................................................................... 21 Molekulare Virusdiagnostik ........................................................................................ 22 CMV-DNA .................................................................................................................. 22 HAV-RNA ................................................................................................................... 22 HBV-DNA ................................................................................................................... 22 HCV-RNA................................................................................................................... 23 HIV-RNA .................................................................................................................... 23 Parvo-B19-DNA ......................................................................................................... 23 West Nile Virus (WNV) ............................................................................................... 24 Bakteriologie ................................................................................................................ 25 Mikrobiologische Kontrolle ......................................................................................... 25 Bakterieller Schnelltest............................................................................................... 25 Blutgruppenserologie und Immunhämatologie ........................................................ 26 Vollständige Blutgruppenbestimmung (AB0, Rhesusfaktor, Antikörpersuchtest) ....... 26 Semiquantitative Antigendichtebestimmung .............................................................. 26 Quantitative Antigendichtebestimmung ...................................................................... 26 Bestimmung spezieller Blutgruppenantigene ............................................................. 26 Verträglichkeitsprobe (Kreuzprobe) ........................................................................... 26 Antikörper-Identifizierung ........................................................................................... 27 Antikörpertiter............................................................................................................. 27 Kontrolle des Antikörpertiters ..................................................................................... 27 Dokument: 14452/ 4 - : Laborleistungen Ulm
Hinweise:
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Isoagglutinin-Titer ...................................................................................................... 27 Direkter Antiglobulintest ............................................................................................. 27 Direkter Antiglobulintest bei Neugeborenen ............................................................... 28 Aufgegliederter direkter Antiglobulintest (IgG/C3d) .................................................... 28 Aufgegliederter direkter Antiglobulintest (einschl. IgA und IgM) ................................. 28 Hitzeresistenztest ....................................................................................................... 28 Untersuchungen bei V. a. Autoimmunhämolyse ........................................................ 28 Untersuchungen bei V. a. Autoimmunhämolyse bei negativem direkten
Antiglobulintest........................................................................................................... 29 Untersuchungen bei V. a medikamenteninduzierte Autoimmunhämolyse ................. 29 Donath-Landsteiner-Antikörper .................................................................................. 29 T-Aktivierung oder positiver direkter Antiglobulintest bei bakteriellen Infekten........... 29 Verlaufsuntersuchung bei Autoimmunhämolyse ........................................................ 29 Abklärung von Transfusionreaktionen ........................................................................ 30 Kryoglobuline ............................................................................................................. 30 Kälteagglutinine ......................................................................................................... 30 Bestimmung von Erythrozytenpopulationen nach allogener KM- /
Blutstammzelltransplantation (Geltechnik) ................................................................. 30 Bestimmung von Erythrozytenpopulationen nach KMT (mikroskop.
Immunfluoreszenz) .................................................................................................... 30 Bestimmung von Erythrozytenpopulationen nach KMT (differenzielle Agglutination) 31 Bestimmung von Erythrozytenpopulationen nach KMT (Durchflusszytometrie) ......... 31 Nachweis adsorbierter Blutgruppensubstanzen ......................................................... 31 Untersuchung auf Partial D ........................................................................................ 31 DNA-Typisierung von fetalen Blutgruppenantigenen aus Fruchtwasser .................... 31 DNA-Typisierung von Blutgruppenantigenen nach Vortransfusion oder
Autoimmunhämolyse ................................................................................................. 32 Charakterisierung von RHD Allelen ........................................................................... 32 Charakterisierung von RHCE Allelen ......................................................................... 32 DNA-Typisierung seltener Antigene ........................................................................... 32 Genotypisierung (Bestimmung der Zygotie) ............................................................... 32 Identifizierung von Antikörpern gegen hochfrequente Antigene ................................. 33 Nachweis gebundener spezifischer Antikörper .......................................................... 33 Antigentypisierung nach Chloroquinelution ................................................................ 33 Dokument: 14452/ 4 - : Laborleistungen Ulm
Hinweise:
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Hämatologie ................................................................................................................. 34 Blutbild (elektronisch) ................................................................................................. 34 Hb-Messung............................................................................................................... 34 Differentialblutbild (manuell)....................................................................................... 35 Viabilität ..................................................................................................................... 35 Knochenmarkzytologie ............................................................................................... 35 Bestrahlung von Zellen .............................................................................................. 35 Gewinnung, Manipulation und Charakterisierung von Stammzellen und anderen
speziellen Zellpräparationen ...................................................................................... 36 Durchflusszytometrie (FACS-Analyse) ....................................................................... 36 Paroxysmale-nächtliche-Hämoglobinurie- (PNH) Diagnostik ..................................... 36 Chimärismusanalyse mit Granulozyten / Lymphozyten aus Blut und Knochenmark
nach allogener Knochenmark-/Blutstammzelltransplantation..................................... 37 Präparation von autologen und allogenen Knochenmarktransplantaten .................... 37 Präparation von autologen und allogenen Blutstammzelltransplantaten .................... 37 Präparation von Spenderlymphozyten zur Immuntherapie ........................................ 37 Herstellung von dendritischen Zellen ......................................................................... 38 Kryokonservierung von peripheren Blutstammzell- und Knochenmarktransplantaten,
Erythrozyten, Thrombozyten, Lymphozyten und dendritischen Zellen ....................... 38 Fluoreszenzaktivierte Hochgeschwindigkeitszellsortierung (FACS) ........................... 38 Transplantationsimmunologie ................................................................................... 39 HLA-Klasse-I-Antikörperscreening mittels LCT .......................................................... 39 HLA-Klasse-I-Antikörperdifferenzierung mittels LCT .................................................. 39 HLA-Klasse-I-Antikörperscreening mittels Festphasentechnik................................... 39 HLA-Klasse-II-Antikörperscreening mittels Festphasentechnik.................................. 40 HLA-Klasse-I-Antikörperdifferenzierung mittels Festphasentechnik .......................... 40 HLA-Klasse-II-Antikörperdifferenzierung mittels Festphasentechnik ......................... 40 HNA-Antikörper mittels Festphasentechnik................................................................ 40 CD30-Antikörperbestimmung mittels ELISA .............................................................. 41 HLA-Crossmatch (serologische Verträglichkeitsprobe im HLA-System) .................... 41 Serologische Bestimmung der HLA-Klasse-I-Merkmale (A / B) ................................. 41 Bestimmung des HLA-B27-Merkmals ........................................................................ 41 Dokument: 14452/ 4 - : Laborleistungen Ulm
Hinweise:
Status: Gültig
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Molekularbiologische Bestimmung der HLA-Klasse-I-Merkmale (A, B, C) ................. 42 Molekularbiologische Bestimmung der HLA-Klasse-II-Merkmale (DRB1, DQB1, DPB1
+ DQA) ....................................................................................................................... 42 Bestimmung von Zytokin-, Chemokin- und anderen Genpolymorphismen (IL1, IL1R,
IL2, IL4, IL4Rα, IL6, IL10, IL12, γ-IFN, TGFβ, TNFα, ICAM-1, CD28, CTLA4, CCR2,
CCR5) ........................................................................................................................ 42 Bestimmung von Killerzellen-Immunglobulin-ähnlicher Rezeptor- (KIR)
Genpolymorphismen .................................................................................................. 42 Molekulare Diagnostik und molekulare Therapie; Abstammungsgenetik .............. 43 Chimärismusanalyse mit Granulozyten / Lymphozyten / Lymphozytensubpopulationen
nach allogener Knochenmark-/Blutstammzelltransplantation..................................... 43 Kolonienbildung von hämatopoetischen Progenitorzellen .......................................... 43 Molekulargenetische Abklärung von Immundefekten ................................................. 43 Molekulargenetische Abklärung von Erythrozytosen ................................................. 45 Molekulargenetische Abklärung von Anämien ........................................................... 45 Abstammungsgenetische Untersuchung.................................................................... 45 Ansprechpartner und Telefonnummern
Ärztlicher Direktor
Prof. Dr. med. Hubert Schrezenmeier
Sekretariat
Angela Jacobs
Tel.: (0731) 150-550
Fax: (0731) 150-500
eMail: h.schrezenmeier@blutspende.de
Tel.: (0731) 150-560
Fax: (0731) 150-500
eMail: a.jacobs@blutspende.de
Klinische Chemie, Infektionsserologie, molekulare Virusdiagnostik und
Bakteriologie
Hinweise:
Status: Gültig
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Abteilungsleiter
Dr. rer. nat. Klaus Koerner
Tel.: (0731) 150-590
Fax: (0731) 150-500
eMail: k.koerner@blutspende.de
Klinische Chemie und Gerinnung
Constanze Neuber / Bettina Köhler
Tel.:
Fax:
(0731) 150-586
(0731) 150-640
eMail: c.neuber@blutspende.de
b.koehler@blutspende.de
Infektionsserologie
Dagmar Kilian
Tel.: (0731) 150- 618
Fax: (0731) 150-602
eMail: d.kilian@blutspende.de
Molekulare Virusdiagnostik
Dr. biol. hum. Uschi Mayr-Wohlfart
Tel.: (0731) 150-517
Fax: (0731) 150-640
eMail: u.mayr-wohlfart@blutspende.de
e.weber@blutspende.de
Blutgruppenserologie und Immunhämatologie
Abteilungsleiter
Dr. med. Christof Weinstock
Tel.: (0731) 150-600
Fax: (0731) 150-602
eMail: c.weinstock@blutspende.de
Immunhämatologie
Eva Hochgeladen
Tel.: (0731) 150-611
Fax: (0731) 150-602
eMail: e.hochgeladen@blutspende.de
Hinweise:
Status: Gültig
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Referenzlabor
Sabine Kaiser
Tel.: (0731) 150-610
Fax: (0731) 150-602
eMail: s.kaiser@blutspende.de
Laborbereich Klinik
Lydia Göbel
Tel.:
(0731) 150-507 oder
(0731) 500-46001
Fax: (0731) 150-565, 500-46002
eMail: Depot-ulm@blutspende.de
Blutspender- und Produktionsabteilung, Stammzelllabor
Abteilungsleiter
Dr. med. Markus Wiesneth
Blutspende / Plasmapherese
Christa Stadler, Ärztin
Zytapherese / Eigenblut
Dr. med. Peter Reinhardt
Hämatologisches Labor / Zytapherese
Eva Gerstner
Karin Flor
Kryokonservierung
Dr. med. Peter Schauwecker
Blutspendeteams
Isolde Sander
Ambulante Transfusion
Christine Kroll
Tel.: (0731) 150-520
Fax: (0731) 150-509
eMail: m.wiesneth@blutspende.de
Tel.: (0731) 150-544
Fax: (0731) 150-653
eMail: c.stadler@blutspende.de
Tel.: (0731) 150-6804
Fax: (0731) 150-653
eMail: p.reinhardt@blutspende.de
Tel.: (0731) 150-543
Fax: (0731) 150-653
eMail: k.flor@blutspende.de
Tel: (0731) 150-6805
Fax: (0731) 150-643
eMail: p.schauwecker@blutspende.de
Tel: (0731) 150-566
Fax: (0731) 150-575
eMail: i.sander@blutspende.de
Tel.:
Tel.:
Fax:
eMail:
Hinweise:
(0731) 150-540
(0731) 150-6842
(0731) 150-653
c.kroll@blutspende.de
Status: Gültig
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Knochenmark- und Stammzellpräparation
Birgit Maccari
Durchflusszytometrie
Dr. med. Peter Schauwecker
Chimärismusanalyse
Dr. med. Marion Schüll
PD Dr. med. Bernd Jahrsdörfer
Produktion / Vollblut
Udo Schäfer
Tel.: (0731) 150-623
Fax: (0731) 150-545
eMail: b.maccari@blutspende.de
Tel.: (0731) 150-6805
Fax: (0731) 150-545
eMail: p.schauwecker@blutspende.de
Tel : (0731) 150-6871
Fax : (0731) 545
eMail : m.schuell@blutspende.de
Tel.: (0731) 150-592
Fax: (0731) 150-545
eMail: u.schäfer@blutspende.de
Transplantationsimmunologie / Abstammungsgenetik
Abteilungsleiter
PD Dr. med. Joannis Mytilineos
HLA-Labor
Dr. med. Daniel Fürst
Claudia Flach
Tel.: (0731) 150-523
Fax: (0731) 150-650
eMail: j.mytilineos@blutspende.de
Tel.: (0731) 150-580
Fax: (0731) 150-650
eMail: d.fuerst@blutspende.de
Tel.: (0731) 150-592
Fax: (0731) 150-650
eMail: c.flach@blutspende.de
Molekulare Diagnostik und molekulare Therapie
Abteilungsleiter
Dr. med. Klaus Schwarz
Molekulare Diagnostik/Sequenzierungen
Dr. biol. hum. Ulrich Pannicke
Tel.: (0731) 150-599/642
Fax: (0731) 150-645
eMail: klaus.schwarz@uni-ulm.de
Tel.:
Fax:
(0731) 150-599
(0731) 150-575
eMail: ulrich.pannicke@uni-ulm.de
Hinweise:
Status: Gültig
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Abstammungsgenetik
Regina Geyer
Zellsorter
Dr. rer. medic. Markus Rojewski
Tel.: (0731) 150-508
Fax: (0731) 150-645
eMail: r.geyer@blutspende.de.
Tel:
Fax:
(0731) 150-633
(0731) 150-575
eMail: markus.rojewski@uni-ulm.de
Qualitätssicherung
Dr. Klaus Koerner
Tel.: (0731) 150-590
Fax: (0731) 150-500
Sekretariat
Alexandra Mörz
Tel.: (0731) 150-549
Fax: (0731) 150-500
eMail: a.moerz@blutspende.de
AMG-Verantwortliche
Leiter der Herstellung
Dr. med. Markus Wiesneth
Leiter der Qualitätskontrolle
Dr. rer. nat. Klaus Koerner
Stufenplanbeauftragte
Dr. hum. biol. Uschi Mayr-Wohlfart
Tel.: (0731) 150-520
Fax: (0731) 150-509
eMail: m.wiesneth@blutspende.de
Tel.: (0731) 150-590
Fax: (0731) 150-500
Tel.: (0731) 150-517
Fax: (0731) 150-602
eMail: u.mayr-wohlfart@blutspende.de
Vertriebsleiter und Informationsbeauftragter
Dr. rer. biol. hum. Jörgen Erler
Tel.: (0731) 150-529
Fax: (0731) 150-502
eMail: j.erler@blutspende.de
Hinweise:
Status: Gültig
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Ausgabe
Ausgabe und Probenannahme Klinik
Lydia Göbel
Tel.:
(0731) 150-536 oder
(0731) 500-46000
Fax: (0731) 150-567, 500-46002
eMail: Depot-ulm@blutspende.de
Ausgabe und Probenannahme Institut
Stephan Kluge
Tel.: (0731) 150-511 oder -534
Fax: (0731) 150-502
eMail: s.kluge@blutspende.de
Hinweise:
Status: Gültig
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Klinische Chemie
Alanin-Aminotransferase (ALT)/Syn. Glutamat-Pyruvat-Transaminase (GPT)
Methode:
Optimierte Standardmethode IFCC
Material:
1 ml Serum/Heparin- oder EDTA-Plasma
Indikation:
Screening von Blutspenderproben auf Leberzellschädigung
Lagerung und Transport: Maximal 3 Tage, zwischen +4 °C bis +8 °C
Normalwerte: Frauen: < 34 U/l
Männer: < 45 U/l
Alkalische Phosphatase (AP)
Methode:
Kinetische Messung
Material:
1 ml Serum/Heparinplasma
Indikation:
Screening auf hepatobiliäre- und ossäre Erkrankungen
Normalwerte: 30 – 120 U/l
Aspartat-Aminotransferase (AST)
bzw. Glutamat-Oxalacetat-Transaminase (GOT)
Methode:
Material:
Indikation:
Kinetische Messung
1 ml Serum/ Heparin- oder EDTA-Plasma
Erkrankungen der Leber und der Gallenwege,
Herzinfarkt, Skelett-/Muskelschäden
Männer: < 35 U/l
Cholesterin
Methode:
Enzymatischer photometrischer Test
Material:
Indikation:
Früherkennung eines Arteriosklerose-Risikos
Lagerung und Transport: Maximal 3 Tage, zwischen +4°C bis 8 °C
Normalwerte: < 5,2 mmol/l
Hinweise:
Status: Gültig
Seite 13 von 45
Cholinesterase (CHE)
Methode:
Material:
Indikation:
Kinetische Messung
Verdacht auf Leberparenchymschaden mit eingeschränkter Funktionsleistung des Organs
Normalwerte: Frauen: 3.930 – 10.800 U/l
Männer: 4.620 – 11.500 U/l
C-reaktives Protein (CRP)
Methode:
Material:
Indikation:
Immunturbidimetrie
Nachweis einer akuten Infektion sowie Überwachung entzündlicher Prozesse wie akute rheumatische und gastrointestinale Krankheiten
Lagerung und Transport: Maximal 3 Tage zwischen +4 °C bis +8 °C
Normalwerte: < 5 mg/l
Eiweiß (Protein)
Methode:
Biuret
Material:
1 ml Serum/EDTA-Plasma oder Lithium-Heparin-Plasma
Indikation:
Screening der Blutspender (Plasmaspender)
Lagerung und Transport: Maximal 3 Tage, zwischen +4°C bis +8 °C
Normalwerte: 64 – 83 g/l
Elektrolyte (Na, K, Ca)
Methode:
Ionenselektive Elektroden (LEA-Analyzer, Fa. Nova)
Material:
1,2 ml Lithium-Heparinblut (S-Monovette)
Indikation:
Zellseparator-Spender mit G-CSF-Stimulation
Lagerung und Transport: Bei Raumtemperatur innerhalb von zwei Stunden
Bestimmungen
Natrium
Kalium
Calzium
Hinweise:
Normalwerte
136 – 146 mmol/l
3,5 – 5,0 mmol/l
1,0 – 1,3 mmol/l
Status: Gültig
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Elektrophorese-Serumprotein
Methode:
Elektrophoretische Trennung der Serumproteine auf Cellulose-AcetatTräger (CAF-Elektrophorese)
Material:
1 ml Serum
Indikation:
Diagnose von akuten und chronischen Entzündungsreaktionen,
monoklonale
Gammopathien,
pathologischer
Ausfall
von
Laborbasisuntersuchungen, Differentialdiagnose der Dysproteinämie
Fraktion
Normalwerte
Albumin
α1
α2
β
γ
55,3 – 68,9 %
1,6 – 5,8 %
5,9 – 11,1 %
7,9 – 13,9 %
11,4 – 18,2 %
Ferritin
Methode:
Material:
Indikation:
2-Schritt-Chemilumineszenz-Mikropartikelimmunoassay (CMIA)
1 ml Serum/EDTA-Plasma
Screening der Blutspender, Screening bei chronischer Erythrozytensubstitution, Differentialdiagnose bei Anämie und Polyglobulie
Lagerung und Transport: Maximal 7Tage, zwischen +2 °C bis +8 °C
Normalwerte: Frauen: 6,9 - 282,5 ng/ml (prämenopausal)
Frauen: 14,0 - 233,1 ng/ml (postmenopausal)
Männer: 18,7 - 323,0 ng/ml (18 – 30 Jahre)
Männer: 16,4 - 293,9 ng/ml (31 – 60 Jahre)
Freies Hämoglobin
Methode:
Material:
Photometrisch
1 ml Plasma / Serum / Waschüberstände von tiefgefrorenen
Erythrozytenkonzentraten nach dem Auftauen
Indikation: Ausschluss einer Hämolyse bei Blutpräpraten
Lagerung und Transport: Maximal 24 Std. zwischen +4°C bis +8°C, Überstände von
abzentrifuierten Proben max. 3 Tage zwischen +4°C bis +8°C.
Normalwerte: im Plasma <5 mg/dl
im Serum < 20 mg/dl
im letzten Waschüberstand bei Erythrozytenkonzentraten:
Hämolyserate < 0,8 %
Hinweise:
Status: Gültig
Seite 15 von 45
Gamma-Glutamyl-Transferase (GGT)
Methode:
Material:
Indikation:
Kinetische Messung
1 ml Serum/Heparin-Plasma
Verdacht auf Leber- und Gallenwegserkrankungen
Differentialdiagnose: Leber- und Gallenwegserkrankungen
Kontrolle des chronischen Alkoholismus
Normalwerte: Frauen:
< 38 U/l
Männer:
< 55 U/l
Gesamtbilirubin
Methode:
Photometrische Messung
Material:
Indikation:
Diagnose des Ikterus
Lagerung und Transport: Maximal 3 Tage, zwischen +4 °C bis +8 °C, vor
Lichteinstrahlung schützen
Normalwert: 1,7 – 21 µmol/l
Glukose
Methode:
Material:
Indikation:
Enzymatisch
Beurteilung des Kohlenhydratstoffwechsels
Suchtest auf Diabetes mellitus
Lagerung und Transport: Nach Entnahme max. 1 h bei Raumtemperatur und von
zellulären Bestandteilen trennen, Serum maxi. 3 Tage, zwischen +4 °C
bis +8 °C
Normwalwert: 4,1 – 5,9 mmol/l nüchtern
Harnanalyse
Methode:
Teststreifen-Farbreaktion
Material:
10 ml Urin
Indikation:
Spenderscreening
Lagerung und Transport: Bei Raumtemperatur innerhalb von sechs Stunden
Bestimmung: - Eiweiß
- Glukose
Hinweise:
Status: Gültig
Seite 16 von 45
Harnsäure
Methode:
Material:
Indikation:
Enzymatisch
Ausschluß von Gicht, Kontrolle der Zytostatikabehandlung,
Nierenfunktion
Normalwerte: Frauen: 155 – 357 µmol/l
Männer: 208 – 428 µmol/l
Immunglobulin A (IgA)
Methode:
Immunturbidimetrie
Material:
Indikation:
Differentialdiagnose des Immungloblinmangels
Normalwert: 0,7 - 4,0 g/l
Immunglobulin G (IgG)
Methode:
Immunturbidimetrie
Material:
Indikation:
Normalwert: 7 - 16 g/l
Immunglobulin M (IgM)
Methode:
Immunturbidimetrie
Material:
Indikation:
Normalwert: 0,4 – 2,3 g/l
Kreatinin
Methode:
Enzymatischer Farbtest
Material:
Indikation:
Screening der Nierenfunktion
Normalwerte: Frauen: 45 – 84 µmol/l
Männer: 59 – 104 µmol/l
Hinweise:
Status: Gültig
Seite 17 von 45
Lactat-Dehydrogenase (LDH)
Methode:
Material:
Indikation:
Kinetische Messung
Verdacht auf hämolytische Anämie,
Diagnostik von Organschäden
Männer: < 248 U/l
Magnesium
Methode:
Material:
Indikation:
Photometrischer Farbtest Xylidylblau
1 ml Serum/Plasma (kein EDTA-Plasma!)
Screening von Blutspendern mit G-CSF-Stimulation,
ambulante Anämiepatienten zur Therapieüberwachung
Lagerung und Transport: Maximal 3 Tage, zwischen +4 °c bis +8 °C
Normalwerte: Frauen: 0,77 – 1,03 mmol/l
Männer: 0,73 – 1,06 mmol/l
Transferrin
Methode:
Material:
Indikation:
Immunturbidimetrie
Screening auf Hämochromatose und Diagnostik bei
Eisenverteilungsstörungen
Normalwert: 2,00 – 3,60 g/l
Löslicher Transferrin-Rezeptor (sTfR)
Methode:
Turbidimetrie
Material:
1 ml Serum/Lithium-Heparin-Plasma
Indikation:
Beurteilung des Eisenhaushalts bei Anämiepatienten
Normalwert: 0,90 – 2,30 mg/l
Triglyzeride
Methode:
Enzymatisch
Material:
Indikation:
Früherkennung eines Arteriosklerose-Risikos
Normalwert: < 2,3 mmol/l
Hinweise:
Status: Gültig
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Gerinnung
Thromboplastinzeit (TPZ, Quick-Wert)
Methode:
Nephelometrie
Material:
1 ml Citrat-Plasma
Indikation:
Hämostase-Störung
Lagerung und Transport: Sofort nach Entnahme zentrifugieren und Citrat-Plasma
tiefgefroren bei -20°C lagern
Normalwert: 70 – 130 %
Thrombinzeit (TZ)
Methode:
Nephelometrie
Material:
1 ml Citrat-Plasma
Indikation:
Hämostase-Störung
Normalwert: 14 – 21 Sekunden
Aktivierte partielle Thromboplastinzeit (PTT)
Methode:
Nephelometrie
Material:
1 ml Citrat-Plasma
Indikation:
Hämostase-Störung
Normalwert: 23 – 35 Sekunden
Fibrinogen
Methode:
Nephelometrie nach Clauss
Material:
1 ml Citrat-Plasma
Indikation:
Hämostase-Störung
Normalwert: 1,8 - 3,5 g/l
Hinweise:
Status: Gültig
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Infektionsserologie
CMV-IgG-Antikörper (Anti-CMV-IgG)
Methode: 2-Schritt-Chemilumineszenz-Mikropartikelimmunoassay (CMIA)
Material: 1 ml Serum oder EDTA-Plasma
Indikation: Screening von Blutspender- und Patientenproben mit unbekanntem
Antikörperstatus
CMV-IgM-Antikörper (Anti-CMV-IgM)
Indikation: Screening von Blutspender- und Patientenproben mit unbekanntem
Antikörperstatus
Hepatitis-B-Virus-Core-Antikörper (Anti-HBc)
Indikation: Nachweis einer (durchgemachten) Hepatitis-B-Virus-Infektion
Hepatitis-B-Surface-Antigen (HBs-Ag)
Material: 1 ml Serum oder Plasma
Indikation: Nachweis einer Hepatitis-B-Virus-Infektion
Hepatitis-B-Surface-Antikörper (Anti-HBs)
Material: 1 ml Serum oder Plasma
Indikation: Nachweis des Immunitätsstatus gegen Hepatitis-B-Virus,
Kontrolle des Impfstatus (>100 IU/l = Impfschutz vorhanden)
Hinweise:
Status: Gültig
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Hepatitis-C-Virus- (HCV) Antikörper (Anti-HCV)
Indikation: Nachweis einer Hepatitis-C-Virus-Infektion
Human-Immunodeficiency-Virus-Typ-1/2-Antikörper (Anti-HIV-1/2) und p24-Ag
Indikation: Nachweis einer HI-Virus-Infektion der Typen 1 und 2
Lues-Antikörper (Syphilis TP)
Indikation: Screening auf eine Lues-Infektion
Lagerung und Transport: Maximal 7 Tage bei +2 °C bis +8 °C
Hinweise:
Status: Gültig
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Molekulare Virusdiagnostik
CMV-DNA
Methode:
PCR-Realtime-Detektion mit Light Cycler
artus® CMV-LC-PCR-Kit, Fa. Qiagen, Hamburg
CE-zertifiziert, Nr. 0197
Analysegerät:
LightCyclerTM, Roche Diagnostics
Material:
1 ml Vollblut
Indikation:
Nachweis von CMV-Sequenzen in Nabelschnurblut
Nachweisgrenze: 116 Kopien/ml
Lagerung und Transport: Vollblut maximal 48 Stunden bei +4 °C bis max. Raumtemperatur
HAV-RNA
Methode:
RT-PCR, Realtime-Detektion mit TaqMan-Hybridisierungssonden,
kompetitive interne Kontrollsequenz,
DRK-HAV-PB19-PCR-Kit, CE-zertifiziert CE DE CA24/20381/007
Analysegerät:
ABI Prism 7500 Sequence Detection System
Material:
EDTA-Vollblut oder Plasma, Menge nach Absprache
Indikation:
Screening von Blutspendeproben auf HAV-Sequenzen
Cut-off:
5 x 104 IU/ml Spenderplasma
Nachweisgrenze: 60 IU/ml
Lagerung und Transport: Vollblut maximal 48 Stunden (abzentrifugiert max. 56 Stunden)
bei +4 °C bis max. Raumtemperatur; abgetrenntes Plasma maximal
7 Tage
HBV-DNA
Methode:
kompetitive interne Kontrollsequenz,
DRK-HBV-PCR-Kit , CE-zertifiziert, CE 21 10512DE01
Analysegerät:
Material:
Indikation:
Screening von Blutspendeproben auf HBV-Sequenzen
Nachweisgrenze: 1000 IU/ml Vollblut
7 Tage
Hinweise:
Status: Gültig
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HCV-RNA
Methode:
RT-PCR, Realtime-Detektion mit TaqMan Hybridisierungssonden,
kompetitive interne Kontrollsequenz
DRK-HCV-PCR-Kit, CE-zertifiziert, CE 21 10512DE02
Analysegerät:
Material:
Indikation:
Screening von Blutspendeproben auf HCV-Sequenzen
Nachweisgrenze: 1.025 IU/ml Spenderplasma
7 Tage
HIV-RNA
Methode:
DRK-HIV-1-PCR-Kit, CE-zertifiziert, CE 21 10512DE03
Analysegerät:
Material:
Indikation:
Screening von Blutspendeproben auf HIV1-RNA-Sequenzen
Nachweisgrenze: 1000 IU/ml Spenderplasma
bei +4 °C bis max. Raumtemperatur); abgetrenntes Plasma max.
7 Tage
Parvo-B19-DNA
Methode:
DRK-HAV-PB19-PCR-Kit, CE-zertifiziert, CE DE CA24/20381/007
Analysegerät:
Material:
Indikation:
Screening von Blutspendeproben auf Parvo-B19-Sequenzen
Cut off:
1 x 105 IU/ml Spenderplasma
Nachweisgrenze: 1000 IU/ml Spenderplasma
7 Tage
Hinweise:
Status: Gültig
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West Nile Virus (WNV)
Methode:
PCR Realtime-Detektion mit Light Cycler
artus® WNV-LC RT-PCR-Kit, Fa. Qiagen, Hamburg
CE-zertifiziert
Analysegerät:
LightCycler™, Roche Diagnostics
Material:
mindestens 500 µl EDTA-Plasma oder ACD-Plasma
Indikation:
Nachweis von WNV-Sequenzen in Spenderplasma
Nachweisgrenze: 1028 cop/ml Spenderplasma
7 Tage
Hinweise:
Status: Gültig
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Bakteriologie
Mikrobiologische Kontrolle
Methode:
Automatische kontinuierliche Wachstumskontrolle in Flüssigmedium
(aerob und anaerob)
Analysegerät:
BacT/Alert Analysesystem, bioMerieux, Inc
Material:
2 x 10 ml Medium (Zellkonzentrat, Plasma, Spülflüssigkeit,
Inkubationslösung)
Indikation:
Nachweis von aeroben oder anaeroben Mikroorganismen
Bebrütungstemperatur:
30 – 37°C
Dauer:
7 bis 14 Tage
Lagerung und Transport: bei Raumtemperatur
Bakterieller Schnelltest
Methode:
Schnelltestmethode auf bakterielle Kontamination durch FACS
Analyse
Analysegerät:
BactiFlow ALS®, AES Chemunex GmbH
Material:
1 ml Medium (Thrombozytenkonzentrate, Plasma)
Indikation:
Nachweis von lebenden Mikroorganismen (Gesamtkeimzahl)
Dauer:
ca. 3 Stunden
Lagerung und Transport: bei Raumtemperatur
Hinweise:
Status: Gültig
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Blutgruppenserologie und Immunhämatologie
Vollständige Blutgruppenbestimmung (AB0, Rhesusfaktor, Antikörpersuchtest)
Methode: Hämagglutinationstest
Material: 10 ml Venenblut (nativ) / EDTA-Blut
Indikation: Serologische Bestimmung der Blutgruppenmerkmale, z. B. bei möglichem
Blutbedarf
Transport: Bei Raumtemperatur, Anlieferung innerhalb von 24 Stunden
Semiquantitative Antigendichtebestimmung
Methode:
Material:
Indikation:
Transport:
Hämagglutinationstest
10 ml Venenblut (nativ) oder 10 ml EDTA-Blut
Verdacht auf Abschwächung eines Antigens, z.B. V.a. McLeod-Phänotyp
Bei Raumtemperatur, Anlieferung innerhalb von 24 Stunden
Quantitative Antigendichtebestimmung
Methode:
Material:
Indikation:
Transport:
Durchflusszytometrie
10 ml EDTA-Blut
Verdacht auf Abschwächung des Antigens D
Bestimmung spezieller Blutgruppenantigene
Material: 10 ml Venenblut (nativ) oder 10 ml EDTA-Blut
Indikation: Verdacht auf Alloimmunisierung, Verdacht auf "Null-Phänotyp“,
Bereitstellung kompatibler Präparate
Verträglichkeitsprobe (Kreuzprobe)
Methode:
Material:
10 ml Venenblut (nativ) oder 10 ml EDTA-Blut, 20 ml bei >5 Präparaten
oder bekannten serologischen Problemen
Indikation: Vor Transfusion
Hinweise:
Status: Gültig
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Antikörper-Identifizierung
Methode:
Material:
Indikation:
Transport:
Identifizierung des Antikörpers bei positivem Antikörpersuchtest
Antikörpertiter
Methode:
Material:
Indikation:
Transport:
Bestimmung des Titers eines Antikörpers nach Identifizierung
Kontrolle des Antikörpertiters
Methode:
Material:
Indikation:
Transport:
Verlaufskontrolle des Titers eines Antikörpers, z.B. bei Schwangerschaft
Isoagglutinin-Titer
Material: 10 ml Venenblut (nativ) oder 10 ml EDTA-Blut
Indikation: Bestimmung des Titers der Isoagglutinine, z. B. vor und nach KMT,
bei inkompatibler Nierentransplantation
Direkter Antiglobulintest
Material: 10 ml EDTA-Blut
Indikation: Nachweis von Komplement- oder Immunglobulin-Beladung auf der Erythrozytenoberfläche, z.B. bei V. a. Autoimmunhämolyse oder inkompatible
Transfusionen
Hinweise:
Status: Gültig
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Direkter Antiglobulintest bei Neugeborenen
Material: 5 ml Nabelschnurblut
Indikation: Nachweis von Komplement- oder Immunglobulin-Beladung auf der Erythrozytenoberfläche, z.B. bei V.a. Erythroblastose
Aufgegliederter direkter Antiglobulintest (IgG/C3d)
Indikation: Spezifischer Nachweis von Komplement oder Immunglobulin G auf der
Erythrozytenoberfläche, z. B. bei V. a. Autoimmunhämolyse, inkompatible
Transfusionen
Aufgegliederter direkter Antiglobulintest (einschl. IgA und IgM)
Indikation: Spezifischer Nachweis von Immunglobulin M oder Immunglobulin A auf der
Erythrozytenoberfläche, z.B. bei V. a. Autoimmunhämolyse
Hitzeresistenztest
Methode:
Material:
Indikation:
Transport:
Wärmeexposition, Hämagglutinationstest
10 ml Venenblut (nativ),
Nachweis von IgG-Isoagglutininen, z.B. bei V.a. AB0-Erythroblastose
Untersuchungen bei V. a. Autoimmunhämolyse
Methode: Hämagglutinationstest, Elutionsverfahren
Material: 10 ml Venenblut (nativ) und 10 ml EDTA-Blut
Indikation: Nachweis und Charakterisierung von Autoantikörpern bei V. a. Autoimmunhämolyse
Hinweise:
Status: Gültig
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Untersuchungen bei V. a. Autoimmunhämolyse bei negativem direkten
Antiglobulintest
Material: Nach Vereinbarung
Indikation: Nachweis und Charakterisierung von Autoantikörpern bei V. a. Autoimmunhämolyse
Untersuchungen bei V. a medikamenteninduzierte Autoimmunhämolyse
Material: 10 ml Venenblut (nativ) und 10 ml EDTA-Blut
Indikation: Nachweis und Charakterisierung von medikamentenabhängigen Autoantikörpern (genaue Medikamentenanamnese erforderlich)
Donath-Landsteiner-Antikörper
Methode:
Material:
Indikation:
Transport:
Wärmeexposition, Hämagglutinationstest
10 ml Venenblut (nativ), sofort bei 37°C gerinnen lassen und warm trennen
Nachweis von biphasischen Hämolysinen bei V.a. Autoimmunhämolyse
Aufgetrenntes Material bei Raumtemperatur, Anlieferung innerhalb von 24
Stunden
T-Aktivierung oder positiver direkter Antiglobulintest bei bakteriellen Infekten
Methode:
Material:
Indikation:
Transport:
Hämagglutinationstest, z.T. mit Lektinen
10 ml Venenblut (nativ), 5 ml EDTA-Blut
Nachweis von T-Aktivierung, z.B. bei Clostridieninfektion
Verlaufsuntersuchung bei Autoimmunhämolyse
Methode:
Material:
Indikation:
Transport:
Verlaufskontrolle von Autoantikörpern bei Autoimmunhämolyse
Hinweise:
Status: Gültig
Seite 29 von 45
Abklärung von Transfusionreaktionen
Methode:
Material:
Hämagglutinationstest, bakteriologische Kultur
Vor Transfusion: 10 ml Venenblut (z.B. Rückstellungsprobe der
Kreuzprobe), nach Transfusion: 10 ml Venenblut und 5 ml EDTA-Blut;
Restmaterial (Beutel) aller transfundierten Präparate (steril)
Indikation: Verdacht auf hämolytische Transfusionsreaktion, Ausschluß bakterieller
Kontaminationen
Transport: Bei 4 °C, Anlieferung innerhalb von 24 Stunden
Kryoglobuline
Methode:
Material:
Indikation:
Transport:
Kälteexposition, qualitative Beurteilung von Ausfällungen
V. a. Kryoglobulinämie
Bei 37 °C, Anlieferung möglichst sofort, ggf. abgesert transportieren
Kälteagglutinine
Methode:
Material:
Indikation:
Transport:
Kälteexposition, Hämagglutination
10 ml Venenblut (nativ)
V. a. Kryoglobulinämie
Bei 37 °C, Anlieferung möglichst sofort, ggf. abgesert transportieren
Bestimmung von Erythrozytenpopulationen nach allogener KM- /
Blutstammzelltransplantation (Geltechnik)
Methode:
Material:
Indikation:
Transport:
5 ml EDTA-Blut
Orientierende Quantifizierung unterschiedlicher Erythrozytenpopulationen
Bestimmung von Erythrozytenpopulationen nach KMT (mikroskop.
Immunfluoreszenz)
Methode: Immunfluoreszenz
Indikation: Quantifizierung unterschiedlicher Erythrozytenpopulationen
(Nachweis Spuren antigen-positiver Erythrozyten im AB0-System)
Hinweise:
Status: Gültig
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Bestimmung von Erythrozytenpopulationen nach KMT
(differenzielle Agglutination)
Methode: Durchflusszytometrie
Indikation: Quantifizierung unterschiedlicher Erythrozytenpopulationen an Hand von
Unterschieden im AB0-System
Bestimmung von Erythrozytenpopulationen nach KMT (Durchflusszytometrie)
Methode: Immunfluoreszenz (flowzytometrische Messung)
Indikation: Quantifizierung unterschiedlicher Erythrozytenpopulationen anhand
von Unterschieden im Rh-System
Nachweis adsorbierter Blutgruppensubstanzen
Methode: Hämagglutination
Indikation: Nachweis adsorbierter Blutgruppensubstanzen nach minorinkompatibler
KMT
Untersuchung auf Partial D
Methode:
Material:
Indikation:
Transport:
Hämagglutination
5 ml EDTA-Blut
Probleme bei D-Typisierung, V. a. Partial D
DNA-Typisierung von fetalen Blutgruppenantigenen aus Fruchtwasser
Methode:
Material:
Indikation:
Transport:
Polymerase-Kettenreaktion
5 ml Fruchtwasser
V. a. Morbus hämolyticus neonatorum
Hinweise:
Status: Gültig
Seite 31 von 45
DNA-Typisierung von Blutgruppenantigenen nach Vortransfusion
oder Autoimmunhämolyse
Methode: Polymerase-Kettenreaktion
Indikation: Ersatz für die serologische Antigenbestimmung bei Vortransfusionen oder
stark positivem direktem Antiglobulintest
Charakterisierung von RHD Allelen
Methode: Hämagglutination, Polymerase-Ketten-Reaktion, Sequenzierung
Indikation: Unklares Ergebnis bei serologischer D-Bestimmung; Anti-D-Immunisierung
bei D-positiven Personen
Charakterisierung von RHCE Allelen
Methode: Hämagglutination, Polymerase-Ketten-Reaktion, Sequenzierung
Indikation: Unklares Ergebnis bei serologischer Rh-Bestimmung; Alloimmunisierung
bei Antigen-positiven Personen
DNA-Typisierung seltener Antigene
Indikation: Bereitstellung Antigen-negativer Präparate im Colton, Dombrock oder
Scianna-System, Kontrolle des Antigenstatus für diese Blutgruppensysteme
Genotypisierung (Bestimmung der Zygotie)
Indikation: Bestimmung des Genotyps des voraussichtlichen Vaters zur Abschätzung
des Wiederholungsrisikos eines Morbus hämolyticus neonatorum
Hinweise:
Status: Gültig
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Identifizierung von Antikörpern gegen hochfrequente Antigene
Methode Hämagglutination
Material: 20 ml Nativblut, 10 ml EDTA-Blut
Indikation: Durchgehend positive Reaktionen bei der Antikörper-Identifizierung mit
kommerziellen Identifizierungszellen
Nachweis gebundener spezifischer Antikörper
Methode: Elutionsverfahren (Säureelution), Hämagglutination
Material: 20 ml Nativblut, 10 ml EDTA-Blut
Indikation: Autoimmunhämolyse, inkompatible Vortransfusion, unklarer positiver
Antiglobulintest
Antigentypisierung nach Chloroquinelution
Methode:
Material:
Indikation:
Transport:
Elutionsverfahren (Chloroquinelution), Hämagglutination
10 ml EDTA-Blut
Antigenbestimmung bei positivem direktem Coombstest
Autoabsorption
Methode: Absorptionsverfahren, Hämagglutination
Indikation: Nachweis von Alloantikörpern in Gegenwart von Kälte- bzw.
Wärmeautoantikörpern
Transport: Bei Raumtemperatur, Lieferung innerhalb von 24 Stunden bei
Wärmeautoantikörpern bei 37 °C, Anlieferung sofort bei
Kälteautoantikörpern
Differenzialabsorption
Methode: Absorptionsverfahren, Hämagglutination
Material: 10 ml Nativblut oder 10 ml EDTA-Blut
Indikation: Nachweis von Alloantikörpern in Gegenwart von Autoantikörpern
oder Antikörpern gegen hochfrequente Antigene, Auflösung von
Antikörpergemischen
Hinweise:
Status: Gültig
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Hämatologie
Blutbild (elektronisch)
Methode:
Material:
Elektronische Zellzählung (CellDyn 3200 Fa. Abbott)
2 ml EDTA-Blut
Cave: Citrat-Blut bei EDTA-Pseudothrombozytopenie
Indikation: Blutspenderscreening, Kontrolle hämatologischer Patienten
Bestimmungen
Leukozyten
Granulozyten
Lymphozyten
Monozyten
Eosinophile
Basophile
Erythrozyten
Hämoglobin (Hb)
Hämatokrit (HK)
MCV (mittleres corpusculäres Volumen)
MCH (mittleres corpusculäres Hämoglobin)
MCHC (mittlere zelluläre Hämoglobinkonzentration)
Thrombozyten
MPV (mittleres Plättchenvolumen)
Retikulozyten
(0,5 – 2,0 %)
Normalwerte
4,0 – 10,0 x 109/l
1,5 – 6,5 x 109/l
1,1 – 3,4 x 109/l
0,1 – 0,6 x 109/l
0,0 – 0,4 x 109/l
0,0 – 0,2 x 109/l
4,4 – 6,0 x 1012/l
m 13,5 – 18,0 g/dl
w 12,0 – 16,0 g/dl
m 0,38 – 0,52 l/l
w 0,37 – 0,46 l/l
82 – 101 fl
27 – 34 pg
32 – 36 g/dl
140 – 440 x 109/l
7,4 – 11,0 fl
10 – 75 x 109/l
Methode:
Kammerzählung (Neubauer)
Material:
1 ml EDTA-Blut
Indikation:
Kontrolle auffälliger Ergebnisse der elektronischen Messung
Bestimmung: - Leukozyten
- Thrombozyten
Hb-Messung
Methode:
Material:
Indikation:
Bestimmung:
Azidmethämoglobin-Photometer (HemoCue)
1 Tropfen frisches Kapillarblut
Blutspenderscreening
Hämoglobin
Hinweise:
Status: Gültig
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Differentialblutbild (manuell)
Methode:
Material:
Indikation:
Bestimmung:
Blutausstrich mikroskopisch (Pappenheim-Färbung)
1 ml EDTA-Blut (nicht älter als 6 Stunden)
Kontrolle auffälliger Ergebnisse der elektronischen Messung
Morphologie von Erythrozyten, Thrombozyten und Leukozyten
mit Differentialverteilung und Nachweis pathologischer Zellen
Differentialverteilung
Stabkernige
Segmentkernige
Lymphozyten
Monozyten
Eosinophile
Basophile
Normalwerte
0 – 5%
50 – 70 %
25 – 40 %
2 – 10 %
2 – 4%
0 – 1%
Viabilität
Methode:
Fluoreszenzmikroskopisch (Ethidium-Bromid/Acridin-Orange)
Material:
0,1 ml Zellsuspension (EDTA / ACD)
Indikation:
Qualitätskontrolle der NC-Präparate
Bestimmung: Anteil viabler kernhaltiger Zellen
Knochenmarkzytologie
Methode:
Knochenmarkausstrich mikroskopisch (Pappenheim-Färbung)
Material:
4 ml EDTA-Knochenmarkaspirat
Indikation:
Diagnostik hämatologischer Systemerkrankungen
Bestimmung: Morphologie von Erythropoese, Granulopoese und Thrombozytopoese
und Nachweis pathologischer Veränderungen
Bestrahlung von Zellen
Methode:
Material:
Indikation:
30-Gy-Bestrahlung (STS BIOBEAM 8000)
Blutpräparate, Zellproben
Prophylaxe einer Spender-gegen-Wirt-Reaktion
Proliferationshemmung von Zellen für wissenschaftliche Zwecke
Hinweise:
Status: Gültig
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Gewinnung, Manipulation und Charakterisierung von Stammzellen
und anderen speziellen Zellpräparationen
Durchflusszytometrie (FACS-Analyse)
Methode:
Immuntypisierung mit monoklonalen Antikörpern und
Fluoreszenzmarkierung (Cytomics FC500 Beckman Coulter)
Material:
3 ml EDTA-Blut
1 ml KM/Apherese-Suspension
Indikation:
Qualitätskontrolle von Stammzelltransplantaten, Lymphozytenpräparaten
und Separationsmethoden
Bestimmung: CD 2, 3, 4, 8
T-Lymphozyten
CD14
Monozyten
CD19
B-Lymphozyten
CD34/45, CD133 Blutstammzellen
CD40, 80, 83, 86 Dendritische Zellen
CD52
Campath-T-Zell-Depletion
CD56
NK-Zellen
7AAD
Viabilität
Paroxysmale-nächtliche-Hämoglobinurie- (PNH) Diagnostik
Methode:
Durchflusszytometrische Bestimmung der Expression GPI-verankerter
Proteine
Material:
5 ml EDTA-Blut
Indikation: Hämolyse, thrombophile Diathese, Zytopenie mit klinischem Verdacht auf
PNH bzw. PNH-Aplastische-Anämie-Syndrom
Lagerung und Transport: Bei Umgebungstemperatur innerhalb von 48 Stunden
Bestimmung: CD58 und CD59 auf Erythrozyten und Retikulozyten (markiert mit
Thiozolorange);
CD16,
CD24,
CD66b
und
Bindung
von
fluoreszenzmarkiertenm modifizierten Proaerolysin (FLAER) auf
Granulozyten; CD14 und CD48 auf Monozyten; CD48, CD59 auf
Lymphozyten. (Bei Bedarf erweitertes Spektrum GPI-verankerter Proteine
nach telefonischer Vorankündigung.)
Hinweise:
Status: Gültig
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Chimärismusanalyse mit Granulozyten / Lymphozyten aus Blut und Knochenmark
nach allogener Knochenmark-/Blutstammzelltransplantation
Methode:
Genomische quantitative bzw. semiquantitative DNA-Analyse von ShortTandem-Repeat- (STR) Polymorphismen
Ficoll-Trennung von Granulozyten und Lymphozyten
Material:
20 ml EDTA-Blut nach allogener Transplantation
Indikation: Verlaufskontrolle nach allogener Knochenmark-/Blutstammzelltransplantation
Cave:
Vergleichsprobe von Spender und Empfänger vor Transplantation
erforderlich.
Lagerung und Transport: Bei Raumtemperatur nach telefonischer Voranmeldung
Präparation von autologen und allogenen Knochenmarktransplantaten
Methode:
Erythrozytendepletion und Plasmadepletion mit Zellseparator,
T-Zell-Depletion mit monoklonalen Antikörpern,
CD34-Selektion (CliniMacs)
Material:
Knochenmarksuspension mit ACD 1 :10, Heparin 10 – 15 IE/ml)
Lagerung und Transport: Kurier, nur nach telefonischer Vereinbarung
Präparation von autologen und allogenen Blutstammzelltransplantaten
Methode:
CD34-Selektion (CliniMACS)
T-Zell-Depletion mit monoklonalen Antikörpern (CD3, CD52 = Campath)
B-Zell-Depletion mit monoklonalen Antikörpern
Material:
Blutstammzellapheresepräparat nach G-CSF-Mobilisation
Präparation von Spenderlymphozyten zur Immuntherapie
Methode:
Immunmagnetverfahren
Material:
Lymphozyten des Stammzellspenders
Hinweise:
Status: Gültig
Seite 37 von 45
Herstellung von dendritischen Zellen
Methode:
Monozytapherese
Ficoll-Separation, Monozytenadhäsion
Differenzierungskultur mit Zytokinen zur klinischen Anwendung
Material:
Autologe mononukleäre Zellen
Lagerung undTransport: Kurier, nur nach telefonischer Vereinbarung
Kryokonservierung von peripheren Blutstammzell- und Knochenmarktransplantaten, Erythrozyten, Thrombozyten, Lymphozyten und dendritischen Zellen
Methode:
Lagerung in Stickstoff-Dampfphase bei -140 °C mit DMSO- bzw. GlycerinGefrierschutz
Einfriergerät: Biofreeze BV 50 (Consartic)
Material:
Autologe und allogene Zellen zur Transplantation,
Zellen mit seltenem Antigen-Muster
Fluoreszenzaktivierte Hochgeschwindigkeitszellsortierung (FACS)
Methode:
Material:
Indikation:
Sortierung mittels Hochgeschwindigkeitssortiersystem
Variabel, je nach zu sortierender Zellpopulation und Zellmenge
Generierung reiner Zellpopulationen, insbesondere bei Sortierung unter
Berücksichtigung mehrerer immunphänotypischer Marker
Lagerung und Transport: nach telefonischer Anmeldung
Hinweise:
Status: Gültig
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Transplantationsimmunologie
HLA-Klasse-I-Antikörperscreening mittels LCT
Methode:
Material:
Indikation:
Komplementabhängiger Mikrolymphozytotoxizitätstest
10 ml Vollblut
Nachweis von komplementbindenden HLA-Klasse-I-Antikörpern vor/nach
Organ- oder Knochenmarktransplantation, bei HLA-sensibilisierten Patienten vor Thrombozytentransfusion, nach Transfusionszwischenfällen bei
gegebener Indikation
Lagerung und Transport: Transport bei Raumtemperatur; Vollblut wird bei +2 °C bis
+8 °C gelagert, Serum bei –20 °C
HLA-Klasse-I-Antikörperdifferenzierung mittels LCT
Methode:
Material:
Indikation:
Komplementabhängiger Mikrolymphozytotoxizitätstest
10 ml Vollblut
Nachweis von spezifischen komplementbindenden HLA-Klasse-IAntikörpern vor/nach Organ- oder Knochenmarktransplantation,
bei HLA-sensibilisierten Patienten vor Thrombozytentransfusion, nach
Transfusionszwischenfällen bei gegebener Indikation
Lagerung und Transport: Transport bei Raumtemperatur; Vollblut wird bei +2 °C bis
+8 °C gelagert, Serum bei –20 °C
HLA-Klasse-I-Antikörperscreening mittels Festphasentechnik
Methode:
Material:
Indikation:
ELISA/Luminex
10 ml Vollblut, Plasma
Nachweis von HLA-Klasse-I-Antikörpern (komplementunabhängig)
vor/nach Organ- oder Knochenmarktransplantation, bei HLAsensibilisierten Patienten vor Thrombozytentransfusion, nach
Lagerung und Transport: Transport bei Raumtemperatur, Vollblut wird bei +2 °C bis
+8 °C gelagert, Serum bzw. Plasma bei –20 °C
Hinweise:
Status: Gültig
Seite 39 von 45
HLA-Klasse-II-Antikörperscreening mittels Festphasentechnik
Methode:
Material:
Indikation:
ELISA/Luminex
Nachweis von HLA-Klasse-II-Antikörpern (komplementunabhängig)
vor/nach Organ- oder Knochenmarktransplantation, bei HLAsensibilisierten
Patienten vor Thrombozytentransfusion, nach Transfusionszwischenfällen
bei gegebener Indikation
HLA-Klasse-I-Antikörperdifferenzierung mittels Festphasentechnik
Methode:
Material:
Indikation:
Luminex
Nachweis von HLA-Klasse-I-Antikörpern (komplementunabhängig)
HLA-Klasse-II-Antikörperdifferenzierung mittels Festphasentechnik
Methode:
Material:
Indikation:
Luminex
Nachweis von HLA-Klasse-II-Antikörpern (komplementunabhängig)
HNA-Antikörper mittels Festphasentechnik
Methode:
Material:
Indikation:
Luminex
Verdacht auf TRALI, Nachweis von Granulozytenantikörpern vor Gabe von
Thrombozyten-/Granulozyten-/Plasma-/PBSZ-Präparaten
Hinweise:
Status: Gültig
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CD30-Antikörperbestimmung mittels ELISA
Methode:
Material:
Indikation:
ELISA
Nachweis von Antikörpern gegen das CD30-Molekül vor Organ- oder
Knochenmarktransplantation
HLA-Crossmatch (serologische Verträglichkeitsprobe im HLA-System)
Methode:
Material:
Komplementabhängier Mikrolymphozytotoxizitätstest
Empfänger: 5 – 10 ml Vollblut
10 ml EDTA-, ACD- oder Heparinblut
Spender:
10 ml EDTA-, ACD- oder Heparinblut
bei Organspende Milz 1,5 cm3 oder
mindestens 2 Lymphknoten in steriler physiologischer Kochsalzlösung
Indikation: Verträglichkeitsuntersuchung auf vorhandene HLA-Antikörper vor Organoder Knochenmarktransplantation
Lagerung und Transport: Schneller Transport (nicht > 2 Tage), Raumtemperatur; EDTAACD- oder Heparinblut wird bei Raumtemperatur, Vollblut wird bei +2 °C
bis +8 °C gelagert
Serologische Bestimmung der HLA-Klasse-I-Merkmale (A / B)
Methode:
Material:
Indikation:
Komplementabhängiger Mikrolymphoztotoxizitätstest
10 – 20 ml EDTA-, ACD- oder Heparinblut
Bestimmung der HLA-Merkmale von Spender und Empfänger vor Organoder Blutstammzelltransplantation, Untersuchung bei Krankheitsassoziationen, Abklärung von Erkrankungen mit Autoimmunpathogenese
Lagerung und Transport: Schneller Transport (nicht > 2 Tage), Raumtemperatur
Bestimmung des HLA-B27-Merkmals
Methode:
Sequenz spezifische Oligonukleotid-Sonden, molekularbiologisch
(Luminex-Technologie)
Material:
5 – 10 ml EDTA-, ACD- oder Heparinblut
Indikation: Bei Verdacht auf Morbus Bechterew und anderen mit HLA-B27
assoziierten Erkrankungen
Lagerung und Transport: Raumtemperatur
Hinweise:
Status: Gültig
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Molekularbiologische Bestimmung der HLA-Klasse-I-Merkmale (A, B, C)
Methode:
Sequenz spezifische Oligonukleotid-Sonden (PCR-SSO) (LuminexTechnologie), Amplifikation mit sequenzspezifischen Primern (PCR-SSP),
Sequenzierung (SBT)
Material:
5 – 20 ml EDTA- oder ACD-Blut
Indikation: Bestimmung der HLA-Merkmale von Spender und Empfänger vor Organoder Blutstammzelltransplantation, Untersuchung bei Krankheitsassoziationen, Abklärung von Erkrankungen mit Autoimmunpathogenese
Molekularbiologische Bestimmung der HLA-Klasse-II-Merkmale
(DRB1, DQB1, DPB1 + DQA)
Methode:
Sequenz spezifische Oligonukleotid-Sonden (PCR-SSO) (LuminexTechnologie), Amplifikation mit sequenzspezifischen Primern (PCR-SSP),
Sequenzierung (SBT)
Material:
5 – 20 ml EDTA- oder ACD Blut
Indikation: Bestimmung der HLA-Merkmale von Spender und Empfänger vor Organoder Blutstammzelltransplantation, Untersuchung der Krankheitsassoziationen, Abklärung von Erkrankungen mit Autoimmunpathogenese
Bestimmung von Zytokin-, Chemokin- und anderen Genpolymorphismen
(IL1, IL1R, IL2, IL4, IL4Rα, IL6, IL10, IL12, γ-IFN, TGFβ, TNFα, ICAM-1, CD28,
CTLA4, CCR2, CCR5)
Methode:
Amplifikation mit sequenzspezifischen Primern (PCR-SSP),
Sequenzierung
Material:
Indikation: Bestimmung der Genotypen für die oben genannten Zytokine, Chemokine
bzw. ko-stimulatorischen Moleküle beim Spender und Empfänger vor
Organ- oder Blutstammzelltransplantation, Krankheitsassoziationen, und
Abklärung von Erkrankungen bei Autoimmunpathogenese
Bestimmung von Killerzellen-Immunglobulin-ähnlicher Rezeptor- (KIR)
Genpolymorphismen
Methode:
Material:
Indikation:
Amplifikation mit sequenzspezifischen Primern (PCR-SSP)
Immungenetische Auswahl für die verwandte und nichtverwandte
Knochenmark-/Blutstammzelltransplantation
Lagerung und Transport: Transport bei Raumtemperatur
Hinweise:
Status: Gültig
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Molekulare Diagnostik und molekulare Therapie; Abstammungsgenetik
Chimärismusanalyse mit Granulozyten / Lymphozyten / Lymphozytensubpopulationen nach allogener Knochenmark-/Blutstammzelltransplantation
Methode:
Genomische quantitative bzw. semiquantitative DNA-Analyse von ShortTandem-Repeat- (STR) Polymorphismen
Ficoll-Trennung von Granulozyten und Lymphozyten
Lymphozytensubpopulation-Anreicherung über magnetische BeadSeparation
Material:
5 - 20 ml EDTA-Blut nach allogener Transplantation
Indikation: Verlaufskontrolle nach allogener Knochenmark-/Blutstammzelltransplantation; materno-fötale Transfusion bei Immundefekten
Cave: Vergleichsprobe von Spender und Empfänger vor Transplantation
erforderlich.
Lagerung und Transport: Bei Raumtemperatur nach telefonischer Voranmeldung
Kolonienbildung von hämatopoetischen Progenitorzellen
Methode:
Material:
Methyl-Zellulose-Test
Mononukleäre Zellen nach Zytapherese
Knochenmark
CD34+-selektionierte Zellen
Indikation: Funktionskontrolle von Stammzellpräparaten
Knochenmarkbildungsstörungen
Lagerung und Transport: Raumtemperatur (nicht länger als 24 Stunden)
oder kryokonservierte Präparate
Molekulargenetische Abklärung von Immundefekten
Methode:
Sequenzierung aller aktuell bekannten Gene bei angeborenen Immundefekten und angeborenen Autoimmunitätserkrankungen:
Kombinierte T- und B-Zelldefekte
T-B+NK-SCID:
IL2RG, JAK3
T-B+NK+SCID:
IL7RA, CD45, CD3D, CD3E, CD3Z, CORO1A
T-B-NK+SCID
RAG1, RAG2, DCLRE1C (ARTEMIS), PRKDC
(DNAPKcs), LIG4, XLF
Retikuläre Dysgenesie:
AK2
Omenn Syndrom:
RAG1, RAG2, DCLRE1C (ARTEMIS), IL7RA,
RMRP, ADA, LIG4, IL2RG
Purinstoffwechsel Defekt:
ADA, NP (PNP)
MHC Klasse I Defekt
TAP1, TAP2, TAPBP
MHC Klasse II Defekt:
MHC2TA, RFX5, RFXAP, RFXANK
Hinweise:
Status: Gültig
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Kalziumkanal Defekt:
ORAI1, STIM1
Andere:
CD3G, ZAP-70, FOXN1, STAT5B, CD8, MAGT1
Antikörper-Defekte
Ohne B-Zellen:
BTK, IGHM, IGLL1, CD79A, CD79B, BLNK
Normal/niedrige Anzahl BICOS, CD19, CD81, TNFRSF13B (TACI),
Zellen:
TNFRSF13C (BAFF-R)
Hyper IgM:
CD40LG, CD40, AICDA, UNG, PMS2
Definierte Immundefektsyndrome
Wiskott-Aldrich-Sydrom:
WASP, WIPF1
DNA-Reparatur Defekt:
MRE1, NBS1, DNMT3B, siehe auch T- und BZelldefekte
CHH:
RMRP
Netherton Syndrom:
SPINK5
Hyper IgE:
STAT3, TYK2, DOCK8
Mukokutane Candidiasis:
CARD9
VODI:
SP110
Immundysregulatorische Defekte
Chediak-Higashi Syndrom:
LYST
Griscelli Syndrom:
RAB27A, MYO5A
Hermansky-Pudlak Syndrom:
AP3B1
Hämophagozytose Syndrom:
PRF1, UNC13D, STX11, STXBP2 (MUNC18-2)
Lymphoproliferative Syndrom: SH2D1A, BIRC4 (XIAP), ITK
ALPS
TNFRSF6 (CD95/FAS), TNFSF6
(CD95L/FASL), CASP10, CASP8, NRAS
Andere:
AIRE, FOXP3, IL2RA (CD25), IL10RA, IL10RB,
TREX1
Angeborene Phagozytäre Defekte
CGD:
CYBB, CYBA, NCF1, NCF2
γ-Interferon/IL12-Achse:
IL12RB1, IL12B, IFNGR1, IFNGR2, STAT1
LAD:
ITGB2
Shwachman-Diamond
SBDS
Syndrom:
Defekte der angeborenen Immunität
EDA-ID:
IKBKG (NEMO), IKBA
WHIM:
CXCR4
Epidermodysplasia
TMC6 (EVER1), TMC8 (EVER2)
verruciformis:
HSE:
UNC93B1, TLR3
Andere:
IRAK4, MYD88
Material:
5 – 20 ml EDTA- oder ACD-Blut oder Knochenmark
2 – 10 µg DNA aus Probandengewebe (Blut, Knochenmark,
Hautbiopsie)
Indikation: Nachweis von Immundefekt-Genen, Nachweis von Autoimmunität-verursachenden Genen, Überträger/innen-Diagnostik
Hinweise:
Status: Gültig
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Molekulargenetische Abklärung von Erythrozytosen
Methode:
Sequenzierung der folgenden Gene:
Angeborene Erythrozytose:
Polyzythämia Vera:
EPOR, JAK2, PHD1, PHD2, VHL
JAK2
Material:
5 – 20 ml EDTA- oder ACD-Blut oder Knochenmark
2 – 10 µg DNA aus Probandengewebe (Blut, Knochenmark,
Hautbiopsie)
Indikation: Nachweis von Erythrozytose-Genen, Überträger/innen-Diagnostik
Molekulargenetische Abklärung von Anämien
Methode:
Sequenzierung folgenden Gene:
Dyserythropoietische Anämie:
Aplastische Anämie:
DBA:
Andere:
CDAN1, SEC23B
DKC1, TERC3, TERT, TINF2, NOLA2, NOLA3
RPS19, RPS24
DHFR, PIGA, CD59
Material:
5 – 20 ml EDTA- oder ACD-Blut aus Knochenmark
2 – 10 µg DNA aus Probandengewebe (Blut, Knochenmark, Hautbiopsie)
Indikation: Nachweis von Anämie-Genen, Überträger/innen-Diagnostik
Abstammungsgenetische Untersuchung
Methode:
Genomische semiquantitative Analyse von Short-Tandem-Repeat- (STR)
Polymorphismen
DNA-Analysen der HLA-A- und HLA-B-Merkmale
Blutgruppen
Material:
10 ml EDTA-Blut für die DNA-Techniken
3 ml Nativblut für die Blutgruppenbestimmungen
Indikation: Abstammungsgenetische Untersuchungen
Hinweise:
Status: Gültig
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Laborleistungen - DRK

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